- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
Transfer to the Indigenous Communit
Transfer to the Indigenous Community
The capability to measure transformation of DNA in natural
microbial communities has challenged investigators for
years. Nearly all such attempts have used closed
microcosms. However, the work of Day and Fry (Williams
et al., 1992; Williams et al., 1996) is unique in that an
indigenous mercury resistance plasmid (pQM17) was used
in the river from which it was isolated in open filter matings.
Stones with filters containing the donors or DNA were
placed next to stones containing recipients. Transfer
occurred with frequencies ranging from 10-6 to 10-4 per
recipient. A significant effect of temperature was observed,
with no transfer below 10 °C.
Natural transformation of indigenous marine bacteria
has been demonstrated by Frischer et al. (1994) using
plasmid multimers of pQSR50. Plasmid multimers were
used to ensure internal homology and thus provide a site
for self-homologous recombination. The ambient microbial
communities in water column samples (20 L) or coral
mucus (1 L) were first concentrated to approx. 50 ml and 1
ml used in filter transformation assays. For sediments and
bacteria in sponge tissue, the bacteria were extracted
mechanically and then used in filter transformation assays.
Transformation was assessed as expression of the
antibiotic resistance genes encoded by the plasmid in
combination with confirmation by molecular probing.
However, certain environments contained indigenous
marine bacteria that possessed sequences that hybridized
with the probe used and any such environments were not
considered further. Positive transformation was found in 5
of 13 experiments, with transfer frequencies ranging from
3.6x10-6 to 1.13x10-9. In all cases of plasmid transfer to
the natural community, restriction profiles from
transformants were altered when compared to the parent
plasmid. Differences in the recovered transformant
plasmids were accounted for by difference in methylation
compared to the parent plasmid, as well as some genetic
rearrangement (Williams et al., 1997). Thus, transfer to
the indigenous flora, at least when considering plasmid
DNA, can result in rearrangement and alteration of the
DNA, contributing to plasmid and recipient evolution.
The capability to measure transformation of DNA in natural
microbial communities has challenged investigators for
years. Nearly all such attempts have used closed
microcosms. However, the work of Day and Fry (Williams
et al., 1992; Williams et al., 1996) is unique in that an
indigenous mercury resistance plasmid (pQM17) was used
in the river from which it was isolated in open filter matings.
Stones with filters containing the donors or DNA were
placed next to stones containing recipients. Transfer
occurred with frequencies ranging from 10-6 to 10-4 per
recipient. A significant effect of temperature was observed,
with no transfer below 10 °C.
Natural transformation of indigenous marine bacteria
has been demonstrated by Frischer et al. (1994) using
plasmid multimers of pQSR50. Plasmid multimers were
used to ensure internal homology and thus provide a site
for self-homologous recombination. The ambient microbial
communities in water column samples (20 L) or coral
mucus (1 L) were first concentrated to approx. 50 ml and 1
ml used in filter transformation assays. For sediments and
bacteria in sponge tissue, the bacteria were extracted
mechanically and then used in filter transformation assays.
Transformation was assessed as expression of the
antibiotic resistance genes encoded by the plasmid in
combination with confirmation by molecular probing.
However, certain environments contained indigenous
marine bacteria that possessed sequences that hybridized
with the probe used and any such environments were not
considered further. Positive transformation was found in 5
of 13 experiments, with transfer frequencies ranging from
3.6x10-6 to 1.13x10-9. In all cases of plasmid transfer to
the natural community, restriction profiles from
transformants were altered when compared to the parent
plasmid. Differences in the recovered transformant
plasmids were accounted for by difference in methylation
compared to the parent plasmid, as well as some genetic
rearrangement (Williams et al., 1997). Thus, transfer to
the indigenous flora, at least when considering plasmid
DNA, can result in rearrangement and alteration of the
DNA, contributing to plasmid and recipient evolution.
0/5000
Transfer to the Indigenous Community
The capability to measure transformation of DNA in natural
microbial communities has challenged investigators for
years. Nearly all such attempts have used closed
microcosms. However, the work of Day and Fry (Williams
et al., 1992; Williams et al., 1996) is unique in that an
indigenous mercury resistance plasmid (pQM17) was used
in the river from which it was isolated in open filter matings.
Stones with filters containing the donors or DNA were
placed next to stones containing recipients. Transfer
occurred with frequencies ranging from 10-6 to 10-4 per
recipient. A significant effect of temperature was observed,
with no transfer below 10 °C.
Natural transformation of indigenous marine bacteria
has been demonstrated by Frischer et al. (1994) using
plasmid multimers of pQSR50. Plasmid multimers were
used to ensure internal homology and thus provide a site
for self-homologous recombination. The ambient microbial
communities in water column samples (20 L) or coral
mucus (1 L) were first concentrated to approx. 50 ml and 1
ml used in filter transformation assays. For sediments and
bacteria in sponge tissue, the bacteria were extracted
mechanically and then used in filter transformation assays.
Transformation was assessed as expression of the
antibiotic resistance genes encoded by the plasmid in
combination with confirmation by molecular probing.
However, certain environments contained indigenous
marine bacteria that possessed sequences that hybridized
with the probe used and any such environments were not
considered further. Positive transformation was found in 5
of 13 experiments, with transfer frequencies ranging from
3.6x10-6 to 1.13x10-9. In all cases of plasmid transfer to
the natural community, restriction profiles from
transformants were altered when compared to the parent
plasmid. Differences in the recovered transformant
plasmids were accounted for by difference in methylation
compared to the parent plasmid, as well as some genetic
rearrangement (Williams et al., 1997). Thus, transfer to
the indigenous flora, at least when considering plasmid
DNA, can result in rearrangement and alteration of the
DNA, contributing to plasmid and recipient evolution.
The capability to measure transformation of DNA in natural
microbial communities has challenged investigators for
years. Nearly all such attempts have used closed
microcosms. However, the work of Day and Fry (Williams
et al., 1992; Williams et al., 1996) is unique in that an
indigenous mercury resistance plasmid (pQM17) was used
in the river from which it was isolated in open filter matings.
Stones with filters containing the donors or DNA were
placed next to stones containing recipients. Transfer
occurred with frequencies ranging from 10-6 to 10-4 per
recipient. A significant effect of temperature was observed,
with no transfer below 10 °C.
Natural transformation of indigenous marine bacteria
has been demonstrated by Frischer et al. (1994) using
plasmid multimers of pQSR50. Plasmid multimers were
used to ensure internal homology and thus provide a site
for self-homologous recombination. The ambient microbial
communities in water column samples (20 L) or coral
mucus (1 L) were first concentrated to approx. 50 ml and 1
ml used in filter transformation assays. For sediments and
bacteria in sponge tissue, the bacteria were extracted
mechanically and then used in filter transformation assays.
Transformation was assessed as expression of the
antibiotic resistance genes encoded by the plasmid in
combination with confirmation by molecular probing.
However, certain environments contained indigenous
marine bacteria that possessed sequences that hybridized
with the probe used and any such environments were not
considered further. Positive transformation was found in 5
of 13 experiments, with transfer frequencies ranging from
3.6x10-6 to 1.13x10-9. In all cases of plasmid transfer to
the natural community, restriction profiles from
transformants were altered when compared to the parent
plasmid. Differences in the recovered transformant
plasmids were accounted for by difference in methylation
compared to the parent plasmid, as well as some genetic
rearrangement (Williams et al., 1997). Thus, transfer to
the indigenous flora, at least when considering plasmid
DNA, can result in rearrangement and alteration of the
DNA, contributing to plasmid and recipient evolution.
การแปล กรุณารอสักครู่..
Transfer to the Indigenous Community
The capability to measure transformation of DNA in natural
microbial communities has challenged investigators for
years. Nearly all such attempts have used closed
microcosms. However, the work of Day and Fry (Williams
et al., 1992; Williams et al., 1996) is unique in that an
indigenous mercury resistance plasmid (pQM17) was used
in the river from which it was isolated in open filter matings.
Stones with filters containing the donors or DNA were
placed next to stones containing recipients. Transfer
occurred with frequencies ranging from 10-6 to 10-4 per
recipient. A significant effect of temperature was observed,
with no transfer below 10 °C.
Natural transformation of indigenous marine bacteria
has been demonstrated by Frischer et al. (1994) using
plasmid multimers of pQSR50. Plasmid multimers were
used to ensure internal homology and thus provide a site
for self-homologous recombination. The ambient microbial
communities in water column samples (20 L) or coral
mucus (1 L) were first concentrated to approx. 50 ml and 1
ml used in filter transformation assays. For sediments and
bacteria in sponge tissue, the bacteria were extracted
mechanically and then used in filter transformation assays.
Transformation was assessed as expression of the
antibiotic resistance genes encoded by the plasmid in
combination with confirmation by molecular probing.
However, certain environments contained indigenous
marine bacteria that possessed sequences that hybridized
with the probe used and any such environments were not
considered further. Positive transformation was found in 5
of 13 experiments, with transfer frequencies ranging from
3.6x10-6 to 1.13x10-9. In all cases of plasmid transfer to
the natural community, restriction profiles from
transformants were altered when compared to the parent
plasmid. Differences in the recovered transformant
plasmids were accounted for by difference in methylation
compared to the parent plasmid, as well as some genetic
rearrangement (Williams et al., 1997). Thus, transfer to
the indigenous flora, at least when considering plasmid
DNA, can result in rearrangement and alteration of the
DNA, contributing to plasmid and recipient evolution.
The capability to measure transformation of DNA in natural
microbial communities has challenged investigators for
years. Nearly all such attempts have used closed
microcosms. However, the work of Day and Fry (Williams
et al., 1992; Williams et al., 1996) is unique in that an
indigenous mercury resistance plasmid (pQM17) was used
in the river from which it was isolated in open filter matings.
Stones with filters containing the donors or DNA were
placed next to stones containing recipients. Transfer
occurred with frequencies ranging from 10-6 to 10-4 per
recipient. A significant effect of temperature was observed,
with no transfer below 10 °C.
Natural transformation of indigenous marine bacteria
has been demonstrated by Frischer et al. (1994) using
plasmid multimers of pQSR50. Plasmid multimers were
used to ensure internal homology and thus provide a site
for self-homologous recombination. The ambient microbial
communities in water column samples (20 L) or coral
mucus (1 L) were first concentrated to approx. 50 ml and 1
ml used in filter transformation assays. For sediments and
bacteria in sponge tissue, the bacteria were extracted
mechanically and then used in filter transformation assays.
Transformation was assessed as expression of the
antibiotic resistance genes encoded by the plasmid in
combination with confirmation by molecular probing.
However, certain environments contained indigenous
marine bacteria that possessed sequences that hybridized
with the probe used and any such environments were not
considered further. Positive transformation was found in 5
of 13 experiments, with transfer frequencies ranging from
3.6x10-6 to 1.13x10-9. In all cases of plasmid transfer to
the natural community, restriction profiles from
transformants were altered when compared to the parent
plasmid. Differences in the recovered transformant
plasmids were accounted for by difference in methylation
compared to the parent plasmid, as well as some genetic
rearrangement (Williams et al., 1997). Thus, transfer to
the indigenous flora, at least when considering plasmid
DNA, can result in rearrangement and alteration of the
DNA, contributing to plasmid and recipient evolution.
การแปล กรุณารอสักครู่..
ถ่ายโอนไปยังชุมชนพื้นเมือง
ความสามารถวัดการเปลี่ยนแปลงดีเอ็นเอในประชากรจุลินทรีย์ธรรมชาติ
ได้ท้าทายนักวิจัยสำหรับปี เกือบทั้งหมดเช่นความพยายามใช้ปิด
microcosms . อย่างไรก็ตาม การทำงานของวันและทอด ( วิลเลียม
et al . , 1992 ; วิลเลี่ยม et al . , 1996 ) มีลักษณะเฉพาะที่เป็นชนพื้นเมือง ( pqm17 พลาสมิดต้านทานปรอท
) ถูกใช้ในแม่น้ำซึ่งเป็นสายพันธุ์ matings กรองเปิด
หินด้วยตัวกรองที่มีผู้บริจาค ( หรือดีเอ็นเอ
วางถัดจากหินที่มีผู้รับ โอน
เกิดขึ้นกับความถี่ตั้งแต่ 10-4 /
สามารถให้ผู้รับ เป็น ผลของอุณหภูมิพบว่า ไม่มีการโอนด้านล่าง
10 องศา ธรรมชาติการเปลี่ยนแปลงของแบคทีเรียทะเลพื้นเมือง
ได้ถูกแสดง โดย frischer et al . ( 1994 ) โดยใช้พลาสมิด
multimers ของ pqsr50 . พลาสมิด multimers ถูกใช้เพื่อให้แน่ใจว่าตัว
ภายในจึงให้เว็บไซต์
สำหรับตนเองการเปรียบเทียบ . ชุมชนจุลินทรีย์
บรรยากาศในตัวอย่างคอลัมน์น้ำ ( 20 ลิตร ) หรือเมือกของปะการัง
( 1 ลิตร ) เป็นคนแรกที่ความเข้มข้นประมาณ 50 มิลลิลิตร และ 1
ml ใช้ในการใช้ตัวกรอง สำหรับตะกอนและ
แบคทีเรียในเนื้อเยื่อฟองน้ำ แบคทีเรียที่ใช้ในเครื่องจักรแล้ว
) การแปลงการแปลงตัวกรอง และเป็นการแสดงออกของยีนต้านทานยาปฏิชีวนะ
ที่เข้ารหัสโดยพลาสมิดในการยืนยันโดยโมเลกุลละเอียด .
แต่สภาพแวดล้อมบางอย่างที่มีอยู่พื้นเมือง
จุลินทรีย์ที่มีลำดับที่ 3
กับการสอบสวน และใช้ใด ๆ เช่น สภาพแวดล้อมไม่ได้
พิจารณาต่อไป การเปลี่ยนแปลงในเชิงบวกที่พบใน 5
13 การทดลอง ด้วยการถ่ายทอดความถี่ตั้งแต่
3.6x10-6 เพื่อ 1.13x10-9 . ในทุกกรณีของการถ่ายโอนพลาสมิด
ชุมชนธรรมชาติจำกัดโปรไฟล์จาก
transformants มีการเปลี่ยนแปลงเมื่อเทียบกับผู้ปกครอง
พลาสมิด ความแตกต่างในการกู้คืน /
พลาสมิดถูกคิดโดยความแตกต่างในร่างกาย
เมื่อเทียบกับสายพันธุ์พ่อแม่ ตลอดจนการปรับปรุงพันธุกรรม
( วิลเลียม et al . , 1997 ) ดังนั้นการโอน
พืชพื้นเมืองอย่างน้อยเมื่อพิจารณาจากพลาสมิด
DNA สามารถส่งผลในการปรับปรุงและการเปลี่ยนแปลงของ
DNA เกิดพลาสมิดและวิวัฒนาการของผู้รับ
ความสามารถวัดการเปลี่ยนแปลงดีเอ็นเอในประชากรจุลินทรีย์ธรรมชาติ
ได้ท้าทายนักวิจัยสำหรับปี เกือบทั้งหมดเช่นความพยายามใช้ปิด
microcosms . อย่างไรก็ตาม การทำงานของวันและทอด ( วิลเลียม
et al . , 1992 ; วิลเลี่ยม et al . , 1996 ) มีลักษณะเฉพาะที่เป็นชนพื้นเมือง ( pqm17 พลาสมิดต้านทานปรอท
) ถูกใช้ในแม่น้ำซึ่งเป็นสายพันธุ์ matings กรองเปิด
หินด้วยตัวกรองที่มีผู้บริจาค ( หรือดีเอ็นเอ
วางถัดจากหินที่มีผู้รับ โอน
เกิดขึ้นกับความถี่ตั้งแต่ 10-4 /
สามารถให้ผู้รับ เป็น ผลของอุณหภูมิพบว่า ไม่มีการโอนด้านล่าง
10 องศา ธรรมชาติการเปลี่ยนแปลงของแบคทีเรียทะเลพื้นเมือง
ได้ถูกแสดง โดย frischer et al . ( 1994 ) โดยใช้พลาสมิด
multimers ของ pqsr50 . พลาสมิด multimers ถูกใช้เพื่อให้แน่ใจว่าตัว
ภายในจึงให้เว็บไซต์
สำหรับตนเองการเปรียบเทียบ . ชุมชนจุลินทรีย์
บรรยากาศในตัวอย่างคอลัมน์น้ำ ( 20 ลิตร ) หรือเมือกของปะการัง
( 1 ลิตร ) เป็นคนแรกที่ความเข้มข้นประมาณ 50 มิลลิลิตร และ 1
ml ใช้ในการใช้ตัวกรอง สำหรับตะกอนและ
แบคทีเรียในเนื้อเยื่อฟองน้ำ แบคทีเรียที่ใช้ในเครื่องจักรแล้ว
) การแปลงการแปลงตัวกรอง และเป็นการแสดงออกของยีนต้านทานยาปฏิชีวนะ
ที่เข้ารหัสโดยพลาสมิดในการยืนยันโดยโมเลกุลละเอียด .
แต่สภาพแวดล้อมบางอย่างที่มีอยู่พื้นเมือง
จุลินทรีย์ที่มีลำดับที่ 3
กับการสอบสวน และใช้ใด ๆ เช่น สภาพแวดล้อมไม่ได้
พิจารณาต่อไป การเปลี่ยนแปลงในเชิงบวกที่พบใน 5
13 การทดลอง ด้วยการถ่ายทอดความถี่ตั้งแต่
3.6x10-6 เพื่อ 1.13x10-9 . ในทุกกรณีของการถ่ายโอนพลาสมิด
ชุมชนธรรมชาติจำกัดโปรไฟล์จาก
transformants มีการเปลี่ยนแปลงเมื่อเทียบกับผู้ปกครอง
พลาสมิด ความแตกต่างในการกู้คืน /
พลาสมิดถูกคิดโดยความแตกต่างในร่างกาย
เมื่อเทียบกับสายพันธุ์พ่อแม่ ตลอดจนการปรับปรุงพันธุกรรม
( วิลเลียม et al . , 1997 ) ดังนั้นการโอน
พืชพื้นเมืองอย่างน้อยเมื่อพิจารณาจากพลาสมิด
DNA สามารถส่งผลในการปรับปรุงและการเปลี่ยนแปลงของ
DNA เกิดพลาสมิดและวิวัฒนาการของผู้รับ
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- had this dealer
- Next Generation Design
- Expiration
- รักครอบครัว
- คุณต้องการให้ฉันลบชื่อเขาออกใช่ไหม
- คุณรู้หรือไม่ว่าเป็ดกับไก่ที่เห็นอยู่กัน
- ขอให้
- ฉันว่าเขาชอบเธอ
- uneq
- ฉันไม่ได้หยิ่ง
- do you have a postal address for a send
- บรรณารักษ์
- Your only one who i did feel anything fo
- Water Spinning cantaloupe.
- the genetic impact of population fragmen
- Come in my lap
- spread
- Don't break this
- Miss food like round mums
- ฉันดีใจมากที่ได้ไปเที่ยวกับเพื่อนๆเเละคร
- ไม่ถูก
- อยู่ที่จะมอง
- taught
- pain
