H. verticillata (L.f.) Royle plants

H. verticillata (L.f.) Royle plants (about 5 cm tip portion) were acclimatized for
5 d in laboratory conditions at 2572 1C in 10% Hoagland’s solution (Hoagland and
Arnon, 1950) using a 14 h photoperiod. Experiments were set up in triplicate and
each replicate contained 10 plants of equal size (approximately 2 g in total). There
were three set of experiments; each having different level of sulfur supply; low
(2 mM S; –S), normal (1 mM S; +S) and excess (2 mM S; +HS). After keeping the
plants in different sets of S supply for 5 d, they were exposed to AsV (50 mM;
prepared using Na2HAsO4; ICN; purity ca. 498%) and AsIII (5 mM; prepared using
NaAsO2; JT–Baker; purity ca. 98–100%) maintained in 10% Hoagland’s solution
under above-mentioned laboratory conditions for a period of 4 h or 1 d. The
experimental concentrations of As (50 mM for AsV and 5 mM for AsIII) and
durations (4 h and 1 d) were selected after preliminary toxicity assays on the basis
of effect on lipid peroxidation and on the basis of our previous studies (Srivastava
et al., 2007). The optimum exposures were finally applied because even at higher
concentrations (250 mM AsV and 25 mM AsIII) and longer durations (4 d), +HS
plants grew well but –S plants suffered too much toxicity and damage. Sulfur was
supplied in the form of sulfate salts including the macronutrient (MgSO4),
micronutrients (CuSO4, ZnSO4, MnSO4) and Fe-EDTA (containing FeSO4). For S
treatments (containing 2 mM S; the concentration of sulfate in micronutrients and
Fe-EDTA), MgCl2 was used instead of MgSO4 as suggested previously (Hirai et al.,
2003), whereas for +HS treatments, MgSO4 concentration was doubled. The
maximum S concentration (2 mM for +HS plants) was also chosen after
preliminary toxicity assays, which showed that higher sulfate concentrations
(i.e. 3 and 5 mM) were itself toxic to plant growth. Flasks containing no As kept
with each set of experiment served as control. After harvesting, plants were
washed with double distilled water, blotted gently and used to determine various
parameters. Prior to analysis, plant material was stored at 80 1C.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

H. verticillata (L.f.) Royle พืช (ประมาณ 5 ซม.ปลายส่วน) ถูก acclimatized สำหรับ5 d ในห้องปฏิบัติการที่ 1C 2572 ในโซลูชัน Hoagland 10% (Hoagland และอานนท์ 1950) โดยใช้ 14 h ชั่วโมง ทดลองสร้างขึ้นใน triplicate และแต่ละจำลองอยู่พืช 10 เท่าขนาด (ประมาณ 2 กรัมรวม) มีมี 3 ชุดการทดลอง แต่ละมีระดับต่าง ๆ ของกำมะถัน ต่ำสุด(2 มม. S – S), ปกติ (1 มม. S + S) และเกิน (2 มม. S + HS) หลังจากรักษาจัดหาพืชชุด S สำหรับ 5 d พวกเขาได้สัมผัสกับ AsV (50 mMใช้ Na2HAsO4 ICN ความบริสุทธิ์ ca. 498%) และ AsIII (5 มม. เตรียมไว้ใช้NaAsO2 JT – เบเกอร์ ความบริสุทธิ์ ca 98-100%) รักษาใน 10% ของ Hoagland โซลูชันภายใต้สภาพห้องปฏิบัติการดังกล่าวเป็นระยะเวลา 4 h หรือ 1 d. การทดลองความเข้มข้นของเป็น (50 มม. สำหรับ AsV และ 5 มม.สำหรับ AsIII) และเลือกช่วงเวลา (4 h และ 1 d) หลังจาก assays ความเป็นพิษเบื้องต้นบนพื้นฐานของผล peroxidation ของไขมัน และ ตามศึกษาก่อนหน้านี้ของเรา (Srivastavaร้อยเอ็ด al., 2007) ถ่ายภาพสูงสุดได้นำไปใช้ได้เนื่องจากแม้แต่ที่สูงขึ้นความเข้มข้น (AsV 250 มม.และ 25 มม. AsIII) และระยะเวลานาน (4 d), + HSพืชเติบโตดี ได้รับความเดือดร้อน – S พืชเป็นพิษและความเสียหายมากเกินไป กำมะถันได้จัดอยู่ในรูปของเกลือซัลเฟตรวมถึง macronutrient (MgSO4),องค์ประกอบตามโรค (CuSO4, ZnSO4, MnSO4) และ Fe-EDTA (มี FeSO4) สำหรับ Sบำบัด (ประกอบด้วย 2 มม. S ความเข้มข้นของซัลเฟตในองค์ประกอบตามโรค และFe-EDTA), MgCl2 ใช้แทน MgSO4 เป็นแนะนำก่อนหน้านี้ (Hirai et al.,2003), ในขณะที่สำหรับ + รักษา HS, MgSO4 ที่ความเข้มข้นเป็นสองเท่า ที่S เข้มข้นสูงสุด (2 มม.สำหรับ + พืช HS) ถูกเลือกหลังจากความเป็นพิษเบื้องต้น assays ซึ่งพบว่าสูงซัลเฟตความเข้มข้น(เช่น 3 และ 5 มม.) ได้ถูกตัวพิษพืชเจริญเติบโต เก็บน้ำที่ประกอบด้วยไม่เป็นแต่ละชุดของการทดลองทำหน้าที่เป็นตัวควบคุม หลังจากการเก็บเกี่ยว พืชได้ล้างห้องน้ำกลั่น blotted เบา ๆ และใช้ในการกำหนดต่าง ๆ ด้วยพารามิเตอร์ ก่อนวิเคราะห์ วัสดุโรงงานถูกเก็บไว้ที่ 80 1C.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

H. verticillata (LF) พืชรอยล์ (ประมาณ 5 ซม. ส่วนปลาย) ได้รับการปรับสภาพสำหรับ
5 วันในสภาพห้องปฏิบัติการที่ 1C 2572 ใน 10% ของการแก้ปัญหา Hoagland (Hoagland และ
อานนท์, 1950) โดยใช้แสง 14 ชั่วโมง ทดลองจัดตั้งขึ้นในเพิ่มขึ้นสามเท่าและ
ทำซ้ำแต่ละที่มี 10 โรงงานที่มีขนาดเท่ากัน (ประมาณ 2 กรัมทั้งหมด) มี
สามชุดของการทดลองมี; แต่ละคนมีระดับที่แตกต่างของปริมาณกำมะถัน; ต่ำ
(2 มิลลิ S; -S) ปกติ (1 มิลลิ S; + S) และส่วนเกิน (2 มิลลิ S; + HS) หลังจากการเก็บรักษา
พืชในชุดที่แตกต่างของอุปทาน S เป็นเวลา 5 วันพวกเขาได้สัมผัสกับ AsV (50 มม
เตรียมใช้ Na2HAsO4; ICN; บริสุทธิ์แคลิฟอร์เนียได้ 498%) และ AsIII (5 มมเตรียมใช้
NaAsO2; JT-เบเกอร์; บริสุทธิ์ รัฐแคลิฟอร์เนียได้ 98-100%) ยังคงอยู่ใน 10% ของการแก้ปัญหา Hoagland
ภายใต้การดังกล่าวข้างต้นสภาพห้องปฏิบัติการระยะเวลา 4 ชั่วโมงหรือ 1 วัน
ความเข้มข้นของการทดลองที่ ณ (50 มิลลิเมตรสำหรับ AsV และ 5 มิลลิสำหรับ AsIII) และ
ระยะเวลา (4 ชั่วโมงและ 1 ง) ได้รับการคัดเลือกหลังจากการตรวจพิษเบื้องต้นบนพื้นฐาน
ของผลกระทบต่อการเกิด lipid peroxidation และบนพื้นฐานของการศึกษาก่อนหน้าของเรา (Srivastava
และ al., 2007) ความเสี่ยงที่เหมาะสมถูกนำไปใช้ในที่สุดเพราะแม้แต่ที่สูงกว่า
ความเข้มข้น (250 มิลลิ AsV และ 25 มิลลิ AsIII) และระยะเวลานาน (4 ง) + HS
พืชเติบโตได้ดี แต่ -S พืชได้รับความเดือดร้อนเป็นพิษมากเกินไปและความเสียหาย ซัลเฟอร์ถูก
จำหน่ายในรูปแบบของเกลือซัลเฟตรวมทั้งธาตุอาหารหลัก (MgSO4),
จุล (CuSO4, ZnSO4, MnSO4) และ Fe-EDTA (ที่มี FeSO4) สำหรับ S
การรักษา (ที่มี 2 มิลลิ S; เข้มข้นของซัลเฟตแร่ธาตุอาหารและ
Fe-EDTA) MgCl2 ถูกนำมาใช้แทน MgSO4 ตามข้อเสนอแนะก่อนหน้านี้ (ฮิราอิ, et al.
, ในขณะที่สำหรับการรักษา + HS เข้มข้น MgSO4 เป็นสองเท่า 2003)
ความเข้มข้นสูงสุด S (2 มิลลิสำหรับพืช + HS) ได้รับการแต่งตั้งหลังจาก
การตรวจพิษเบื้องต้นซึ่งแสดงให้เห็นว่าระดับความเข้มข้นของซัลเฟตสูง
(เช่น 3 และ 5 mM) เป็นตัวเองที่เป็นพิษต่อการเจริญเติบโตของพืช ขวดที่มีไม่ในฐานะที่เก็บไว้
กับชุดของการทดลองแต่ละทำหน้าที่เป็นผู้ควบคุม หลังจากเก็บเกี่ยวพืชได้รับการ
ล้างด้วยน้ำกลั่นคู่เปื้อนเบา ๆ และใช้ในการกำหนดต่างๆ
พารามิเตอร์ ก่อนที่จะมีการวิเคราะห์วัสดุจากพืชที่ถูกเก็บไว้ที่ 80 1C

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

H . verticillata ( L.f . ) Royle พืช ( ประมาณ 5 ซม. ปลายส่วน ) มี acclimatized สำหรับ
5 D ในสภาพห้องปฏิบัติการใน 2572 1C 10% โฮกเลินโซลูชั่น ( โฮกเลิน
อานนท์และ 1950 ) โดยใช้แสง 14 H . ทดลองตั้งค่าทั้งสามใบและ
แต่ละซ้ํามีพืช 10 ขนาดเท่ากัน ( ประมาณ 2 กรัมในทั้งหมด ) มี 3 ชุดการทดลอง
;แต่ละมีในระดับที่แตกต่างกันของซัลเฟอร์ต่ำจัดหา ;
( 2 มม. ) s ; S ) ปกติ ( 1 มิลลิเมตร s ; S ) และส่วนเกิน ( 2 มม. s ; HS ) หลังจากการรักษา
พืชในชุดที่แตกต่างกันของอุปทานของ 5 D , พวกเขาสัมผัส ASV ( 50 มม. ;
เตรียมไว้ใช้ na2haso4 ; โทรศัพท์ ; ความบริสุทธิ์ประมาณ 46 % ) และ asiii ( 5 มม. ; เตรียมใช้
naaso2 ; เจที–เบเกอร์ ; ความบริสุทธิ์ประมาณ 98 - 100 % ) ไว้ 10% ของโฮกเลินโซลูชั่น
ภายใต้สภาวะห้องปฏิบัติการดังกล่าวเป็นระยะเวลา 4 ชั่วโมง หรือ 1 D
ทดลองความเข้มข้นของ ( 50 มม. และ 5 มม. สำหรับ ASV สำหรับ asiii ) และระยะเวลา ( 4 H
1 D ) ที่ถูกเลือกหลังจากตรวจความเป็นพิษเบื้องต้นบนพื้นฐาน
ผลกระทบของการเกิด lipid peroxidation และบนพื้นฐานของการศึกษาก่อนหน้านี้ ( ศรีวัสทวา
et al . , 2007 )การรับชมที่เหมาะสม ได้ใช้ เพราะแม้ที่ความเข้มข้นสูง
( 250 มม. และ 25 มม. asiii ASV ) และระยะเวลานาน ( 4 D ) HS
พืชขยายตัวได้ดี แต่ทนพิษของพืชและมากเกินไปและเกิดความเสียหาย กำมะถันเป็น
จัดในรูปแบบของเกลือซัลเฟตรวมทั้งอาหาร ( MgSO4 ใ ) ,
( znso4 micronutrients , CuSO4 , mnso4 ) และเหล็ก EDTA ( ที่มี feso4 ) สำหรับ S
การรักษา ( ประกอบด้วย 2 มิลลิเมตร s ; ความเข้มข้นของซัลเฟตใน micronutrients และ
เหล็ก EDTA ) , MgCl2 ใช้แทน MgSO4 ใเป็นข้อเสนอแนะก่อนหน้านี้ ( ฮิราอิ et al . ,
, 2003 ) ขณะที่การรักษา HS MgSO4 ใ , ความเข้มข้นสองเท่า
s ความเข้มข้นสูงสุด ( 2 มม. สำหรับ HS พืช ) ถูกเลือกหลังจาก
) ความเป็นพิษเบื้องต้น ซึ่งพบว่าสูงกว่าซัลเฟตความเข้มข้น
( เช่น3 5 มิลลิเมตร ) ตัวเองเป็นพิษต่อการเจริญเติบโตของพืช ขวดที่ไม่มีที่เก็บ
กับแต่ละชุดการทดลองทำหน้าที่ควบคุม หลังจากเก็บเกี่ยว พืช
ล้างด้วยน้ำกลั่นสองครั้งที่เปื้อนเบา ๆและใช้ในการตรวจสอบค่าพารามิเตอร์ต่างๆ

ก่อนการวิเคราะห์ วัสดุจากพืชที่เก็บไว้ที่ 80 c .