In this study we focused on the eff

In this study we focused on the effect of plant growth regulators
and their combinations in order to regulate a level of tissue
differentiation and enhance biomass production. Our aim was to
increase biomass growth and callus formation at the beginning of
cultivation on the surface of cut areas in order to get as many cells
with potential to form roots as possible. This would give rise to
higher biomass followed by direct root multiplication out of explant
cells. However, consulting the literature, we has not found anything
about the influence of several PGRs (particularly influence of different
cytokinins) and their combination on tissue differentiation
in ginseng adventitious roots. Therefore we found it reasonable to
test various auxin–cytokinin combinations on a tTCL in vitro system
to investigate their influence on lateral root formation in ginseng.
In our experiment, auxins were applied in order to stimulate root
differentiation and cytokinins to enhance root multiplication. As
organ cultures usually need more space, the use of TCL system was
space saving and allowed us to test more combinations.
We found that 2,4-D inhibited root stimulation. This is in accordance
with the findings of Bonfill et al. (2002) who similarly
reported that 2,4-D had significantly lower organogenic capacity
comparing to other auxins (IBA and NAA) tested on ginseng calluses.
Also, it is well known that 2,4-D rather promotes cell division
and dedifferentiation than organogenesis. The type of auxin also
affected root quality. While roots formed on IBA and IAA were
rather thin and on IBA even slightly necrotized, BSAA and NAA
auxins induced formation of thick and yellow roots. Similar results
were again reported by Bonfill et al. (2002) for IBA and NAA auxins
(both auxins were tested only in combination with Kin).
In our case, the cytokinin type influenced the stimulation of the
root formation and multiplication. This is on the contrary to the
results obtained by Benková and Hejátko (2009) who showed that
auxin, but not cytokinin, is capable of triggering organogenesis in
explants.
We suggest that high standard deviation (in Table 2 – root
multiplication) was caused by the character of individual cut
root layers. Roots were cut usually in the middle part of each
adventitious root and only representative roots were selected.
However endogenous levels of auxins and cytokinins should be
different regarding present meristematic cells or apical meristems
of lateral roots. Therefore we applied 50 replicates at
minimum in each treatment. Especially in one treatment (BSAA
and 2iP) we observed remarkable variations. The majority of
explants did not form any adventitious roots and conversely
very few explants formed large amount of roots (30–50 roots/1
explant).
If we are looking for a system for Panax ginseng production,
which can be alternative to wild collection and/or field cultivation,
plant organs (adventitious roots) offer certain advantages. Firstly,
ginsenoside composition is nearly identical to the native root. Secondly,
produced roots are “real” roots and can be utilized directly
both for extract preparation and/or as a natural root material. In
such a system we were able to reach the production levels of ginsenosides
up to 2.28% of dry weight, which is comparable with the
production by native roots (Furuya, 1988; Bruneton, 1995). Additionally,
as a general rule, and due to their genetic stability, organs
are less susceptible to erratic metabolite production than undifferentiated
cells (Bourgaud et al., 2001).
In our previous work, we tested different bioreactor systems
to find optimal conditions (aeration and mixing) for large-scale
cultivation of ginseng adventitious roots. The best conditions for
growth and ginsenoside production were provided by TIS RITA
(Langhansová et al., 2006). Therefore we test

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในการศึกษานี้ เราเน้นในผลของพืชเจริญเติบโตของหน่วยงานกำกับดูแลชุดของพวกเขาเพื่อควบคุมระดับของเนื้อเยื่อและสร้างความแตกต่าง และเพิ่มชีวมวลผลิต จุดมุ่งหมายของเราคือการเพิ่มชีวมวลเจริญเติบโตและก่อให้ต้นเพาะปลูกบนพื้นผิวของพื้นที่ตัดเพื่อให้เซลล์มากมีศักยภาพในการแบบฟอร์มรากเป็น นี้จะก่อให้เกิดชีวมวลสูงตาม ด้วยคูณรากโดยตรงจาก explantเซลล์ อย่างไรก็ตาม ที่ปรึกษาด้านวรรณคดี เราไม่พบอะไรเกี่ยวกับอิทธิพลของ PGRs หลาย (โดยเฉพาะอย่างยิ่งอิทธิพลของแตกต่างกันcytokinins) และชุดของพวกเขาในการสร้างความแตกต่างของเนื้อเยื่อในราก adventitious โสม ดังนั้น เราพบว่ามันเหมาะสมที่จะทดสอบชุดออกซิน – cytokinin ต่าง ๆ บนกับ tTCL ในระบบหลอดการตรวจสอบอิทธิพลบนรากด้านข้างก่อในโสมในการทดลองของเรา auxins ถูกนำไปใช้เพื่อกระตุ้นรากสร้างความแตกต่างและ cytokinins เพิ่มคูณราก เป็นอวัยวะวัฒนธรรมมักจะต้องการเนื้อที่เพิ่มมากขึ้น มีการใช้ระบบเส้นพื้นที่บันทึก และให้เราทดสอบรวมกันมากขึ้นเราพบว่ากระตุ้นรากห้าม 2, 4-D นี้เป็นกับผลการวิจัยของ Bonfill et al. (2002) ซึ่งในทำนองเดียวกันรายงานที่ 2, 4-D มีกำลังต่ำ organogenicเทียบกับ auxins อื่น ๆ (อิบาและ NAA) ทดสอบบน calluses โสมยัง มันเป็นที่รู้จักที่ 2, 4-D ค่อนข้างส่งเสริมการแบ่งเซลล์และ dedifferentiation กว่าเกิดของอวัยวะ ชนิดของออกซินยังคุณภาพของรากที่ได้รับผลกระทบ ในขณะที่รากที่เกิดขึ้น ในอิบาและ IAAค่อนข้างบาง และในอิบาเล็กน้อย necrotized, BSAA และ NAAauxins ทำให้เกิดการก่อตัวของรากหนา และสีเหลือง ผลคล้ายกันมีรายงานโดย Bonfill et al. (2002) สำหรับอิบาและ NAA auxins อีก(auxins ทั้งได้ทดสอบเฉพาะในร่วมกับการกิน)ในกรณี ชนิด cytokinin มีอิทธิพลต่อการกระตุ้นของการกำเนิดรากและการคูณ ดอกนี้คือการผลลัพธ์ที่ได้ Benková และ Hejátko (2009) ที่ชี้ให้เห็นว่าออกซิน แต่ไม่ cytokinin มีความสามารถในการเกิดของอวัยวะในการทริกเกอร์explantsเราขอแนะนำว่า ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานสูง (ในตารางที่ 2-รากคูณ) ที่เกิดจากอักขระแต่ละตัวตัดชั้นราก รากถูกตัดโดยปกติแล้วในส่วนกลางของแต่ละเฉพาะพนักงานรากและราก adventitious ถูกเลือกอย่างไรก็ตาม ระดับ endogenous auxins และ cytokinins ควรต่าง ๆ เกี่ยวกับเซลล์ปัจจุบัน meristematic หรือ apical meristemsของรากด้านข้าง ดังนั้น เราใช้ 50 เหมือนกับที่ขั้นต่ำในแต่ละทรีทเม้นต์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งในการรับการรักษา (BSAAและ 2iP) เราสังเกตความแตกต่างที่โดดเด่น ส่วนใหญ่explants ได้แบบราก adventitious ใด ๆ และในทางกลับกันexplants น้อยมากเกิดจำนวนราก (30 – 50 ราก/1explant)ถ้าเรากำลังมองหาระบบการผลิตโสมซานซึ่งสามารถทดแทนป่าเก็บและ/หรือฟิลด์ปลูกอวัยวะของพืช (ราก adventitious) มีข้อดีบางอย่าง ประการแรกองค์ประกอบ ginsenoside เป็นเกือบเหมือนกับรากดั้งเดิม ประการที่สองผลิตรากมีราก "จริง" และสามารถนำไปใช้ประโยชน์โดยตรงทั้ง สำหรับการเตรียมสารสกัด และ/หรือ เป็นวัสดุธรรมชาติราก ในกล่าวเราก็สามารถไปถึงระดับการผลิตของ ginsenosidesถึง 2.28% ของน้ำหนักแห้ง ซึ่งเทียบได้กับการผลิต โดยรากดั้งเดิม (Furuya, 1988 Bruneton, 1995) นอกจากนี้กฎทั่วไป และเนื่อง จาก เสถียรภาพทางพันธุกรรมของพวกเขา อวัยวะมีน้อยกว่าความไวต่อการผลิต metabolite ความมากกว่า undifferentiatedเซลล์ (Bourgaud และ al., 2001)ในการทำงานของเราก่อนหน้านี้ เราได้ทดสอบระบบ bioreactor ที่แตกต่างกันในการค้นหาเงื่อนไขที่เหมาะสม (aeration และผสม) ขนาดใหญ่เพาะปลูกของราก adventitious โสม เงื่อนไขดีที่สุดสำหรับเจริญเติบโตและ ginsenoside ผลิตได้จากมอก.ริต้า(Langhansová และ al., 2006) ดังนั้น ทดสอบของเรา

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในการศึกษานี้เรามุ่งเน้นไปที่ผลกระทบของการควบคุมการเจริญเติบโต
และการรวมกันของพวกเขาในการที่จะควบคุมระดับของเนื้อเยื่อ
ความแตกต่างและเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตชีวมวล จุดมุ่งหมายของเราคือการ
เพิ่มการเจริญเติบโตของชีวมวลและการสร้างแคลลัสที่จุดเริ่มต้นของ
การเพาะปลูกบนพื้นผิวของพื้นที่ตัดเพื่อให้ได้เซลล์จำนวนมาก
ที่มีศักยภาพในรูปแบบรากที่เป็นไปได้ ซึ่งจะก่อให้เกิด
ชีวมวลที่สูงขึ้นตามมาด้วยการคูณรากโดยตรงจากชิ้นส่วน
เซลล์ แต่ให้คำปรึกษาด้านวรรณกรรมที่เรายังไม่ได้พบสิ่งใด
เกี่ยวกับอิทธิพลของ PGRs หลายคน (โดยเฉพาะอย่างยิ่งมีอิทธิพลที่แตกต่างกัน
cytokinins) และการรวมกันของพวกเขาในความแตกต่างของเนื้อเยื่อ
ในโสมราก ดังนั้นเราจึงพบว่ามันเหมาะสมที่จะ
ทดสอบการผสมออกซินไซโตไคนิ-ต่างๆใน TTCL ในระบบการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ
เพื่อตรวจสอบอิทธิพลของพวกเขาในการก่อรากโสมข้างใน.
ในการทดลองของเรา auxins ถูกนำไปใช้เพื่อกระตุ้นราก
ความแตกต่างและ cytokinins เพื่อเพิ่มคูณราก ในฐานะที่เป็น
วัฒนธรรมอวัยวะมักจะต้องมีพื้นที่ว่างมากขึ้นการใช้ระบบ TCL เป็น
ประหยัดพื้นที่และอนุญาตให้เราสามารถทดสอบการรวมกันมากขึ้น.
เราพบว่า 2,4-D ยับยั้งการกระตุ้นราก ซึ่งเป็นไปตาม
ที่มีการค้นพบของ Bonfill และคณะ (2002) ซึ่งในทำนองเดียวกัน
มีรายงานว่า 2,4-D มีความจุที่ต่ำกว่าอย่างมีนัยสำคัญ organogenic
เมื่อเทียบกับ auxins อื่น ๆ (IBA และ NAA) ทดสอบในแคลลัโสม.
นอกจากนี้ยังเป็นที่รู้จักกันดีว่า 2,4-D ค่อนข้างส่งเสริมการแบ่งเซลล์
และ dedifferentiation กว่า อวัยวะ ประเภทของออกซินยัง
ได้รับผลกระทบที่มีคุณภาพราก ในขณะที่รากบน IBA และ IAA มี
ค่อนข้างบางและ IBA แม้ necrotized เล็กน้อย BSAA และ NAA
auxins ก่อเหนี่ยวนำของรากหนาและสีเหลือง ผลที่คล้ายกัน
ได้รับรายงานอีกครั้งโดย Bonfill และคณะ (2002) สำหรับ IBA และ NAA auxins
(auxins ทั้งได้มีการทดสอบเฉพาะในการทำงานร่วมกับคิน).
ในกรณีของเราประเภทไซโตไคนิอิทธิพลกระตุ้นการ
เกิดรากและการคูณ นี้เป็นในทางตรงกันข้ามกับ
ผลที่ได้รับจาก Benkova และHejátko (2009) ที่แสดงให้เห็นว่า
ออกซิน แต่ไม่ไซโตไคนิ, มีความสามารถในการเรียกอวัยวะใน
. ชิ้น
เราขอแนะนำให้เบี่ยงเบนมาตรฐานสูง (ในตารางที่ 2 - ราก
คูณ) มีสาเหตุมาจาก ตัวละครของการตัดแต่ละ
ชั้นราก รากถูกตัดมักจะอยู่ในส่วนตรงกลางของแต่ละ
รากบังเอิญและรากเพียงตัวแทนที่ถูกเลือก.
อย่างไรก็ตามระดับภายนอกของ auxins และ cytokinins ควรจะ
แตกต่างกันเกี่ยวกับเซลล์เจริญปัจจุบันหรือในปลายเจริญ
ของรากด้านข้าง ดังนั้นเราจึงนำมาใช้ซ้ำ 50 ที่
ต่ำสุดในการรักษาแต่ละ โดยเฉพาะอย่างยิ่งในการรักษา (BSAA
และ 2iP) เราพบรูปแบบที่โดดเด่น ส่วนใหญ่ของ
ชิ้นส่วนไม่ได้รูปแบบรากใด ๆ และตรงกันข้าม
ชิ้นน้อยมากที่เกิดขึ้นจำนวนมากของราก (ราก 30-50 / 1
ชิ้น).
ถ้าเรากำลังมองหาระบบการผลิตโสม Panax,
ซึ่งอาจจะเป็นทางเลือกให้กับคอลเลกชันป่าและ / หรือการเพาะปลูกสนาม
อวัยวะพืช (ราก) มีข้อได้เปรียบบางอย่าง ประการแรก
องค์ประกอบ ginsenoside เกือบจะเหมือนกับรากพื้นเมือง ประการที่สอง
รากผลิตเป็น "ของจริง" รากและสามารถนำไปใช้โดยตรง
ทั้งสำหรับการเตรียมสารสกัดและ / หรือเป็นวัสดุธรรมชาติราก ใน
ระบบดังกล่าวเราก็สามารถที่จะไปถึงระดับการผลิตของ ginsenosides
ถึง 2.28% ของน้ำหนักแห้งซึ่งเป็นที่เปรียบได้กับ
การผลิตจากรากพื้นเมือง (ฟุรุยะ, 1988; Bruneton, 1995) นอกจากนี้
เป็นกฎทั่วไปและเนื่องจากเสถียรภาพทางพันธุกรรมของพวกเขาอวัยวะ
มีน้อยไวต่อการผลิต metabolite ผิดปกติกว่าความแตกต่าง
เซลล์ (Bourgaud et al., 2001).
ในการทำงานของเราก่อนหน้านี้เราได้ทดสอบระบบเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพที่แตกต่างกัน
เพื่อหาสภาวะที่เหมาะสม (การเติมอากาศ และการผสม) สำหรับขนาดใหญ่
การเพาะปลูกของโสมราก เงื่อนไขที่ดีที่สุดสำหรับ
การเจริญเติบโตและการผลิต ginsenoside มีให้โดยมอกริต้า
(Langhansová et al., 2006) ดังนั้นเราจึงทดสอบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในการศึกษาครั้งนี้เราเน้นผลของสารควบคุมการเจริญเติบโตของพืช
และชุดของพวกเขาเพื่อที่จะควบคุมระดับของความแตกต่างของเนื้อเยื่อ
และเพิ่มการผลิตมวลชีวภาพ เป้าหมายของเราคือการเพิ่มการเจริญเติบโตมวลชีวภาพและแคลลัสเกิด

ที่จุดเริ่มต้นของการปลูกบนพื้นผิวของพื้นที่ตัดเพื่อที่จะได้เป็นหลายเซลล์
ที่มีศักยภาพที่จะฟอร์มรากมากที่สุด นี้จะก่อให้เกิด
ตามด้วยรากโดยตรง เรื่อง การคูณ สูงกว่าปริมาณของชิ้นส่วนพืช
เซลล์ อย่างไรก็ตาม ในด้านวรรณกรรม เรายังไม่พบอะไร
เกี่ยวกับอิทธิพลของหลายของ ( โดยเฉพาะอิทธิพลของไซโทไคนินแตกต่าง

) และของพวกเขาในการสร้างเนื้อเยื่อในรากโสมปากดี . ดังนั้นเราจึงพบว่ามันสมเหตุสมผล

แบบทดสอบต่าง ๆรวมกันในระดับ– ) ซึ่งในระบบหลอดทดลองเพื่อศึกษาอิทธิพลของการเกิด

ด้านข้างในรากโสม ในการทดลองของเรา ออกซินที่ใช้ในการกระตุ้นการเพิ่มและการคูณ
ไซโตไคนินรากราก โดย
วัฒนธรรมอวัยวะมักจะต้องการพื้นที่มากขึ้น การใช้ระบบ TCL ได้
ประหยัดพื้นที่และอนุญาตให้เราทดสอบ
ชุดเพิ่มเติมเราพบว่า 2 , 4-D ยับยั้งการกระตุ้นราก นี้จะสอดคล้องกับผลการวิจัยของ
bonfill et al . ( 2545 ) ที่เติม 2 , 4-D กัน
รายงานว่าได้ลดลง organogenic ความจุ
เมื่อออกซิน ( IBA และ NAA ) ทดสอบโสม แคลลัส .
ยัง มันเป็นที่รู้จักกันดีว่า 2 , 4-D ค่อนข้างส่งเสริมการแบ่งเซลล์ และกล้าหาญกว่าแกโนเจเนซีส
. ชนิดของออกซินยัง