with 2% NaCl and thiosulphate-citra

with 2% NaCl and thiosulphate-citrate-bile salt-sucrose agar (TCBS).
The shrimp was then cut aseptically. The tissues from hepatopancreas
and heart were collected with a sterilized loop and streaked
onto ST and TCBS plates. All samples were incubated at 28 C for
24e48 h and bacterial colonies were examined. For viral infection
diagnosis,WSSV was checked by universal PCR using primers listed
in Table 1 [30]. DNA extraction from whole body tissues was performed
as described by Jang et al. (2009) and PCR amplificationwas
conducted as follows: 95 C for 3 min; 35 cycles of 95 C for 30 s,
57 C for 45 s, and 72 C for 1 min; followed by 72 C for 10 min. The
PCR products were checked by electrophoresis on a 1.5% agarose
gel.
2.4. Challenge test
Challenge tests were performed as previously described [1],
including single infection by one pathogen only or multiple infections
by two pathogens concurrently. For single challenge test,
shrimp were injected with 20 mL of V. anguillarum (3.3 106 colonyforming
units mL1) orWSSV viral suspension (2 102 copies mL1)
in the ventral sinus between the 4th and 5th pleopods using a 0.3-
mL insulin syringe (BD Medical-Diabetes Care, USA). The control
group was injected with equal volume of physical saline (PS). For
multiple infection group, the shrimp were injected simultaneously
with 20 mL of cocktail suspensions containing V. anguillarum
(3.3 103 CFU mL1) and WSSV (2 102 copies mL1). These concentrations
could cause shrimp disease, induced immune response,
but kept most of shrimp survive so tissues could be collected for
immune response study. Each group included 70 shrimps and the
experiments were conducted in triplicate. Five shrimps were
sampled at each time point (0, 3, 6, 12, 24, 48, 72 and 168 h) post
injection (hpi) from each group. These samples would be used for
the immune-related genes expression analysis.
2.5. Immune-related genes expression analysis by real-time PCR
Time-course immune-related genes mRNA expression in the
whole body of shrimp was analyzed. Total RNA isolation, cDNA
Table 1
Primers and probes used in this study.
Target Name Nucleotide sequence (50e30) Note
WSSV Forward CTTTCACTCTTTCGGTCGTGTC [30]
Reverse TACTCGGTCTCAGTGCCAGA
b-actina Forward GTCAYCAGGGTGTGATGGTC
Reverse ATCTTCTCCATGTCRTCCCAG
PPAF Forward CCAGAAGACGTACGAGCGGTAT Present study
Reverse GTAGAGAGCGCCTGAGTTGTAATTAG
Probe CACCAGGACAGGAACGTCATCAGCG
PPAE1 Forward AGTTCCTACGACACGACCACCTA [16]
Reverse TCGACGTTGAAGTTGGTGCTT
Probe AACGACATCGCCATCATCAAGCTGC
PPAE2 Forward GTTGTGCCTCGAACGTAA [43]
Reverse TTGCTGGTGGGCGTTATAGTT
Probe CCAACGCCGTCACCAACACCC
Mas Forward CGGCTGCGCTCAAAGG [51]
Reverse TCGGATGAAGTTGGCATACG
Probe TCCAGGTGTCTACGTCAACGTGGCC
Ran Forward CCAAGAGAAATTGGGAGGTCTTC
Reverse GGGAACATTCTTGTACGTGACTCTAG
Probe ATGGTTACTACATCCAGGCCCACTGTGC
b-actinb Forward CGAGGTATCCTCACCCTGAAAT [16]
Reverse GTGATGCCAGATCTTCTCCATGT
Probe CGAGCACGGCATCGTCACCAA
a b-actin was used in multiplex PCR for WSSV detection.
b b-actin was used as an internal reference gene in the mRNA expression analysis
of immune-related genes. PPAF: proPO activating factor; PPAE: proPO-activating

with 2% NaCl and thiosulphate-citrate-bile salt-sucrose agar (TCBS).
The shrimp was then cut aseptically. The tissues from hepatopancreas
and heart were collected with a sterilized loop and streaked
onto ST and TCBS plates. All samples were incubated at 28 C for
24e48 h and bacterial colonies were examined. For viral infection
diagnosis,WSSV was checked by universal PCR using primers listed
in Table 1 [30]. DNA extraction from whole body tissues was performed
as described by Jang et al. (2009) and PCR amplificationwas
conducted as follows: 95 C for 3 min; 35 cycles of 95 C for 30 s,
57 C for 45 s, and 72 C for 1 min; followed by 72 C for 10 min. The
PCR products were checked by electrophoresis on a 1.5% agarose
gel.
2.4. Challenge test
Challenge tests were performed as previously described [1],
including single infection by one pathogen only or multiple infections
by two pathogens concurrently. For single challenge test,
shrimp were injected with 20 mL of V. anguillarum (3.3 106 colonyforming
units mL1) orWSSV viral suspension (2 102 copies mL1)
in the ventral sinus between the 4th and 5th pleopods using a 0.3-
mL insulin syringe (BD Medical-Diabetes Care, USA). The control
group was injected with equal volume of physical saline (PS). For
multiple infection group, the shrimp were injected simultaneously
with 20 mL of cocktail suspensions containing V. anguillarum
(3.3  103 CFU mL1) and WSSV (2  102 copies mL1). These concentrations
could cause shrimp disease, induced immune response,
but kept most of shrimp survive so tissues could be collected for
immune response study. Each group included 70 shrimps and the
experiments were conducted in triplicate. Five shrimps were
sampled at each time point (0, 3, 6, 12, 24, 48, 72 and 168 h) post
injection (hpi) from each group. These samples would be used for
the immune-related genes expression analysis.
2.5. Immune-related genes expression analysis by real-time PCR
Time-course immune-related genes mRNA expression in the
whole body of shrimp was analyzed. Total RNA isolation, cDNA
Table 1
Primers and probes used in this study.
Target Name Nucleotide sequence (50e30) Note
WSSV Forward CTTTCACTCTTTCGGTCGTGTC [30]
Reverse TACTCGGTCTCAGTGCCAGA
b-actina Forward GTCAYCAGGGTGTGATGGTC
Reverse ATCTTCTCCATGTCRTCCCAG
PPAF Forward CCAGAAGACGTACGAGCGGTAT Present study
Reverse GTAGAGAGCGCCTGAGTTGTAATTAG
Probe CACCAGGACAGGAACGTCATCAGCG
PPAE1 Forward AGTTCCTACGACACGACCACCTA [16]
Reverse TCGACGTTGAAGTTGGTGCTT
Probe AACGACATCGCCATCATCAAGCTGC
PPAE2 Forward GTTGTGCCTCGAACGTAA [43]
Reverse TTGCTGGTGGGCGTTATAGTT
Probe CCAACGCCGTCACCAACACCC
Mas Forward CGGCTGCGCTCAAAGG [51]
Reverse TCGGATGAAGTTGGCATACG
Probe TCCAGGTGTCTACGTCAACGTGGCC
Ran Forward CCAAGAGAAATTGGGAGGTCTTC
Reverse GGGAACATTCTTGTACGTGACTCTAG
Probe ATGGTTACTACATCCAGGCCCACTGTGC
b-actinb Forward CGAGGTATCCTCACCCTGAAAT [16]
Reverse GTGATGCCAGATCTTCTCCATGT
Probe CGAGCACGGCATCGTCACCAA
a b-actin was used in multiplex PCR for WSSV detection.
b b-actin was used as an internal reference gene in the mRNA expression analysis
of immune-related genes. PPAF: proPO activating factor; PPAE: proPO-activating

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2% NaCl และ agar ซูโครสเกลือน้ำดี thiosulphate ซิเตรต (TCBS)กุ้งถูกตัดแล้ว aseptically เนื้อเยื่อจาก hepatopancreasและรวบรวมคล้อง sterilized และลายหัวใจบนแผ่นเซนต์และ TCBS ตัวอย่างทั้งหมดถูก incubated ที่ C 28 สำหรับ24e48 h และแบคทีเรียอาณานิคมถูกตรวจสอบ การติดเชื้อไวรัสมีการตรวจสอบการวินิจฉัย การตรวจ โดย PCR ที่ใช้ไพรเมอร์ที่อยู่สากลในตาราง 1 [30] ทำการสกัดดีเอ็นเอจากเนื้อเยื่อของร่างกายทั้งหมดเป็นอธิบาย โดยแจง et al. (2009) และ PCR amplificationwasดำเนินการดังนี้: C 95 ใน 3 นาที รอบ 35 ของ 95 C สำหรับ 30 s57 C 45 s และ 72 C สำหรับ 1 นาที ตาม ด้วย C 72 สำหรับ 10 นาทีมีการตรวจสอบผลิตภัณฑ์ PCR โดย electrophoresis ใน agarose 1.5%เจ2.4. ความท้าทายทดสอบได้ดำเนินการทดสอบท้าทายอธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [1],รวมทั้งติดเชื้อเดียว โดยศึกษาหนึ่งเท่านั้นหรือติดเชื้อหลายโดยโรคทั้งสองพร้อมกัน สำหรับการทดสอบความท้าทายเดียวกุ้งถูกฉีด ด้วย 20 mL ของ V. anguillarum (3.3 106 colonyformingหน่วย mL 1) ระงับไวรัส orWSSV (มล 2 102 สำเนา 1)ในไซนัส ventral ระหว่าง pleopods 4 และ 5 ใช้ 0.3 เป็น-mL เข็มอินซูลิน (BD ดูแลรักษาโรคเบาหวาน สหรัฐอเมริกา) ตัวควบคุมกลุ่มถูกฉีด ด้วยเท่ากับปริมาตรของน้ำเกลือที่มีอยู่จริง (PS) สำหรับกลุ่มติดเชื้อหลาย กุ้งถูกฉีดพร้อมกันมี 20 mL ของบริการค็อกเทลประกอบด้วย V. anguillarum(3.3 103 CFU mL 1) และการตรวจ (มล 2 102 สำเนา 1) ความเข้มข้นเหล่านี้ทำกุ้งโรค การตอบสนองภูมิคุ้มกันอาจแต่ส่วนใหญ่ที่เก็บไว้ของกุ้งอยู่รอดดังนั้นเนื้อเยื่ออาจถูกรวบรวมสำหรับการศึกษาการตอบสนองภูมิคุ้มกัน แต่ละกลุ่มรวม 70 กุ้งและทดลองได้ดำเนินการใน triplicate กุ้งห้าได้ตัวอย่างที่ลงแต่ละจุด (0, 3, 6, 12, 24, 48, 72 และ 168 h) เวลาฉีด (hpi) จากแต่ละกลุ่ม ตัวอย่างเหล่านี้จะใช้สำหรับการวิเคราะห์นิพจน์ของยีนที่เกี่ยวข้องกับภูมิคุ้มกัน2.5 ยีนที่ภูมิคุ้มกันที่เกี่ยวข้องวิเคราะห์นิพจน์ โดย PCR แบบเรียลไทม์นิพจน์การ mRNA ของยีนที่เกี่ยวข้องกับภูมิคุ้มกันเวลาเรียนในการมีวิเคราะห์ร่างกายทั้งหมดของกุ้ง แยกอาร์เอ็นเอรวม cDNAตารางที่ 1ไพรเมอร์และคลิปปากตะเข้ที่ใช้ในการศึกษานี้ปลายทางชื่อนิวคลีโอไทด์ลำดับหมายเหตุ (50e30)การตรวจ CTTTCACTCTTTCGGTCGTGTC ไปข้างหน้า [30]กลับ TACTCGGTCTCAGTGCCAGAb actina GTCAYCAGGGTGTGATGGTC ไปข้างหน้ากลับ ATCTTCTCCATGTCRTCCCAGPPAF ไป CCAGAAGACGTACGAGCGGTAT ปัจจุบันศึกษากลับ GTAGAGAGCGCCTGAGTTGTAATTAGโพรบ CACCAGGACAGGAACGTCATCAGCGPPAE1 AGTTCCTACGACACGACCACCTA ไปข้างหน้า [16]กลับ TCGACGTTGAAGTTGGTGCTTโพรบ AACGACATCGCCATCATCAAGCTGCPPAE2 GTTGTGCCTCGAACGTAA ไปข้างหน้า [43]กลับ TTGCTGGTGGGCGTTATAGTTโพรบ CCAACGCCGTCACCAACACCCมาสส่ง CGGCTGCGCTCAAAGG [51]กลับ TCGGATGAAGTTGGCATACGโพรบ TCCAGGTGTCTACGTCAACGTGGCCวิ่งไปข้างหน้า CCAAGAGAAATTGGGAGGTCTTCกลับ GGGAACATTCTTGTACGTGACTCTAGโพรบ ATGGTTACTACATCCAGGCCCACTGTGCb actinb CGAGGTATCCTCACCCTGAAAT ไปข้างหน้า [16]กลับ GTGATGCCAGATCTTCTCCATGTโพรบ CGAGCACGGCATCGTCACCAAแบบ b-แอกตินถูกใช้ใน multiplex PCR สำหรับตรวจตรวจใช้บีบีแอกตินเป็นยีนการอ้างอิงภายในวิเคราะห์นิพจน์ mRNAของยีนที่เกี่ยวข้องกับภูมิคุ้มกัน PPAF: สนอเวลาที่เปิดใช้งานตัว PPAE: สนอเวลาเปิดใช้งาน

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

มี 2% โซเดียมคลอไรด์และไซโอ-citrate-วุ้นน้ำดีเกลือน้ำตาลซูโครส (TCBS).
กุ้งจากนั้นก็ตัดปลอดเชื้อ เนื้อเยื่อจากตับและหัวใจที่ถูกเก็บรวบรวมพร้อมห่วงฆ่าเชื้อและลายลงบนST และแผ่น TCBS ตัวอย่างทั้งหมดได้รับการบ่มที่ 28 องศาเซลเซียสสำหรับ24e48 ชั่วโมงและแบคทีเรียที่มีการตรวจสอบ สำหรับการติดเชื้อไวรัสโรคตัวแดงดวงขาวได้รับการตรวจสอบโดยวิธี PCR สากลโดยใช้ไพรเมอร์ที่ระบุไว้ในตารางที่1 [30] การสกัดดีเอ็นเอจากเนื้อเยื่อร่างกายได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้โดยจาง et al, (2009) และ PCR amplificationwas ดำเนินการดังต่อไปนี้: 95 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3 นาที; 35 รอบจาก 95 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 วินาที? 57 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 45 วินาทีและ 72 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1 นาที?; ตามด้วย 72 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 นาที ผลิตภัณฑ์พีซีอาร์ได้รับการตรวจสอบโดย electrophoresis บน 1.5% agarose เจล. 2.4 ท้าทายการทดสอบการทดสอบความท้าทายได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [1], รวมทั้งการติดเชื้อโดยหนึ่งเดียวเท่านั้นที่ติดเชื้อหรือการติดเชื้อหลายสองเชื้อโรคพร้อมกัน สำหรับการทดสอบความท้าทายเดียวกุ้งถูกฉีดด้วย 20 มล V. anguillarum (3.3? 106 colonyforming หน่วยมิลลิลิตร 1) orWSSV ระงับไวรัส (2? 102 มิลลิลิตรสำเนา 1) ในไซนัสท้องระหว่าง 4 และ 5 pleopods ใช้ 0.3 - เข็มฉีดยาอินซูลินมิลลิลิตร (BD แพทย์เบาหวาน, สหรัฐอเมริกา) ควบคุมกลุ่มที่ฉีดด้วยปริมาณที่เท่ากันของน้ำเกลือทางกายภาพ (PS) สำหรับกลุ่มที่ติดเชื้อหลายกุ้งถูกฉีดพร้อมกันกับ20 มลสารแขวนลอยค๊อกเทลที่มี V. anguillarum (3.3? 103 CFU มิลลิลิตร 1) และตัวแดงดวงขาว (2? 102 มิลลิลิตรสำเนา 1) ความเข้มข้นของเหล่านี้อาจก่อให้เกิดโรคกุ้งเหนี่ยวนำให้เกิดการตอบสนองของระบบภูมิคุ้มกันแต่ยังคงมากที่สุดของกุ้งอยู่รอดเพื่อให้เนื้อเยื่ออาจจะเก็บไว้สำหรับการศึกษาการตอบสนองของระบบภูมิคุ้มกัน แต่ละกลุ่มรวม 70 กุ้งและทดลองดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่า ห้ากุ้งได้รับตัวอย่างที่จุดแต่ละครั้ง (0, 3, 6, 12, 24, 48, 72 และ 168 ชั่วโมง) โพสต์ฉีด(HPI) จากแต่ละกลุ่ม ตัวอย่างเหล่านี้จะใช้สำหรับยีนภูมิคุ้มกันที่เกี่ยวข้องกับการวิเคราะห์การแสดงออก. 2.5 ภูมิคุ้มกันยีนที่เกี่ยวข้องกับการวิเคราะห์การแสดงออกโดยแบบ real-time PCR เวลาแน่นอนภูมิคุ้มกันยีนที่เกี่ยวข้องกับการแสดงออกในร่างกายของกุ้งได้รับการวิเคราะห์ แยก RNA รวม, ยีนตารางที่1 ไพรเมอร์และโพรบที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้. เป้าหมายชื่อเบสลำดับ (50e30) หมายเหตุ: ตัวแดงดวงขาวไปข้างหน้า CTTTCACTCTTTCGGTCGTGTC [30] ย้อนกลับ TACTCGGTCTCAGTGCCAGA ข actina ไปข้างหน้า GTCAYCAGGGTGTGATGGTC ย้อนกลับ ATCTTCTCCATGTCRTCCCAG PPAF ไปข้างหน้า CCAGAAGACGTACGAGCGGTAT ปัจจุบันการศึกษาย้อนกลับGTAGAGAGCGCCTGAGTTGTAATTAG Probe CACCAGGACAGGAACGTCATCAGCG PPAE1 ไปข้างหน้า AGTTCCTACGACACGACCACCTA [16] ย้อนกลับ TCGACGTTGAAGTTGGTGCTT Probe AACGACATCGCCATCATCAAGCTGC PPAE2 ไปข้างหน้า GTTGTGCCTCGAACGTAA [43] ย้อนกลับ TTGCTGGTGGGCGTTATAGTT Probe CCAACGCCGTCACCAACACCC Mas ไปข้างหน้า CGGCTGCGCTCAAAGG [51] ย้อนกลับ TCGGATGAAGTTGGCATACG Probe TCCAGGTGTCTACGTCAACGTGGCC วิ่งไปข้างหน้า CCAAGAGAAATTGGGAGGTCTTC ย้อนกลับ GGGAACATTCTTGTACGTGACTCTAG Probe ATGGTTACTACATCCAGGCCCACTGTGC ข actinb ไปข้างหน้า CGAGGTATCCTCACCCTGAAAT [16] ย้อนกลับ GTGATGCCAGATCTTCTCCATGT Probe CGAGCACGGCATCGTCACCAA เป็นข-โปรตีน ถูกใช้ในหลายวิธี PCR ในการตรวจหาตัวแดงดวงขาว. ขขโปรตีนถูกใช้เป็นยีนอ้างอิงภายในในการวิเคราะห์การแสดงออกของ mRNA ของยีนที่เกี่ยวข้องกับระบบภูมิคุ้มกัน PPAF: proPO ปัจจัยการเปิดใช้งาน; PPAE: proPO-เปิดใช้งาน

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

กับ 2 โซเดียมคลอไรด์น้ำตาลซูโครสไธโอซัลเฟตซิเตรตเกลือน้ำดี ( มาตรฐาน ) .
กุ้งแล้วตัด aseptically . เนื้อเยื่อจากตับและหัวใจถูกเก็บด้วย

ไว้ฆ่าเชื้อห่วงและลายเซนต์ และมาตรฐานแผ่น ตัวอย่างทั้งหมดที่อุณหภูมิ 28 C
24e48 H และแบคทีเรียอาณานิคมได้ถูกตรวจสอบ สำหรับการวินิจฉัยการติดเชื้อ
ไวรัส ีก็ถูกตรวจสอบโดยวิธี PCR โดยใช้ primers จดทะเบียน
สากลตารางที่ 1 [ 30 ] การสกัดดีเอ็นเอจากเนื้อเยื่อของร่างกายได้
ตามที่อธิบายไว้โดยจาง et al . ( 2009 ) และ PCR amplificationwas
ดำเนินการดังนี้ : 95 C เป็นเวลา 3 นาที ; 35 รอบ 95 C 30 S ,
c 57 45 S , และ 72 องศาเซลเซียสนาน 1 นาที ตามด้วย 72 C 10 นาที ผลิตภัณฑ์ทั้งหมดจะถูกตรวจสอบโดยวิธีอิเล็กโทรโฟรีซีสบน

เจล , 1.5 %
2.4 .
ทดสอบความท้าทายแบบทดสอบความท้าทายมีการปฏิบัติตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [ 1 ] ,
รวมถึงการติดเชื้อโดยเชื้อเพียงหนึ่งเดียวหรือหลายเชื้อ
โดยทั้งสองโรคพร้อมกัน . สำหรับการทดสอบความท้าทายเดียว
กุ้ง 20 ml ฉีดด้วย V . anguillarum ( 3.3 106 colonyforming
หน่วยมิลลิลิตร 1 ) orwssv ไวรัสชั่วคราว ( 2 102 ฉบับ 1 มิลลิลิตร )
ในโพรงจมูก ) ระหว่างวันที่ 4 และ 5 pleopods ใช้ 0.3 -
มล อินซูลินเข็ม ( BD แพทย์โรคเบาหวานการดูแล , USA ) กลุ่มควบคุม
ถูกฉีดด้วยขนาดเท่ากัน ทางกายภาพ น้ำเกลือ ( PS ) สำหรับ
กลุ่มการติดเชื้อหลาย กุ้งฉีดพร้อมกัน
20 มิลลิลิตร ผสมค็อกเทล ช่วงล่างวี anguillarum
( 3.3 103 CFU ml ี 1 ) และ ( 2 102 ฉบับ 1 มิลลิลิตร ) เหล่านี้อาจก่อให้เกิดโรคกุ้ง (
,
) การตอบสนองทางภูมิคุ้มกันแต่เก็บส่วนใหญ่ของกุ้งรอดดังนั้นเนื้อเยื่อสามารถเก็บ
ศึกษาการตอบสนองทางภูมิคุ้มกัน กลุ่มละ 70 กุ้ง
การทดลอง 5
ตัวอย่างกุ้งที่แต่ละจุดเวลา ( 0 , 3 , 6 , 12 , 24 , 48 , 72 และ 168 ชั่วโมง ) หลังจากการฉีด
( HPI ) จากแต่ละกลุ่ม ตัวอย่างเหล่านี้จะถูกใช้สำหรับการวิเคราะห์การแสดงออกของยีนที่เกี่ยวข้องกับระบบภูมิคุ้มกัน
.
2.5การแสดงออกของยีนที่เกี่ยวข้องกับระบบภูมิคุ้มกันในการวิเคราะห์แบบเรียลไทม์พีซีอาร์
แน่นอนเวลาของการแสดงออกของยีนที่เกี่ยวข้องกับระบบภูมิคุ้มกันในร่างกายของกุ้ง
วิเคราะห์ . การแยกยีนยีน

รวมตารางที่ 1 ชนิด ) ที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ ชื่อ
เป้าหมายลำดับนิวคลีโอไทด์ ( 50e30 ) หมายเหตุ
[ ]
ctttcactctttcggtcgtgtc 30 ีไปข้างหน้าย้อนกลับ tactcggtctcagtgccaga

gtcaycagggtgtgatggtc b-actina ไปข้างหน้าย้อนกลับ atcttctccatgtcrtcccag
ppaf ไปข้างหน้า ccagaagacgtacgagcggtat ปัจจุบันศึกษา

ตรวจสอบย้อนกลับ gtagagagcgcctgagttgtaattag caccaggacaggaacgtcatcagcg
ppae1 ไปข้างหน้า agttcctacgacacgaccaccta [ 16 ]

ตรวจสอบย้อนกลับ tcgacgttgaagttggtgctt aacgacatcgccatcatcaagctgc
ppae2 ไปข้างหน้า gttgtgcctcgaacgtaa [ 43 ]

แต่กลับ ttgctggtgggcgttatagtt สอบสวน ccaacgccgtcaccaacaccc ไปข้างหน้า cggctgcgctcaaagg [ 51 ]
ย้อนกลับ tcggatgaagttggcatacg

tccaggtgtctacgtcaacgtggcc probe วิ่งไปข้างหน้า ccaagagaaattgggaggtcttc

ตรวจสอบย้อนกลับ gggaacattcttgtacgtgactctag atggttactacatccaggcccactgtgc
b-actinb ไปข้างหน้า cgaggtatcctcaccctgaaat [ 16 ]

ตรวจสอบย้อนกลับ gtgatgccagatcttctccatgt cgagcacggcatcgtcaccaa
เป็น b-actin multiplex ซึ่งใช้ในการตรวจจับ
ี .B b-actin ถูกใช้เป็นยีนภายในอ้างอิงในการศึกษาการแสดงออกของ mRNA ของยีนที่เกี่ยวข้องกับระบบภูมิคุ้มกัน
. ppaf : propo กระตุ้นปัจจัย ; ppae : propo กระตุ้น

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.