Fermenting wakalim samples (10 g) w

Fermenting wakalim samples (10 g) were drawn at 12 h intervals for the first 48 h and at
24 h intervals thereafter for microbiological enumeration. To count S. Typhimurium
DT104, a volume of 0.1 ml from appropriate dilutions was spread plated in duplicate on
pre-dried surfaces of plate count (PC) agar plates to allow metabolic recovery of injured
cells. After about 30 minutes, the inoculated PC agar plates were overlaid with molten
xylose lysine desoxycholate (XLD) agar (oxoid) and incubated at 32°C for 24 h. The
same procedure was followed for the other test strains by using violet red bile (VRB) or
mannitol salt (MS) agar overlay for E. coli or. Staph. aureus, respectively.
LAB were counted by spread plating 0.1 ml aliquots from appropriate dilutions in
duplicate on pre-dried surfaces of MRS agar (oxoid). The plates were incubated under
anaerobic condition, using anaerobic jar (BBL, GasPak anaerobic systems) at 30 to 32°C
for 48 h. All colonies were counted as lactic acid bacteria.
When growth of the test strain was not detected by direct plating, an enrichment
technique was used. A sample of 25 g was aseptically removed and inoculated into
225 ml of TSB and incubated at 32°C for 24 h. The enriched culture was streaked on
pre-dried surfaces of the respective media for the test strains. Absence of growth of the
test strains was considered as complete elimination.
The pH of samples was measured using digital pH meter (Nig 333, Naina Solaris
LTD, India) after homogenising 10 g of wakalim in 90 ml of distilled water using
Stomacher lab blender (Stomacher 400, Seward, London, UK).
Data were analysed using SPSS for Windows (version 10.0, SPSS Inc, Chicago, IL,
USA). Significances of differences among means of samples were computed using
one-way ANOVA. Coefficient of variation was calculated to evaluate the significances of
differences within samples analysed.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Fermenting wakalim samples (10 g) were drawn at 12 h intervals for the first 48 h and at24 h intervals thereafter for microbiological enumeration. To count S. TyphimuriumDT104, a volume of 0.1 ml from appropriate dilutions was spread plated in duplicate onpre-dried surfaces of plate count (PC) agar plates to allow metabolic recovery of injuredcells. After about 30 minutes, the inoculated PC agar plates were overlaid with moltenxylose lysine desoxycholate (XLD) agar (oxoid) and incubated at 32°C for 24 h. Thesame procedure was followed for the other test strains by using violet red bile (VRB) ormannitol salt (MS) agar overlay for E. coli or. Staph. aureus, respectively.LAB were counted by spread plating 0.1 ml aliquots from appropriate dilutions induplicate on pre-dried surfaces of MRS agar (oxoid). The plates were incubated underanaerobic condition, using anaerobic jar (BBL, GasPak anaerobic systems) at 30 to 32°Cfor 48 h. All colonies were counted as lactic acid bacteria.When growth of the test strain was not detected by direct plating, an enrichmenttechnique was used. A sample of 25 g was aseptically removed and inoculated into225 ml of TSB and incubated at 32°C for 24 h. The enriched culture was streaked onpre-dried surfaces of the respective media for the test strains. Absence of growth of thetest strains was considered as complete elimination.The pH of samples was measured using digital pH meter (Nig 333, Naina Solarisจำกัด อินเดีย) หลังจาก homogenising 10 กรัมของ wakalim ในการใช้น้ำกลั่น 90 mlแผงประดับหน้าอกแล็บปั่น (400 แผงประดับหน้าอก เซวาร์ด ลอนดอน สหราชอาณาจักร)ข้อมูลมาวิเคราะห์โดยใช้ SPSS สำหรับ Windows (รุ่น 10.0, SPSS Inc ชิคาโก ILสหรัฐอเมริกา) Significances ความแตกต่างระหว่างวิธีอย่างถูกคำนวณโดยใช้ทางเดียว ANOVA คำนวณค่าสัมประสิทธิ์ของการเปลี่ยนแปลงการประเมิน significances ของความแตกต่างภายในตัวอย่างที่วิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

หมักตัวอย่าง wakalim (10 กรัม) ถูกดึงที่ 12 ช่วงเวลาชั่วโมงสำหรับ 48 ชั่วโมงแรกและที่
24 ช่วงเวลาชั่วโมงหลังจากนั้นสำหรับการแจงนับจุลชีววิทยา การนับ S. Typhimurium
DT104 ปริมาณ 0.1 มล. จากการเจือจางที่เหมาะสมกระจายชุบซ้ำกันบน
พื้นผิวก่อนการอบแห้งของการนับจาน (PC) วุ้นแผ่นเพื่อช่วยให้การกู้คืนการเผาผลาญได้รับบาดเจ็บ
เซลล์ หลังจากนั้นประมาณ 30 นาทีเชื้อเครื่องคอมพิวเตอร์แผ่นวุ้นถูกบุด้วยหลอมเหลว
ไซโลสไลซีน desoxycholate (XLD) วุ้น (Oxoid) และบ่มที่ 32 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง
ขั้นตอนเดียวกันตามมาสำหรับสายพันธุ์ทดสอบอื่น ๆ โดยใช้สีม่วงน้ำดีสีแดง (VRB) หรือ
เกลือแมนนิทอล (MS) ซ้อนทับวุ้นสำหรับเชื้อ E. coli หรือ Staph aureus ตามลำดับ.
LAB นับจากการแพร่กระจายชุบ 0.1 มล. aliquots จากเจือจางที่เหมาะสมใน
ที่ซ้ำกันบนพื้นผิวก่อนแห้ง MRS agar (Oxoid) แผ่นถูกบ่มภายใต้
สภาวะไร้อากาศโดยใช้ขวดแบบไม่ใช้ออกซิเจน (BBL, GasPak ระบบแบบไม่ใช้ออกซิเจน) ที่ 30-32 องศาเซลเซียส
เป็นเวลา 48 ชั่วโมง อาณานิคมทั้งหมดถูกนับเป็นแบคทีเรียกรดแลคติค.
เมื่อการเจริญเติบโตของสายพันธุ์ทดสอบไม่ได้ถูกตรวจพบโดยการชุบโดยตรงการเพิ่มปริมาณ
เทคนิคที่ใช้ ตัวอย่างของ 25 กรัมจะถูกลบออกปลอดเชื้อและเชื้อเข้าไปใน
225 มล. ของ TSB และบ่มที่ 32 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง วัฒนธรรมอุดมถูกลายบน
พื้นผิวก่อนการอบแห้งของสื่อที่เกี่ยวข้องสำหรับการทดสอบสายพันธุ์ กรณีที่ไม่มีการเจริญเติบโตของ
สายพันธุ์ทดสอบได้รับการพิจารณาเป็นกำจัดสมบูรณ์.
เป็นกรดเป็นด่างของกลุ่มตัวอย่างได้รับการวัดโดยใช้เครื่องวัดค่า pH แบบดิจิตอล (Nig 333 Naina Solaris
จำกัด อินเดีย) หลังจาก homogenising 10 กรัม wakalim 90 มล. น้ำกลั่นโดยใช้
Stomacher ห้องปฏิบัติการเครื่องปั่น ( Stomacher 400, เอิร์ด, ลอนดอน, สหราชอาณาจักร).
วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้โปรแกรม SPSS for Windows (รุ่น 10.0, SPSS Inc, Chicago, IL,
USA) ความสำคัญของความแตกต่างระหว่างความหมายของตัวอย่างที่ถูกคำนวณโดยใช้
ทางเดียว ANOVA สัมประสิทธิ์การแปรผันที่คำนวณได้ในการประเมินความสำคัญของ
ความแตกต่างภายในวิเคราะห์ตัวอย่าง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

หมักตัวอย่าง wakalim ( 10 กรัม ) วาดในช่วงเวลา 12 ชั่วโมงครั้งแรก 48 H และหลังจากนั้น 24 ชั่วโมง ช่วงเวลาสำหรับการจุลชีววิทยา นับ S . typhimuriumdt104 , ปริมาตร 0.1 มิลลิลิตร จากวิธีการที่เหมาะสมคือกระจายชุบซ้ำบนก่อนอบแห้งพื้นผิว plate count ( PC ) วุ้นแผ่นเพื่อให้การเผาผลาญอาหารของการกู้คืนได้รับบาดเจ็บเซลล์ หลังจากนั้นประมาณ 30 นาที ใส่วุ้นที่หุ้มด้วยแผ่น PC ) หล่อเอนไซม์ไลซีน desoxycholate ( xld ) ( oxoid ) และบ่มที่อุณหภูมิ 32 องศา เป็นเวลา 24 ชั่วโมงกระบวนการเดียวกันคือตามสายพันธุ์อื่นทดสอบโดยใช้สีม่วงน้ำดี สีแดง ( vrb ) หรือ5 เกลือ ( MS ) วุ้นหุ้มใน E . coli หรือ . 10 . ) ตามลำดับแล็บถูกนับโดยกระจายชุบเฉยๆ จากวิธีการที่เหมาะสมใน 0.1 มิลลิลิตรที่ซ้ำกันบนพื้นผิวของนางก่อนอบแห้ง ( oxoid ) จานถูกบ่มภายใต้สภาวะไร้ออกซิเจน ใช้ anaerobic jar ( BBL , gaspak ไร้ระบบ ) ที่ 30 - 32 องศา C48 ชั่วโมง ตลอดอาณานิคมได้ถูกนับว่าเป็นแบคทีเรียกรดแลคติกเมื่อการเติบโตของการทดสอบสายพันธุ์ตรวจไม่พบโดยตรง การชุบ ,เทคนิคที่ใช้ ตัวอย่าง 25 กรัม และเชื้อ aseptically ถูกถอดออก225 มิลลิลิตร TSB บ่มที่ 32 °องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ผสานวัฒนธรรมเป็นลายบนก่อนอบแห้งพื้นผิวของสื่อที่เกี่ยวข้องกับสายพันธุ์ทดสอบ ขาดการเติบโตของสายพันธุ์ที่ทดสอบก็ถือเป็นการเสร็จสมบูรณ์pH ของตัวอย่างถูกวัดโดยใช้เครื่องวัดค่าพีเอช ( nig 333 naina โซลาริสจำกัด อินเดีย ) หลังจาก homogenising 10 กรัม ในน้ำกลั่น wakalim 90 มิลลิลิตร ใช้แผงประดับหน้าอก Lab เครื่องปั่น ( แผงประดับหน้าอก 400 ซีเวิร์ด , อังกฤษลอนดอน )วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้โปรแกรมสำเร็จรูป SPSS for Windows ( version 10.0 SPSS Inc , ชิคาโกสหรัฐอเมริกา ) ความสำคัญของความแตกต่างของค่าเฉลี่ยของกลุ่มตัวอย่าง คำนวณโดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียว สัมประสิทธิ์ความแปรผันมีค่าประเมินความสำคัญของความแตกต่างภายในตัวอย่างมาวิเคราะห์