2.2. PlantTomato seedlings were gro

2.2. Plant
Tomato seedlings were grown in pots containing perlite as a
medium for 14 days. After that, pots were transferred to the growth
bed components of aquaponic and hydroponic systems. Plants
grown in hydroponic systems were nourished with a nutrient solution
consisted of: 2.5mMCa(NO3)2·4H2O, 0.2mMKH2PO4, 0.2mM
K2SO4, 0.3mMMgSO4·7H2O, 0.1mMNaCl, 20MFe-EDDHA, 7M
MnSO4·H2O, 0.7M ZnCl2, 0.8mM CuSO4·5H2O, 2M H3BO3,
and 0.8M Na2MoO4·2H2O. Solutions were changed completely
every week in the first couple of weeks and subsequently every
4th day in hydroponic system. Deionized water was used for nutrient
solution making in hydroponic system. Tape water was used
in aquaponic system. The only nutrient supplementation in plant
growth bed unit of aquaponic systems was Fe, which was added in
a chelated form (Fe-EDDHA) at a concentration of 2mg L−1 once
every two weeks. Eight plants were growing together in each
growth bed unit of aquaponic and hydroponic systems. Foliar nutrients
application began 30 days after transplantation by which time
plants had attained enough leaf area for effective foliar application.
Eight treatments were used, untreated control, foliar application at
the rate of 250mLplant−1 with 0.5 g L−1 K2SO4, MgSO4·7H2O, Fe-
EDDHA, MnSO4·H2O, H3BO3, ZnCl2, and CuSO4·5H2O. Plants were
sprayed twice a month. Tomato plants were trellised to overhead
wires and pruned to a single leader stem. Fruit were harvested
every week after 84–106 days after transplanting. Early yield, fruit
number, cluster number and single fruit mass were calculated from
fruits in the first three harvests.
The plants were grown in a greenhouse with 13 h light phase
(26±3 ◦C) and 11 h dark phase (22±3 ◦C). Greenhouse temperature
was controlled using cool air following into greenhouse from
central cooler. The relative humidity was 52.4–63.2%.
The experiment was conducted for 108 days. At the end of the
experiments, the shoot length (SL), node number (NN) and the
leaf number (LN) were recorded. The plant organs (roots, leaves,
and stems) were harvested, weighed, oven-dried (48 h at 72 ◦C) for
determination of leaf fresh mass (LFM), stem fresh mass (SFM), root
fresh mass (RFM), leaf dry mass (LDM), stem dry mass (SDM) and
root dry mass (RDM).
2.3. Chemical analysis
Standard methods were used to measure pH, total alkalinity,
total dissolved solids (TDS), total ammonia-nitrogen (TAN), nitritenitrogen
and nitrate-nitrogen once every week at two locations in
the systems. Dissolved oxygen (DO) and water temperature were
measured periodically. Samples for water quality analysis were
collected at the influent and effluent of the growth bed tanks.
The level of chlorophyll in the youngest expanded leaves and
old leaves was recorded by taking SPAD (chlorophyll content)
readings with a SPAD-502 Chlorophyll Meter (Minolta Camera Co.
Ltd., Japan). Chlorophyll a, chlorophyll b and carotenoids were
extracted from leaf tissue with methanol and estimated according
to Lichtenthaler and Wellburn (1983). Second leaves from top
(young leaves) and bottom (old leaves) were used for the measurement
of chlorophyll fluorescence using a Plant Efficiency Analyzer,

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2. โรงงานกล้าไม้มะเขือเทศที่ปลูกในกระถางประกอบด้วย perlite เป็นการกลางวัน 14 หลังจากนั้น หม้อถูกโอนย้ายไปเจริญเติบโตส่วนประกอบเตียง aquaponic และระบบสี พืชปลูกในระบบสีถูกหล่อเลี้ยง ด้วยโซลูชั่นธาตุอาหารประกอบด้วย: 2.5mMCa (NO3) 2·4H2O, 0.2mMKH2PO4, 0.2 mMK2SO4, 0.3mMMgSO4·7H2O, 0.1mMNaCl, 20 ที่ MFe-EDDHA, 7 MMnSO4·H2O, ZnCl2 0.7 M, 0.8 มม. CuSO4·5H2O, H3BO3 2 Mและ 0.8 M Na2MoO4·2H2O โซลูชั่นที่มีการเปลี่ยนแปลงทั้งหมดทุกสัปดาห์ในคู่แรก ของสัปดาห์ และในเวลาต่อมาทุกวันที่ 4 ในระบบสี ใช้สำหรับสารน้ำ deionizedทำการแก้ไขปัญหาในระบบสี ใช้น้ำเทปในระบบ aquaponic แห้งเสริมเฉพาะธาตุอาหารในพืชหน่วยเตียงเจริญเติบโตของระบบ aquaponic มี Fe ที่ถูกเพิ่มในฟอร์ม chelated (Fe-EDDHA) ที่ความเข้มข้น 2 มิลลิกรัม L−1 ครั้งทุกสองสัปดาห์ แปดพืชเติบโตร่วมกันในแต่ละหน่วยเตียงเจริญเติบโตของ aquaponic และระบบสี สารอาหาร foliarโปรแกรมประยุกต์เริ่มต้น 30 วันหลังจากปลูกตามเวลาที่พืชมีได้ตั้งใบเพียงพอสำหรับโปรแกรมประยุกต์ foliar มีประสิทธิภาพรักษาแปดถูกควบคุมไม่ถูกรักษา ใช้ ประยุกต์ foliar ที่อัตราของ 250mLplant−1 กับ 0.5 g L−1 K2SO4, MgSO4·7H2O, Fe-EDDHA, MnSO4·H2O, H3BO3, ZnCl2 และ CuSO4·5H2O พืชได้พ่นสองเดือน มะเขือเทศพืชถูก trellised กับค่าใช้จ่ายในสาย และล้างให้ก้านเดียวผู้นำ มีการเก็บเกี่ยวผลไม้ทุกสัปดาห์หลังจากวันที่ 84-106 หลัง transplanting ผลผลิตต้น ผลไม้หมายเลข หมายเลขของคลัสเตอร์ และมวลผลไม้เดียวถูกคำนวณจากผลไม้ใน harvests สามก่อนพืชที่ปลูกในเรือนกระจกด้วยระยะแสง 13 h(26±3 ◦C) และ 11 h มืดระยะ (22±3 ◦C) เรือนกระจกอุณหภูมิถูกควบคุมการใช้อากาศเย็นดังต่อไปนี้ลงในเรือนกระจกจากเย็นกลาง ความชื้นสัมพัทธ์ 52.4-63.2%มีดำเนินการทดลองวัน 108 เมื่อสิ้นสุดการทดลอง ยิงยาว (SL), หมายเลขโหนด (NN) และจำนวนใบไม้ (LN) ถูกบันทึกไว้ อวัยวะพืช (ราก ใบและลำต้น) ถูกเก็บเกี่ยว ชั่ง น้ำหนัก เตาอบแห้ง (48 h ที่ 72 ◦C) สำหรับกำหนดมวลสดใบไม้ (LFM), เกิดมวลสด (SFM), รากมวลสด (RFM), ใบไม้แห้งมวล (ตา LDM), เกิดมวลแห้ง (SDM) และรากแห้งมวล (RDM)2.3. เคมีวิเคราะห์ใช้วิธีการมาตรฐานในการวัดค่า pH น้ำยารวมรวมละลายของแข็ง (TDS), แอมโมเนียไนโตรเจน (ตาล), nitritenitrogenและไนเตรตไนโตรเจนครั้งทุกสัปดาห์ที่สองตำแหน่งในระบบ ปริมาณออกซิเจนละลาย (DO) และอุณหภูมิน้ำวัดเป็นระยะ ๆ ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์คุณภาพน้ำได้รวบรวมที่ influent และน้ำของถังเตียงเจริญเติบโตระดับของคลอโรฟิลล์ในลูกขยายออก และใบเก่าถูกบันทึกด้วยค่า (คลอโรฟิลล์เนื้อหา)อ่าน ด้วยเครื่องวัดค่า-502 คลอโรฟิลล์ (Minolta กล้อง จำกัดจำกัด ญี่ปุ่น) คลอโรฟิลล์เอ คลอโรฟิลล์บี และ carotenoidsสกัดจากเนื้อเยื่อใบกับเมทานอลและการประเมินตามLichtenthaler และ Wellburn (1983) ใบที่สองจากด้านบน(ใบเล็ก) และล่าง (ใบเก่า) ใช้สำหรับการประเมินของคลอโรฟิลล์ fluorescence ใช้กับพืชมีประสิทธิภาพวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2 พืช
ต้นกล้ามะเขือเทศที่ปลูกในกระถางที่มี perlite เป็น
สื่อกลางในการ 14 วัน หลังจากนั้นหม้อถูกย้ายไปที่การเจริญเติบโตของ
ส่วนประกอบเตียงของระบบ aquaponic และ Hydroponic พืช
ที่ปลูกในระบบไฮโดรโพนิถูกหล่อเลี้ยงด้วยสารละลายธาตุอาหาร
ประกอบด้วย: 2.5mMCa (NO3) 2 · 4H2O, 0.2mMKH2PO4, 0.2mm
K2SO4, 0.3mMMgSO4 · 7H2O, 0.1mMNaCl, 20 MFE-EDDHA 7 M?
MnSO4 · H2O 0.7? M ZnCl2 0.8 มิลลิเมตร CuSO4 · 5H2O, 2 หรือไม่? M H3BO3,
และ 0.8? M Na2MoO4 · 2H2O การแก้ปัญหาที่มีการเปลี่ยนแปลงอย่างสมบูรณ์
ทุกสัปดาห์ในคู่แรกของสัปดาห์ที่ผ่านมาและต่อมาทุก
วันที่ 4 ในระบบไฮโดรโพนิ น้ำกลั่นที่ใช้สำหรับสารอาหารที่
ทำให้การแก้ปัญหาในระบบไฮโดรโพนิ เทปน้ำถูกนำมาใช้
ในระบบ aquaponic เพียง แต่การเสริมสารอาหารในโรงงาน
หน่วยเตียงการเจริญเติบโตของระบบ aquaponic เป็นเฟซึ่งถูกเพิ่มเข้ามาใน
รูปแบบคีเลต (Fe-EDDHA) ที่ความเข้มข้น L-1 2mg ครั้ง
ทุกสองสัปดาห์ แปดพืชกำลังเติบโตด้วยกันในแต่ละ
หน่วยเตียงการเจริญเติบโตของระบบ aquaponic และ Hydroponic สารอาหารทางใบ
สมัครเริ่ม 30 วันหลังการปลูกโดยที่ช่วงเวลา
ที่พืชได้บรรลุพื้นที่มากพอสำหรับการใช้งานใบทางใบที่มีประสิทธิภาพ
การรักษาแปดถูกนำมาใช้ควบคุมการรับการรักษาทางใบที่
อัตราการ 250mLplant-1 กับ 0.5 กรัม L-1 K2SO4, MgSO4 · 7H2O , Fe-
EDDHA, MnSO4 · H2O, H3BO3, ZnCl2 และ CuSO4 · 5H2O พืชได้รับการ
ฉีดพ่นเดือนละสองครั้ง มะเขือเทศถูก trellised กับค่าใช้จ่าย
สายไฟและตัดแต่งกับก้านเป็นผู้นำเดี่ยว ผลไม้ที่ถูกเก็บเกี่ยว
ทุกสัปดาห์หลังจากที่ 84-106 วันหลังจากย้ายปลูก ผลผลิตต้นผลไม้
จำนวนจำนวนกลุ่มและมวลผลไม้เดียวจะถูกคำนวณจาก
ผลไม้ในสามคนแรกเก็บเกี่ยว
พืชที่ปลูกในเรือนกระจกที่มี 13 ชั่วโมงช่วงแสง
(26 ± 3 ◦C) และ 11 ชั่วโมงขั้นตอนมืด (22 ± 3 ◦C) อุณหภูมิเรือนกระจก
ที่ถูกควบคุมโดยใช้อากาศเย็นต่อไปนี้ลงเรือนกระจกจาก
เย็นกลาง ความชื้นสัมพัทธ์เป็น 52.4-63.2%
การทดลองดำเนินการ 108 วัน ในตอนท้ายของ
การทดลองระยะเวลาในการถ่ายภาพ (SL) จำนวนโหนด (NN) และ
จำนวนใบ (LN) ที่ถูกบันทึกไว้ อวัยวะพืช (รากใบ,
และลำต้น) ได้รับการเก็บเกี่ยวชั่งน้ำหนัก, เตาอบแห้ง (48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 72 ◦C) สำหรับ
ความมุ่งมั่นของใบสดมวล (LFM) ลำต้นมวลสด (SFM) ราก
มวลสด (RFM) ใบมวลแห้ง (LDM) ลำต้นมวลแห้ง (SDM) และ
รากมวลแห้ง (RDM)
2.3 วิเคราะห์ทางเคมี
วิธีการมาตรฐานถูกนำมาใช้ในการวัดค่าความเป็นกรดเป็นด่างรวม
สารที่ละลายได้ทั้งหมด (TDS) รวมแอมโมเนียไนโตรเจน (TAN) nitritenitrogen
และไนเตรทไนโตรเจนครั้งทุกสัปดาห์ที่สองสถานที่ใน
ระบบ ปริมาณออกซิเจนละลายน้ำ (DO) และอุณหภูมิของน้ำได้รับการ
วัดระยะ ตัวอย่างสำหรับการตรวจวิเคราะห์คุณภาพน้ำถูก
เก็บที่มีอิทธิพลและน้ำทิ้งของถังเตียงเจริญเติบโต
ระดับของคลอโรฟิลในใบขยายตัวที่อายุน้อยที่สุดและ
ใบเก่าที่ถูกบันทึกไว้โดยการ SPAD (ปริมาณคลอโรฟิล)
อ่านกับ SPAD-502 Chlorophyll Meter (กล้อง Minolta จำกัด
จำกัด , ญี่ปุ่น) คลอโรฟิล, คลอโรฟิลบีและนอยด์ถูก
สกัดจากเนื้อเยื่อใบที่มีเมทานอลและประมาณตาม
ที่ Lichtenthaler และ Wellburn (1983) ใบที่สองจากด้านบน
(ใบอ่อน) และด้านล่าง (ใบเก่า) ถูกนำมาใช้สำหรับการวัด
การเรืองแสงของคลอโรฟิลโดยใช้ประสิทธิภาพของโรงงาน Analyzer,

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . ต้นกล้ามะเขือเทศพืช
ถูกปลูกในกระถางที่มีเพอร์ไลท์เป็น
ขนาดกลางสำหรับ 14 วัน หลังจากนั้น หม้อที่ถูกโอนไปยังการเจริญเติบโต
เตียงและองค์ประกอบของระบบ Aquaponic hydroponic . พืชที่ปลูกในระบบไฮโดรโพนิกส์
ถูกหล่อเลี้ยงด้วยสารละลายธาตุอาหาร
ประกอบด้วย 2.5mmca ( 3 ) 2 ด้วย 4h2o 0.2mmkh2po4 0.2mm , ,
k2so4 0.3mmmgso4 7h2o 0.1mmnacl , ด้วย , 20  mfe eddha 7  M
mnso4 ด้วย H2O , 0.7  M zncl2 , 0 .8  มม. CuSO4 ด้วยอิเล็กทร 2  h3bo3
M , และ 0.8%  M na2moo4 ด้วย 2H2O-dx โซลูชั่น ถูกเปลี่ยนอย่างสมบูรณ์
ทุกสัปดาห์ในช่วงสองสัปดาห์แรก และต่อมาทุก
4 วันในระบบ hydroponic . คล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำใช้สารละลายธาตุอาหาร
ทำในระบบ hydroponic . เทปน้ำหยดที่ใช้ในระบบ Aquaponic
. เพียงการเสริมสารอาหารในการเจริญเติบโตเตียง
หน่วยระบบ Aquaponic เป็นเหล็กที่ถูกเพิ่มเข้ามาในการคีเลตแบบฟอร์ม ( Fe eddha ) ที่ระดับความเข้มข้น Nicotinell L − 1 ครั้ง
ทุกสองสัปดาห์ แปดพืชปลูกรวมกันในแต่ละ
เตียงหน่วยระบบ Aquaponic hydroponic การเจริญเติบโตและ . รัง
ใบโปรแกรมเริ่ม 30 วัน หลังการปลูก ซึ่งเวลา
พืชได้บรรลุเพียงพอพื้นที่ใบ เพื่อการประยุกต์ใช้ทางใบที่มีประสิทธิภาพ .
8 การทดลองใช้สารควบคุมใบงานที่
อัตรา 250mlplant − 1 0.5 g L − 1 k2so4 MgSO4 ใ 7h2o , ด้วย , Fe -
eddha mnso4 ด้วย , H2O , h3bo3 zncl2 CuSO4 , และอิเล็กด้วย พืชมี
ฉีดเดือนละ 2 ครั้ง มะเขือเทศเป็นพืช trellised สายค่าใช้จ่าย
และ pruned ก้านผู้นำเดี่ยว ผลเก็บเกี่ยว
ทุกสัปดาห์หลังจาก 84 – 106 วัน หลังย้ายกล้า ผลผลิตแรกจำนวนผลไม้
,หมายเลขกลุ่มและมวลผลไม้เดียวถูกคำนวณจากผลไม้ใน 3

แต่แรก ปลูกในเรือนกระจกด้วย 13 H
เฟสแสง ( 26 ± 3 ◦ C ) และ 11 H ด้านมืด ( 22 ± 3 ◦ C )
อุณหภูมิเรือนกระจกถูกควบคุมโดยใช้อากาศเย็นต่อไปนี้ลงในเรือนกระจกจาก
กลางเย็น ความชื้นสัมพัทธ์เป็น 52.4 – 63.2 %
กลุ่มตัวอย่าง 108 วัน ในตอนท้ายของ
การทดลองยิงยาว ( SL ) , โนดหมายเลข ( NN ) และ
จำนวนใบ ( LN ) ถูกบันทึกไว้ พืชอวัยวะ ( ราก , ใบ ,
) ) เก็บ , ชั่งน้ำหนัก , เตาอบแห้ง ( 48 ชั่วโมง 72 ◦ C )
หาใบสดของมวล ( lfm ) , ก้านมวลสด ( sfm ) ราก
สดมวล ( rfm ) , ใบแห้ง ( ldm ) , มวล ( ต้นแห้ง SDM ) และรากแห้ง ( rdm )
.
2.3 การวิเคราะห์ทางเคมี
วิธีมาตรฐานที่ใช้ในการวัดค่าความเป็นด่างรวม
ของแข็งทั้งหมด ( TDS ) แอมโมเนีย - ไนโตรเจนรวม ( ตัน ) และ nitritenitrogen
ไนเตรทไนโตรเจนทุกสัปดาห์ที่ 2 สถานที่ใน
ระบบ ปริมาณออกซิเจนที่ละลายในน้ำ ( ทำ ) และอุณหภูมิน้ำ
วัดเป็นระยะ ๆ ตัวอย่างเพื่อวิเคราะห์คุณภาพน้ำ
เก็บที่เข้าและออกของการเจริญเติบโต
เตียงรถถังระดับของคลอโรฟิลล์ในใบ และขยายอายุใบเก่าที่ถูกบันทึกไว้โดยการ
สปาด ( คลอโรฟิลล์ )
อ่านด้วย spad-502 เครื่องวัดคลอโรฟิลล์ ( Minolta กล้อง Co .
( ญี่ปุ่น ) คลอโรฟิลล์ , คลอโรฟิลล์ บี และแคโรทีนอยด์ที่สกัดจากใบและเนื้อเยื่อด้วย

จะ lichtenthaler เมทานอลและประมาณการตาม และ wellburn ( 1983 ) ใบที่สองจากด้านบน
( ใบเล็ก ) และด้านล่าง ( ใบเก่า ) สถิติที่ใช้ในการวัด
ของคลอโรฟิลล์ฟลูออเรสเซนซ์ใช้ประสิทธิภาพพืชวิเคราะห์