Fig. 7. The expression patterns of the 17 candidate genes during capitulum development under different shading treatments. The mean expression levels of different genes were
normalized to relative expression levels based on Fu et al. (2014). CmPP2A was used as the reference gene. The results are presented as the mean ± SD of three replicates. Different
letters represent significant differences at P < 0.01 between the shading treatments.
signals. Three signals have been previously identified and characterized
in petunia flowers: gibberellic acid (GA), light and sugars.
These signals control anthocyanin accumulation, corolla cell
expansion and the expression of genes from various pathways
(Neta-Sharir et al., 2000). GA is required only for the initiation of
these processes at the early stage of floral development (Weiss and
Halevy, 1989), but sugars and light are needed to maintain growth
and pigmentation through the entire process of floral development
(Moscovici et al.,1996). The results of these studies support a model
in which the GA, light and sugar signals interact to control master
transcription regulators that act upstream of the specific regulators
of the anthocyanin pathways and of other pathways involved in cell
expansion. The activation of these pathways is required to complete
the process of flower growth and opening. Therefore, the
“increasing first and then decreasing” trend of anthocyanins accumulation
in chrysanthemum ray florets, which was detected in the
present study (Fig. 4B), may be caused by a comprehensive effect of
these three signals.
We also found that the fading of flower color phenotype when
shading the capitulum was more severe than when shading the
leaves (Fig. 3), which was consistent with the fact that the Cy-3-
MalGlc content was increased when the capitulum was shaded;
whereas when the leaves were shaded, the opposite was founded.
Beckwith et al. (2004) also obtained similar results in Pennisetum
setaceum ‘Rubrum’ and ‘Red Riding Hood’. In general, more malonyl
attached to the anthocyanidin moiety facilitates stronger stability
มะเดื่อ. 7. รูปแบบการแสดงออกของยีนที่ 17 ในระหว่างการพัฒนาดอกภายใต้การรักษาที่แตกต่างกันการแรเงา หมายถึงระดับการแสดงออกของยีนที่แตกต่างกันเป็น
ปกติระดับการแสดงออกญาติอยู่บนพื้นฐานของ Fu, et al (2014) CmPP2A ถูกใช้เป็นยีนอ้างอิง ผลที่จะได้นำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย± SD สามซ้ำ ที่แตกต่างกัน
ตัวอักษรแทนความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญที่ P <0.01 ระหว่างการรักษาแรเงา.
สัญญาณ สามสัญญาณได้รับการระบุก่อนหน้านี้และลักษณะ
ดอกพิทูเนีย:. กรดจิบเบอเรลลิก (GA), แสงและน้ำตาล
สัญญาณเหล่านี้จะควบคุมการสะสม anthocyanin เซลล์ Corolla
การขยายตัวและการแสดงออกของยีนจากทางเดินต่างๆ
(. Neta-Sharir, et al, 2000) GA จะต้องเฉพาะสำหรับการเริ่มต้นของ
กระบวนการเหล่านี้ในขั้นตอนแรกของการพัฒนาดอกไม้ (ไวส์และ
Halevy, 1989) แต่น้ำตาลและแสงมีความจำเป็นเพื่อรักษาอัตราการเติบโต
และผิวคล้ำผ่านกระบวนการทั้งหมดของการพัฒนาดอกไม้
(Moscovici et al., 1996 ) ผลจากการศึกษาเหล่านี้สนับสนุนรูปแบบ
ที่ GA, แสงและน้ำตาลสัญญาณโต้ตอบการควบคุม
กำกับดูแลการถอดความต้นน้ำที่ทำหน้าที่ของหน่วยงานกำกับดูแลที่เฉพาะเจาะจง
ของทางเดิน anthocyanin และเซลล์อื่น ๆ ที่เกี่ยวข้องในเซลล์
ขยายตัว การเปิดใช้งานของทางเดินเหล่านี้จะต้องดำเนินการ
ขั้นตอนของการเจริญเติบโตดอกไม้และเปิด ดังนั้นการ
"เพิ่มขึ้นเป็นครั้งแรกแล้วลดลง" แนวโน้มของ anthocyanins สะสม
ในดอกย่อย ray ดอกเบญจมาศซึ่งได้รับการตรวจพบใน
การศึกษาปัจจุบัน (รูป. 4B) อาจจะเกิดจากผลที่ครอบคลุมของ
ทั้งสามสัญญาณ.
นอกจากนี้เรายังพบว่าซีดจาง ฟีโนไทป์ของดอกไม้สีเมื่อ
แรเงาดอกเป็นรุนแรงมากขึ้นกว่าเมื่อแรเงา
ใบ (รูปที่ 3.) ซึ่งมีความสอดคล้องกับความจริงที่ว่าภาวะ-3-
เนื้อหา MalGlc เพิ่มขึ้นเมื่อดอกถูกสีเทา;
ขณะที่เมื่อใบถูกสีเทา ตรงข้ามก่อตั้ง.
Beckwith et al, (2004) ยังได้รับผลที่คล้ายกันใน Pennisetum
setaceum 'rubrum' และ 'หมวกแดง' โดยทั่วไป malonyl เพิ่มเติม
แนบมากับครึ่ง anthocyanidin อำนวยความสะดวกความมั่นคงแข็งแกร่ง
การแปล กรุณารอสักครู่..