mycelial disks of either B. oryzae

mycelial disks of either B. oryzae and Trichoderma isolates 10
mm away from the edge of the plate opposite to each other.
Plates inoculated with B. oryzae alone served as control. Plates
were incubated at 26 ± 1°C for seven days (12 h light/12 h
darkness). The linear growth was measured. Three replicate
plates were done for each treatment. The percentage of growth
inhibition was calculated using the equation RI= 100 x (R2 -
R1) / R2. Where RI was the percentage of reduction in
mycelial growth, R1 was the averaged growth of pathogen in
treated plates and R2 was the averaged growth of pathogen in
control plates (12).
Production of volatile compounds: The bottoms of Petri
dishes containing PDA were separately inoculated with
mycelial plugs of pathogen and Trichoderma isolates. Then
two bottoms held together with pathogen at top, sealed with
adhesive tape and incubated at 26 ± 1°C in the dark for seven
days. The radial growth of the pathogens was measured. Three
replicates of each treatment were used (11).
Production of non-volatile compounds: A piece of
autoclaved cellophane was placed on the surface of PDA
medium in a 9 cm plate then a 7 mm disk of Trichoderma
isolate was inoculated on the cellophane. The plates were
incubated at 26 ± 1
°C for 72 h. After the incubation period, the
cellophane and the adhering Trichoderma mycelia were
aseptically removed and the centre of each dish was inoculated
with a 5 mm diameter disk of B. oryzae taken from an actively
growing colony. The plates were incubated at 26 ± 1
°C for a
further five days. The control treatment was B. oryzae grown
on PDA plate where previously there was a cellophane disc
without antagonist. Three replicate plates were done for each
treatment. The percentage of growth inhibition was calculated
(12).
Mycoparasitism test: The slide culture method (28) was
used to investigate the mycoparasitic nature of Trichoderma
isolates against B. oryzae. A microscope glass slide covered
with a thin layer of PDA in the agar plate was inoculated with
5 mm mycelial disks of Trichoderma spp. and pathogen, 1 cm
apart from each other. All paired cultures incubated at 26 °C
and regions where the hyphae of Trichoderma isolates met the
hyphae of the pathogen were periodically observed under a
light microscope.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ดิสก์ mycelial ของ B. oryzae และ Trichoderma แยก 10มม.ห่างจากขอบจานตรงข้ามกันแผ่น inoculated กับ B. oryzae คนเดียวทำหน้าที่เป็นตัวควบคุม แผ่นได้รับการกกที่ 26 ± 1° C 7 วัน (12 ชม. แสง/12 hความมืด) โดยวัดการเจริญเติบโตเชิงเส้น จำลองแบบสามแผ่นถูกทำการรักษาแต่ละ เปอร์เซ็นต์ของการเจริญเติบโตยับยั้งการคำนวณโดยใช้สมการ RI = 100 x (R2 -R1) / R2 ที่ RI เป็นเปอร์เซ็นต์ของการลดเติบโต mycelial, R1 คือ การเติบโตเฉลี่ยของเชื้อโรคในแผ่นบำบัดและ R2 คือ การเติบโตเฉลี่ยของเชื้อโรคในควบคุมแผ่น (12)การผลิตของสารประกอบระเหย: บางเพาะอาหารที่ประกอบด้วย PDA ถูกแยก inoculated ด้วยปลั๊ก mycelial ของเชื้อโรคและแยก Trichoderma จากนั้นสองก้นจัดขึ้นร่วมกับเชื้อโรคที่ด้านบน ปิดผนึกด้วยเทปกาว และรับการกกที่ 26 ± 1° C ในมืดสำหรับเจ็ดวันที่ รัศมีเจริญเติบโตของเชื้อโรคที่ถูกวัด สามเหมือนกับการรักษาแต่ละถูกใช้ (11)การผลิตสารที่ไม่ระเหย: ชิ้นส่วนของกระดาษแก้วนึ่งถูกวางลงบนพื้นผิวของ PDAปานกลางใน 9 ซม.แผ่นดิสก์แล้ว 7 มม.ของ Trichodermaisolate คือ inoculated บนกระดาษแก้ว มีแผ่นรับการกกที่ 26 ± 1° C สำหรับ 72 ชั่วโมง หลังจากระยะฟักตัว การกระดาษแก้วและ mycelia Trichoderma เกาะติดเอา aseptically และศูนย์กลางของอาหารแต่ละจานถูก inoculatedกับดิสก์เส้นผ่าศูนย์กลาง 5 มม.ของ B. oryzae ที่นำมาจากการแข็งขันเติบโตอาณานิคม แผ่นได้รับการกกที่ 26 ± 1° C สำหรับการเพิ่มเติม 5 วัน ควบคุมรักษาแก้ไข B. oryzae ปลูกบนแผ่น PDA ที่ก่อนหน้านี้มีเป็นแผ่นกระดาษแก้วไม่ มีศัตรู ทำแผ่น replicate ที่สามสำหรับแต่ละการรักษา คำนวณเปอร์เซ็นต์ของการยับยั้งการเจริญเติบโต(12)ทดสอบ Mycoparasitism: แก้ไขวิธีวัฒนธรรมภาพนิ่ง (28)ใช้เพื่อตรวจสอบลักษณะ mycoparasitic ของ Trichodermaแยกกับ B. oryzae สไลด์แก้วกล้องจุลทรรศน์ครอบคลุมด้วยชั้นบาง ๆ ของ PDA ในแผ่นวุ้นมี inoculated ด้วย5 มม. mycelial ดิสก์ของเชื้อและเชื้อโรค 1 ซม.นอกจากแต่ละอื่น ๆ วัฒนธรรมทั้งคู่รับการกกที่ 26 ° Cและภูมิภาคที่พบ hyphae ของ Trichoderma แยกการhyphae ของเชื้อโรคเป็นระยะ ๆ ถูกตั้งข้อสังเกตภายใต้การกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ดิสก์เส้นใยของทั้ง B. oryzae และเชื้อรา Trichoderma แยก 10
มมห่างจากขอบของแผ่นตรงข้ามกับแต่ละอื่น ๆ .
แผ่นเชื้อ B. oryzae คนเดียวทำหน้าที่เป็นผู้ควบคุม แผ่น
ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 26 ± 1 ° C เป็นเวลาเจ็ดวัน (12 แสง H / 12 ชั่วโมง
ความมืด) การเจริญเติบโตเชิงเส้นวัด สามซ้ำ
แผ่นได้ทำสำหรับการรักษาแต่ละครั้ง ร้อยละของการเจริญเติบโตของ
การยับยั้งที่คำนวณได้โดยใช้สมการ RI = 100 x (ที่ R2 -
R1) / R2 ที่ไหน RI เป็นร้อยละของการลดลงของ
การเจริญเติบโตของเส้นใย, R1 คือการเจริญเติบโตเฉลี่ยของเชื้อโรคใน
แผ่นได้รับการรักษาและ R2 คือการเจริญเติบโตเฉลี่ยของเชื้อโรคใน
แผ่นควบคุม (12).
การผลิตสารระเหย: ก้นของ Petri
อาหารที่มี PDA ก็แยกกัน เชื้อด้วย
ปลั๊กเส้นใยของเชื้อโรคและเชื้อรา Trichoderma ไอโซเลท จากนั้น
ทั้งสองพื้นจัดขึ้นร่วมกันกับเชื้อโรคที่ด้านบน, ปิดผนึกด้วย
เทปกาวและบ่มที่อุณหภูมิ 26 ± 1 ° C ในที่มืดเป็นเวลาเจ็ด
วัน การเจริญเติบโตของเชื้อโรครัศมีที่ถูกวัด สาม
ซ้ำของการรักษาแต่ละครั้งถูกนำมาใช้ (11).
การผลิตของสารที่ไม่ระเหย: ชิ้นส่วนของ
กระดาษแก้วมวลถูกวางลงบนพื้นผิวของพีดีเอ
ขนาดกลางในแผ่น 9 ซม. แล้วดิสก์ 7 มมเชื้อรา Trichoderma
แยกถูกเชื้อในกระดาษแก้ว แผ่นถูก
บ่มที่อุณหภูมิ 26 ± 1
° C เป็นเวลา 72 ชั่วโมง หลังจากระยะฟักตัวที่
กระดาษแก้วและยึดมั่นในเส้นใยเชื้อรา Trichoderma ถูก
ลบออกปลอดเชื้อและเป็นศูนย์กลางของอาหารแต่ละจานได้รับเชื้อ
ด้วยดิสก์ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 5 มมของ B. oryzae นำมาจากแข็งขัน
อาณานิคมการเจริญเติบโต แผ่นถูกบ่มที่อุณหภูมิ 26 ± 1
° C สำหรับ
อีกห้าวัน การรักษาควบคุม B. oryzae ปลูก
บนแผ่นพีดีเอที่ก่อนหน้านี้มีแผ่นกระดาษแก้ว
โดยไม่ต้องศัตรู สามแผ่นซ้ำได้ทำสำหรับแต่ละ
รักษา ร้อยละของการยับยั้งการเจริญที่คำนวณได้
(12).
การทดสอบ Mycoparasitism: วิธีการวัฒนธรรมสไลด์ (28) ถูก
นำมาใช้ในการตรวจสอบลักษณะ mycoparasitic เชื้อรา Trichoderma
แยกกับ B. oryzae สไลด์แก้วกล้องจุลทรรศน์ปกคลุม
ด้วยชั้นบาง ๆ ของ PDA ในจานเลี้ยงเชื้อได้รับเชื้อด้วย
5 มิลลิเมตรดิสก์เส้นใยของเชื้อรา Trichoderma spp และเชื้อโรค 1 ซม.
ห่างจากกัน วัฒนธรรมที่จับคู่ทั้งหมดบ่มที่อุณหภูมิ 26 องศาเซลเซียส
และภูมิภาคที่เส้นใยของเชื้อรา Trichoderma แยกพบ
เส้นใยของเชื้อโรคที่ถูกตั้งข้อสังเกตเป็นระยะ ๆ ภายใต้
กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ของดิสก์ของ B . oryzae และ Trichoderma isolates 10อืมห่างจากขอบของแผ่นอยู่ตรงข้ามกันจานใส่ B . oryzae คนเดียวทำหน้าที่ควบคุม แผ่นอุณหภูมิ 26 ± 1 ° C เป็นเวลา 7 วัน ( 12 ชั่วโมง แสง / 12 ชั่วโมงความมืด ) การเจริญเติบโตเชิงเส้นคือวัด 3 ทำซ้ำจานถูกทำสำหรับการรักษาแต่ละ ร้อยละของการเจริญเติบโตการยับยั้งคำนวณได้โดยใช้สมการริ = 100 x ( R2 -R1 / R2 . ซึ่งเป็นค่าร้อยละของการลดริเจริญ R1 เป็นเฉลี่ย , การเจริญเติบโตของเชื้อโรคในได้รับแผ่นและ R2 คือเฉลี่ยการเจริญเติบโตของเชื้อโรคในแผ่นควบคุม ( 12 )การผลิตสารระเหย : พื้นของ Nameอาหารที่ประกอบด้วย PDA ถูกแยกเชื้อด้วยปลั๊กของเชื้อโรคและเชื้อราเส้นใยของเชื้อ จากนั้นสองเหนือจัดขึ้นร่วมกันกับเชื้อโรคที่ด้านบนปิดด้วยกาวเทปและบ่มที่อุณหภูมิ 26 ± 1 °องศาเซลเซียสในที่มืดเป็นเวลาเจ็ดวัน การเจริญเติบโตของเชื้อโรคได้ รัศมีไอออน สามแบบของการรักษาแต่ละครั้งใช้ ( 11 )การผลิตสารไม่ระเหย : ชิ้นส่วนของสังเคราะห์กระดาษแก้วถูกวางไว้บนพื้นผิวของพีดีเอกลาง 9 ซม. จานดิสก์เชื้อรา 7 มม.แยกเป็นเชื้อในกระดาษแก้ว . แผ่นคือบ่มที่อุณหภูมิ 26 ± 1° C เป็นเวลา 72 ชั่วโมง หลังจากระยะเวลา ,กระดาษแก้วและยึดมั่นเชื้อราเส้นใยaseptically ลบและศูนย์บริการของแต่ละจานเป็นเชื้อกับ 5 มม. เส้นผ่าศูนย์กลางดิสก์ของ B . oryzae ถ่ายจากอย่างแข็งขันเติบโตอาณานิคม แผ่นอุณหภูมิ 26 ± 1° C สำหรับอีก 5 วัน การรักษาควบคุม B . oryzae โตอาหารจานที่ก่อนหน้านี้มีกระดาษแก้ว แผ่นดิสก์ไม่มีปฏิปักษ์ 3 ทำซ้ำแผ่นถูกทำสำหรับแต่ละการรักษา ร้อยละของการยับยั้งการคํานวณ( 12 )ทดสอบ mycoparasitism : ภาพนิ่งวิธีการเลี้ยง ( 28 )ใช้ศึกษาธรรมชาติ mycoparasitic เชื้อราไอโซเลตกับ B . oryzae . กล้องจุลทรรศน์แบบกระจกสไลด์ ปกคลุมด้วยชั้นบาง ๆของ PDA ในจานที่ใส่วุ้น5 มิลมีดิสก์ Trichoderma spp . และเชื้อโรค 1 ซม.นอกเหนือจากแต่ละอื่น ๆ ทุกคู่ที่ 26 ° C ) วัฒนธรรมและภูมิภาคที่เส้นใยของเชื้อราไอโซเลทพบเส้นใยของเชื้อโรคอยู่เป็นระยะ ๆ สังเกตใต้กล้องจุลทรรศน์แบบแสง