Wastewater characteristics
The municipal wastewater (primary effluent) used in the batch
experiments was obtained from the inlet into the HRAP at
Ouistreham (France). The typical composition of this water is
described in Table 1.
2.3. Batch experiments
Batch experiments lasted 8 days and were performed in open
Duran (Schott) bottles (250 mL; 200 mL working volume; 7 cm
culture depth). The system consisted of 15 stirred
flasks, immersed
in a water-bath attemperated by means of water recirculation
through a chiller-heater (Frigomix U-1/Thermomix BU). Illumination
was provided from above the
flasks using
fluorescent lamps
(4
Mazdafluor 18 W) at 200–250 mmol m2 s1 measured at the
surface of the cultures (Licor LI250A, LI-COR, USA).
The reproducibility of the replicates was estimated by starting
15 identical cultures of Chlorella vulgaris in modified Bristol
medium (20 C; photoperiod 12 h) and estimating the microalgal
growth (as indicated in Section 2.4, by the total concentration of
chlorophyll a and b) in all the bottles. In our conditions, chlorophyll
concentration was revealed as an indirect measure of the algal
biomass in the wastewater (see Section 2.4). A standard deviation
of 7.60% of the values of the apparent specific growth rate, based on
chlorophyll measurements, for the 15 cultures was determined
indicating a good reproducibility between the cultures in the
incubation system. In other words, there was no influence of the
position of the bottles in the water bath on the results.
After confirming the positional uniformity of the incubator,
five
experiments were performed at different temperatures and
photoperiods. Each experiment contained duplicate cultures
randomly placed in the incubator. The temperatures (5, 15 and
25 C) and photoperiods (6, 12 and 18 h of light) were chosen to
mimic average winter and summer conditions in the open-pond of
Ouistreham (Table 2). The “photoperiod” refers to the length of
continuous illumination applied to the cultures during any 24 h
period. In the following, when referring to cultures conditions
(Bi–ii), i refers to the temperature and ii the photoperiod.
In addition two control experiments were performed: (a) Batch
cultures in obscurity and (b) Abiotic cultures without inoculation.
These experiments were performed to assess the impacts of
microbial respiration, nitrification and abiotic losses (nutrient
stripping and precipitation). Batch cultures were performed in
obscurity at 5,15 and 25 C (referred to as B5, B15 and B25). In order
to measure ammonia volatilization and phosphorus precipitation
the abiotic experiments were performed at 15 C and a
photoperiod of 18 h. These cultures were prepared with successive
filtrations (1.2 mm and 0.2 mm) of the nutrient medium to remove
the biomass. This experiment was repeated at two different pH
values; unmodified (pH
8) and strongly alkaline (pH = 10.0 with
addition of NaOH 2 mol L1). The latter pH corresponded to the
value routinely encountered at the end of the experiments
ลักษณะน้ำเสียการบำบัดน้ำเสีย (หลักทิ้ง) ใช้ในชุดงานการทดลองที่ได้รับจากช่องเข้า HRAP ที่Ouistreham (ฝรั่งเศส) เป็นองค์ประกอบทั่วไปของน้ำนี้อธิบายไว้ในตารางที่ 12.3. ชุดทดลองการชุดทดลองใช้งานได้นาน 8 วัน และดำเนินการเปิดขวด Duran (Schott) (250 mL ปริมาณ 200 มิลลิลิตรทำงาน 7 ซม.ความลึกวัฒนธรรม) ระบบประกอบด้วย 15 กวนขวด แช่ใน attemperated การอาบน้ำโดยใช้น้ำหมุนเวียนผ่านเย็นร้อน (Frigomix U-1/ช้อปปิ้ง BU) ไฟส่องสว่างจากข้างต้นให้การขวดที่ใช้โคมไฟฟลูออเรสเซนต์(4Mazdafluor 18 W) ที่ 200 – 250 mmol s ม. 1 ที่วัดนี้พื้นผิวของวัฒนธรรม (Licor LI250A, LI เกือบ สหรัฐอเมริกา)ประมาณ โดยเริ่มทำการจำลอง15 เหมือนวัฒนธรรมของคลอเรลล่าผดใน Bristol แก้ไขขนาดกลาง (20 C ช่วงแสง 12 h) และประมาณการ microalgalเจริญเติบโต (ตามที่ระบุไว้ในส่วน 2.4 เข้มข้นรวมของคลอโรฟิลล์ a และ b) ในขวดทั้งหมด ในเงื่อนไขของเรา คลอโรฟิลความเข้มข้นที่ถูกเปิดเผยเป็นการวัดทางอ้อมของการสาหร่ายชีวมวลในน้ำเสีย (ดูหัวข้อ 2.4) ค่าเบี่ยงเบนมาตรฐาน7.60% ของค่าของอัตราการเติบโตเฉพาะที่ชัดเจน อิงวัดคลอโรฟิล วัฒนธรรม 15 กำหนดแสดงที่แสดงดีระหว่างวัฒนธรรมในการระบบบ่ม ในคำอื่น ๆ ก็ไม่มีอิทธิพลของการตำแหน่งของขวดในอ่างน้ำผลหลังจากที่ยืนยันความสม่ำเสมอตำแหน่งของตู้อบห้าดำเนินการทดลองที่อุณหภูมิต่าง ๆ และphotoperiods แต่ละการทดลองอยู่ซ้ำวัฒนธรรมแบบสุ่มอยู่ในตู้อบ อุณหภูมิ (5, 15 และ25 C) และ photoperiods (6, 12 และ 18 h แสง) ได้รับเลือกให้เลียนแบบเฉลี่ยฤดูหนาวและฤดูร้อนเงื่อนไขในบ่อเปิดของOuistreham (ตาราง 2) "ชั่วโมง" หมายถึงความยาวของแสงสว่างที่ต่อเนื่องกับวัฒนธรรมระหว่างตลอด 24 ชมรอบระยะเวลา ในต่อไปนี้ เมื่ออ้างอิงถึงสภาพวัฒนธรรม(Bi – ii), ฉันหมายถึงอุณหภูมิและสองชั่วโมงนอกจากนี้ ดำเนินการทดลองควบคุม: ชุด (a)วัฒนธรรมในวัฒนธรรม Abiotic ความสับสนและ (ข) โดยไม่กักบริเวณการทดลองนี้ดำเนินการเพื่อประเมินผลกระทบของการจุลินทรีย์หายใจ การอนาม็อกซ์ และ abiotic ขาด (สารอาหารการลอกและฝน) ชุดวัฒนธรรมดำเนินการในความสับสนที่ 5,15 และ 25 C (เรียกว่า B5, B15 และ B25) ในใบสั่งการวัดปริมาณน้ำฝนการทาลายและฟอสฟอรัสแอมโมเนียดำเนินการทดลอง abiotic ที่ 15 C และ aช่วงแสง 18 ชม วัฒนธรรมเหล่านี้ถูกเตรียมพร้อมต่อเนื่องfiltrations (1.2 มม.และ 0.2 mm) ของสื่อสารการเอาออกชีวมวล การทดลองนี้ซ้ำที่ค่า pH แตกต่างกันสองค่า (pH ยังไม่แปร8) และขอด่าง (ค่า pH = 10.0 กับนอกจากนี้ของ NaOH 2 mol L 1) ค่า pH หลังความผูกพันในการค่าที่พบเป็นประจำเมื่อสิ้นสุดการทดลอง
การแปล กรุณารอสักครู่..

ลักษณะน้ำทิ้ง
น้ำเสียในเขตเทศบาลเมือง (น้ำทิ้งหลัก) ที่ใช้ในชุด
การทดลองที่ได้รับจากทางเข้าเข้า HRAP ที่
อุยสเตร (ฝรั่งเศส) องค์ประกอบทั่วไปของน้ำนี้จะ
อธิบายไว้ในตารางที่ 1
2.3 การทดลองชุด
การทดลองชุดกินเวลา 8 วันและได้รับการดำเนินการในการเปิด
Duran (ชอตต์) ขวด (250 มิลลิลิตร 200 มิลลิลิตรปริมาณการทำงาน 7 ซม.
ความลึกของวัฒนธรรม) ระบบประกอบด้วย 15 ขยับ
ขวดแช่
ในน้ำอาบน้ำ attemperated โดยวิธีการของการหมุนเวียนน้ำ
ผ่านเครื่องทำความเย็นอุ่น (Frigomix U-1 / Thermomix BU) ความสว่าง
ให้จากด้านบน
ขวดโดยใช้
หลอดฟลูออ
(4?
Mazdafluor 18 วัตต์) ที่ 200-250 มิลลิโมล M? 2 S? 1 วัดที่
พื้นผิวของวัฒนธรรม (Licor LI250A, LI-COR, สหรัฐอเมริกา).
การทำสำเนาของ ซ้ำเป็นที่คาดกันโดยเริ่มต้น
ที่ 15 วัฒนธรรมที่เหมือนกันของ Chlorella vulgaris ในการแก้ไขบริสตอ
ขนาดกลาง (20 ° C; ช่วงแสง 12 ชั่วโมง) และการประมาณสาหร่าย
เจริญเติบโต (ตามที่ระบุไว้ในมาตรา 2.4 โดยความเข้มข้นรวมของ
คลอโรฟิล A และ B) ในขวดทั้งหมด . ในเงื่อนไขของเรา, คลอโรฟิล
ความเข้มข้นก็ถูกเปิดเผยเป็นมาตรการทางอ้อมของสาหร่าย
ชีวมวลในน้ำเสีย (ดูมาตรา 2.4) เบี่ยงเบนมาตรฐาน
ของ 7.60% ของค่าของอัตราการเจริญเติบโตที่เห็นได้ชัดโดยเฉพาะที่อยู่บนพื้นฐาน
การวัดคลอโรฟิลสำหรับ 15 วัฒนธรรมก็ตัดสินใจที่
แสดงให้เห็นการทำสำเนาที่ดีระหว่างวัฒนธรรมใน
ระบบการบ่ม ในคำอื่น ๆ ที่มีอิทธิพลของไม่มี
ตำแหน่งของขวดในอ่างน้ำในผล.
หลังจากยืนยันความสม่ำเสมอตำแหน่งของศูนย์บ่มเพาะ
ห้า
ทดลองดำเนินการที่อุณหภูมิแตกต่างกันและ
photoperiods การทดสอบแต่ละครั้งที่มีวัฒนธรรมที่ซ้ำกัน
วางสุ่มในศูนย์บ่มเพาะ อุณหภูมิ (5, 15 และ
25 องศาเซลเซียส) และ photoperiods (6, 12 และ 18 ชั่วโมงของแสง) ได้รับเลือกให้
เลียนแบบเฉลี่ยในช่วงฤดูหนาวและฤดูร้อนเงื่อนไขในการเปิดบ่อของ
อุยสเตร (ตารางที่ 2) ว่า "แสง" หมายถึงความยาวของ
การส่องสว่างอย่างต่อเนื่องนำไปใช้กับวัฒนธรรมในช่วง 24 ชั่วโมง
ระยะเวลา ในต่อไปนี้เมื่อพูดถึงเงื่อนไขวัฒนธรรม
(BI-II) ผมหมายถึงอุณหภูมิและครั้งที่สองช่วงแสงได้.
นอกจากนี้ทั้งสองการทดลองควบคุมได้ดำเนินการดังนี้ (ก) ชุด
. วัฒนธรรมในความสับสนและ (ข) วัฒนธรรม abiotic โดยไม่ต้องฉีดวัคซีน
เหล่านี้ การทดลองได้ดำเนินการในการประเมินผลกระทบจาก
การหายใจของจุลินทรีย์ไนตริฟิเคและขาดทุน abiotic (สารอาหารที่
ลอกและฝน) วัฒนธรรม Batch ได้ดำเนินการใน
ความสับสนที่ 5,15 และ 25 องศาเซลเซียส (เรียกว่า B5, B15 และ B25) เพื่อ
ที่จะวัดการระเหยแอมโมเนียและฟอสฟอรัสการเร่งรัด
การทดลอง abiotic ได้ดำเนินการอยู่ที่ 15 องศาเซลเซียสและ
ช่วงแสง 18 ชั่วโมง วัฒนธรรมเหล่านี้ได้ถูกจัดทำขึ้นด้วยเนื่อง
filtrations (1.2 มิลลิเมตรและ 0.2 มิลลิเมตร) สื่อสารอาหารที่จะลบ
ชีวมวล การทดลองนี้ซ้ำสองค่า pH ที่แตกต่างกัน
ค่า; ยังไม่แปร (pH
?
8) และด่าง (pH = 10.0 มี
การเพิ่มของ NaOH 2 mol L? 1) ค่า pH หลังตรงกับ
ค่าที่พบเป็นประจำในตอนท้ายของการทดลอง
การแปล กรุณารอสักครู่..
