Gene mutations in vivoIn vivo assay

Gene mutations in vivo
In vivo assays involve treating intact animal and analyzing appropriate tissues for genetic effects. The choice of suitable doses, treatment procedures, controls, and sample sizes is critical in the conduct of in vivo tests. Mutations may be detected either in somatic cells or in germ cell. The latter are of special interest with respect to risk for future generations. The mouse spot test is a tradition genetic assay for gene mutation in somatic cell. Visible spot of altered phenotype in mice heterozygous for coat-colored genes indicate mutations in the progenitor cells of the altered regions. Although straightforward in design, the spot test is less used today than other somatic cell assays or than its germ cell counterpart, the mouse specific-locus test.
Cells that are amenable to positive selection for mutants when collected from intact animals from the basis for efficient in vivo mutation-detection assays analogous to those in mammalian cell cultures. Lymphocytes with mutations in the HPRT gene are readily detected by selection for resistance to 6-thioguanine. The hprt assay in mice, rats, and monkeys is of special interest because it permits comparisons to the measurement of HPRT mutation in humans in mutational monitoring.
The Pig-a assay is a newer assay that has versions suitable for human monitoring and laboratory studies. The assay detects mutations that block GPI synthesis. Pig-a is a sex-linked gene whose gene product functions as an anchor for cell-surface proteins. Mutations in Pig-a can be detected in red blood cells from rats, mice, monkeys, and humans by means of fluorescent antibodies against GPI-anchored cell-surface proteins, such as CD59. Using antibodies to more than one GPI-linked marker has been suggested as a means of making the assay specific to Pig-a cells using proaerolysin (ProAER) selection or by flow cytometry. The fact that the same assay can be performed in several species makes this a promising assay for comparisons of human monitoring and controlled exposures in laboratory animals.
Besides determining whether agents are mutagenic, mutation assays provide information on mechanisms of mutagenesis that contributes to an understanding of mutational hazards. Base pair substitutions and large deletions, which may be indistinguishable on the basis of phenotype, can be differentiated through the use of probes for the target gene and Southern blotting , in that use base substitutions are too subtle to be detectable on the blots, whereas gross structural alterations are visible. Molecular analysis has been used to determine proportions of mutations ascribable to deletions and other structural alterations in several assays, including the specific-locus test for germ cell mutations in mice and the human HPRT assay. Gene mutations have been characterized at the molecular level by DNA sequence analysis both in transgenic rodents and in endogenous mammalian genes. Many HPRT mutations from human cells in vitro and in vivo have been analyzed at the molecular level and classified with respect to base pair substitutions, frame shifts, small deletions, large deletions, and other alterations.

Gene mutations in vivo
In vivo assays involve treating intact animal and analyzing appropriate tissues for genetic effects. The choice of suitable doses, treatment procedures, controls, and sample sizes is critical in the conduct of in vivo tests. Mutations may be detected either in somatic cells or in germ cell. The latter are of special interest with respect to risk for future generations. The mouse spot test is a tradition genetic assay for gene mutation in somatic cell. Visible spot of altered phenotype in mice heterozygous for coat-colored genes indicate mutations in the progenitor cells of the altered regions. Although straightforward in design, the spot test is less used today than other somatic cell assays or than its germ cell counterpart, the mouse specific-locus test.
 Cells that are amenable to positive selection for mutants when collected from intact animals from the basis for efficient in vivo mutation-detection assays analogous to those in mammalian cell cultures. Lymphocytes with mutations in the HPRT gene are readily detected by selection for resistance to 6-thioguanine. The hprt assay in mice, rats, and monkeys is of special interest because it permits comparisons to the measurement of HPRT mutation in humans in mutational monitoring.
 The Pig-a assay is a newer assay that has versions suitable for human monitoring and laboratory studies. The assay detects mutations that block GPI synthesis. Pig-a is a sex-linked gene whose gene product functions as an anchor for cell-surface proteins. Mutations in Pig-a can be detected in red blood cells from rats, mice, monkeys, and humans by means of fluorescent antibodies against GPI-anchored cell-surface proteins, such as CD59. Using antibodies to more than one GPI-linked marker has been suggested as a means of making the assay specific to Pig-a cells using proaerolysin (ProAER) selection or by flow cytometry. The fact that the same assay can be performed in several species makes this a promising assay for comparisons of human monitoring and controlled exposures in laboratory animals.
 Besides determining whether agents are mutagenic, mutation assays provide information on mechanisms of mutagenesis that contributes to an understanding of mutational hazards. Base pair substitutions and large deletions, which may be indistinguishable on the basis of phenotype, can be differentiated through the use of probes for the target gene and Southern blotting , in that use base substitutions are too subtle to be detectable on the blots, whereas gross structural alterations are visible. Molecular analysis has been used to determine proportions of mutations ascribable to deletions and other structural alterations in several assays, including the specific-locus test for germ cell mutations in mice and the human HPRT assay. Gene mutations have been characterized at the molecular level by DNA sequence analysis both in transgenic rodents and in endogenous mammalian genes. Many HPRT mutations from human cells in vitro and in vivo have been analyzed at the molecular level and classified with respect to base pair substitutions, frame shifts, small deletions, large deletions, and other alterations.

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

กลายพันธุ์ในยีนในสัตว์ทดลองในสัตว์ทดลอง assays เกี่ยวข้องกับการรักษาสัตว์เหมือนเดิม และการวิเคราะห์เนื้อเยื่อที่เหมาะสมสำหรับลักษณะพิเศษทางพันธุกรรม เลือกปริมาณที่เหมาะสม วิธีรักษา ควบคุม และขนาดตัวอย่างมีความสำคัญในการดำเนินการทดสอบในสัตว์ทดลอง อาจสามารถตรวจพบการกลายพันธุ์ ในเซลล์มาติก หรือ ในเซลล์จมูก หลังได้รับความสนใจเป็นพิเศษกับความเสี่ยงสำหรับอนุชนรุ่นหลัง การทดสอบจุดเมาส์วิเคราะห์ประเพณีการพันธุกรรมการกลายพันธุ์ของยีนในเซลล์มาติกได้ มองเห็นจุดของ phenotype เปลี่ยนในหนู heterozygous สำหรับเสื้อสียีนบ่งชี้กลายพันธุ์ในเซลล์ progenitor ในภูมิภาคเปลี่ยนแปลง แม้ว่าตรงไปตรงมาในการออกแบบ การทดสอบจุดมีน้อยใช้วันนี้ assays มาติกเซลล์อื่น ๆ หรือ กว่าของเจิร์มเซลล์ กัน การทดสอบเฉพาะโลกัสโพลเมาส์ เซลล์ที่จะคล้อยตามการตกเลือกบวกสำหรับสายพันธุ์เมื่อรวบรวมจากสัตว์เหมือนเดิมจากพื้นฐานคล้ายคลึงกับในวัฒนธรรมเซลล์ mammalian assays ในสัตว์ทดลองมีประสิทธิภาพตรวจการกลายพันธุ์ การต้านทานการ 6 thioguanine พร้อมพบการ lymphocytes ด้วยกลายพันธุ์ในยีน HPRT ทดสอบ hprt ในหนู หนู ลิงคือความสนใจเป็นพิเศษเนื่องจากจะอนุญาตให้เปรียบเทียบการประเมินของ HPRT การกลายพันธุ์ในมนุษย์ในการตรวจสอบ mutational หมูการทดสอบจะทดสอบรุ่นใหม่ที่มีรุ่นที่เหมาะสำหรับมนุษย์ศึกษาตรวจสอบและปฏิบัติ ทดสอบตรวจพบการกลายพันธุ์ที่บล็อก GPI สังเคราะห์ หมูที่มียีนแบบ sex-linked ผลิตภัณฑ์ยีนที่มีหน้าที่เป็นหลักยึดพื้นผิวเซลล์โปรตีน สามารถพบการกลายพันธุ์ในหมูได้ในเซลล์เม็ดเลือดแดงจากหนู หนู ลิง และมนุษย์หมายถึงโดยแอนตี้เรืองแสงกับ GPI ยึดเซลล์ผิวโปรตีน เช่น CD59 ใช้แอนตี้การทำเครื่องหมายมากกว่าหนึ่งลิงค์ GPI ได้ถูกแนะนำเป็นวิธีการที่ทำการทดสอบเฉพาะหมูเป็นเซลล์ที่ใช้ตัวเลือก proaerolysin (ProAER) หรือเซลล์กระแส ความจริงที่ว่า สามารถดำเนินการวิเคราะห์เดียวกันในหลายชนิดช่วยให้วิเคราะห์แนวโน้มการเปรียบเทียบบุคคลตรวจสอบและควบคุมการถ่ายภาพในห้องปฏิบัติการสัตว์ นอกจากการกำหนดว่า ตัวแทนมี mutagenic, assays กลายพันธุ์ให้ข้อมูลเกี่ยวกับกลไกของ mutagenesis ที่สนับสนุนความเข้าใจเกี่ยวกับอันตราย mutational ฐานคู่แทนและลบขนาดใหญ่ ซึ่งอาจจะจำแนกไม่ได้ตาม phenotype สามารถแยกแยะโดยใช้คลิปปากตะเข้ยีนเป้าหมายและ blotting วิธีภาคใต้ ที่ใช้แทนฐานจะละเอียดเกินไปจะสามารถตรวจสอบได้บนกันบล็อท ในขณะที่การเปลี่ยนแปลงโครงสร้างขั้นต้นจะเห็น วิเคราะห์ระดับโมเลกุลได้ถูกใช้เพื่อกำหนดสัดส่วนของ ascribable เมื่อต้องการลบและการเปลี่ยนแปลงทางโครงสร้างอื่น ๆ ใน assays หลาย รวมทั้งทดสอบเฉพาะโลกัสโพลเจิร์มเซลล์กลายพันธุ์ในหนูและการวิเคราะห์ HPRT มนุษย์กลายพันธุ์ ได้ถูกลักษณะกลายพันธุ์ของยีนในระดับโมเลกุล โดยการวิเคราะห์ลำดับดีเอ็นเอ ในงานถั่วเหลือง ทั้ง ใน mammalian ยีน endogenous มีการวิเคราะห์ระดับโมเลกุล และจัดกับแทนฐานคู่ กะเฟรม เล็กลบ ลบขนาดใหญ่ และเปลี่ยนแปลงอื่น ๆ HPRT มากมายที่กลายพันธุ์จากเซลล์มนุษย์ในหลอดทดลอง และในสัตว์ทดลอง

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

การกลายพันธุ์ของยีนในร่างกายในการตรวจร่างกายที่เกี่ยวข้องกับการรักษาสัตว์เหมือนเดิมและการวิเคราะห์เนื้อเยื่อที่เหมาะสมสำหรับผลกระทบทางพันธุกรรม ทางเลือกของปริมาณที่เหมาะสมขั้นตอนการรักษาควบคุมและขนาดตัวอย่างเป็นสิ่งสำคัญในการดำเนินการในร่างกายการทดสอบ การกลายพันธุ์อาจถูกตรวจพบทั้งในเซลล์ร่างกายหรือเซลล์สืบพันธุ์ หลังมีความสนใจเป็นพิเศษเกี่ยวกับการความเสี่ยงสำหรับคนรุ่นอนาคต การทดสอบจุดเมาส์เป็นประเพณีการทดสอบทางพันธุกรรมกลายพันธุ์ของยีนในเซลล์ร่างกาย จุดที่มองเห็นได้ของฟีโนไทป์เปลี่ยนแปลงในหนู heterozygous ยีนสีเสื้อบ่งบอกถึงการกลายพันธุ์ในเซลล์ต้นกำเนิดในภูมิภาคเปลี่ยนแปลง แม้ว่าจะตรงไปตรงมาในการออกแบบการทดสอบจุดที่มีการใช้น้อยกว่านี้การตรวจเซลล์ร่างกายอื่น ๆ หรือกว่าคู่ของเซลล์สืบพันธุ์ทดสอบเมาส์สถานที่เฉพาะ.
เซลล์ที่มีหน้าที่ในการเลือกที่ดีสำหรับการกลายพันธุ์เมื่อเก็บรวบรวมจากสัตว์เหมือนเดิมจากพื้นฐานสำหรับการที่มีประสิทธิภาพ ในร่างกายการตรวจตรวจสอบการกลายพันธุ์คล้ายกับผู้ที่อยู่ในเซลล์เพาะเลี้ยงเลี้ยงลูกด้วยนม เซลล์เม็ดเลือดขาวที่มีการกลายพันธุ์ในยีน HPRT มีการตรวจพบได้อย่างง่ายดายโดยการเลือกความต้านทานต่อ 6 thioguanine การทดสอบ hprt ในหนูหนูและลิงเป็นที่สนใจเป็นพิเศษเพราะมันช่วยให้เปรียบเทียบกับการวัดการกลายพันธุ์ HPRT ในมนุษย์ในการตรวจสอบ mutational.
หมูแบบทดสอบทดสอบเป็นรุ่นใหม่ที่มีรุ่นที่เหมาะสมสำหรับการตรวจสอบของมนุษย์และการศึกษาในห้องปฏิบัติการ ทดสอบการกลายพันธุ์ที่ตรวจพบที่ปิดกั้นการสังเคราะห์ GPI หมูเป็นยีนที่มีเพศสัมพันธ์ที่เชื่อมโยงที่มีฟังก์ชั่นสินค้าที่เป็นที่ยึดเหนี่ยวของยีนโปรตีนผิวเซลล์ การกลายพันธุ์ในหมูสามารถตรวจพบในเซลล์เม็ดเลือดแดงจากหนูหนูลิงและมนุษย์โดยวิธีการของแอนติบอดีเรืองแสงกับ GPI-ทอดสมอโปรตีนผิวเซลล์เช่น CD59 ใช้แอนติบอดีมากกว่าหนึ่งเครื่องหมาย GPI เชื่อมโยงได้รับการแนะนำเป็นวิธีการที่ทำให้การทดสอบที่เฉพาะเจาะจงไปยังเซลล์หมูโดยใช้ proaerolysin (ProAER) หรือโดยการเลือกโฟ ความจริงที่ว่าการทดสอบเดียวกันสามารถดำเนินการในหลายสายพันธุ์นี้จะทำให้การวิเคราะห์แนวโน้มสำหรับการเปรียบเทียบของการตรวจสอบของมนุษย์และความเสี่ยงที่ควบคุมในสัตว์ทดลอง.
นอกจากนี้การพิจารณาว่าตัวแทนก่อกลายพันธุ์, การตรวจการกลายพันธุ์ให้ข้อมูลเกี่ยวกับกลไกของการกลายพันธุ์ที่ก่อให้เกิดความเข้าใจ อันตราย mutational แทนคู่ฐานและการลบขนาดใหญ่ซึ่งอาจจะแยกไม่ออกบนพื้นฐานของฟีโนไทป์ที่สามารถแตกต่างผ่านการใช้ยานสำรวจยีนเป้าหมายและซับภาคใต้ในการที่แทนฐานการใช้งานที่บอบบางเกินไปที่จะตรวจพบใน blots ในขณะที่กำไรขั้นต้น การปรับเปลี่ยนโครงสร้างจะมองเห็นได้ การวิเคราะห์โมเลกุลได้รับการใช้ในการกำหนดสัดส่วนของการกลายพันธุ์เนื่องมาในการลบและการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างในการตรวจหลายแห่งรวมถึงการทดสอบเฉพาะสถานที่สำหรับการกลายพันธุ์ของเซลล์สืบพันธุ์ในหนูและการทดสอบ HPRT มนุษย์ การกลายพันธุ์ของยีนมีลักษณะในระดับโมเลกุลโดยการวิเคราะห์ลำดับดีเอ็นเอทั้งในหนูพันธุ์และเลี้ยงลูกด้วยนมในยีนภายนอก การกลายพันธุ์ HPRT จำนวนมากจากเซลล์ของมนุษย์ในหลอดทดลองและในร่างกายได้รับการวิเคราะห์ในระดับโมเลกุลและจัดส่วนที่เกี่ยวกับการแทนฐานคู่กะกรอบการลบขนาดเล็กลบขนาดใหญ่และการเปลี่ยนแปลงอื่น ๆ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

โดยยีนกลายพันธุ์ชนิดหรือเกี่ยวข้องกับการรักษาสัตว์ และเนื้อเยื่อที่เหมาะสมยังคงวิเคราะห์ผลทางพันธุกรรม ทางเลือกของปริมาณที่เหมาะสมการรักษากระบวนการ การควบคุม และขนาดตัวอย่างที่สำคัญในการในการทดสอบร่างกาย การกลายพันธุ์อาจถูกตรวจพบในโซมาติกเซลล์ หรือ เซลล์สืบพันธุ์ . หลังมีความสนใจพิเศษเกี่ยวกับความเสี่ยงในอนาคตเมาส์ที่จุดทดสอบเป็นประเพณีทางพันธุกรรมในยีนกลายพันธุ์ในโซมาติกเซลล์ จุดที่มองเห็นได้ของการเปลี่ยนแปลงฟีโนไทป์ในหนูก่อนสำหรับยีนสีเสื้อบ่งบอกความผิดปกติของเซลล์ต้นกำเนิดของการเปลี่ยนแปลงภูมิภาค แม้ว่าจะตรงไปตรงมาในการออกแบบจุดที่ทดสอบใช้น้อยลง วันนี้กว่าหรือเซลล์ร่างกายอื่น ๆหรือมากกว่าของเซลล์สืบพันธุ์กัน เมาส์ที่เฉพาะเจาะจงสถานที่ทดสอบ
เซลล์ที่ให้ความร่วมมือกับการเลือกบวกสำหรับสายพันธุ์เมื่อเก็บจากสัตว์ครบถ้วนจากพื้นฐานที่มีประสิทธิภาพในการตรวจจับโดยการกลายพันธุ์หรือคล้ายคลึงกับในวัฒนธรรมเซลล์ ) . ลิมโฟซัยต์กับการกลายพันธุ์ในยีนที่ตรวจพบโดย hprt พร้อมการต้านทาน 6-thioguanine . การ hprt การทดสอบในหนู , หนู ,และลิงจะสนใจเป็นพิเศษเพราะมันอนุญาตให้เปรียบเทียบกับการวัด hprt การกลายพันธุ์ในมนุษย์ในการตรวจสอบเกี่ยวกับการเปลี่ยนแปลง .
( pig-a เป็นวิธีใหม่ที่เหมาะสำหรับการตรวจสอบรุ่นมนุษย์และปฏิบัติการศึกษา ( ตรวจพบการกลายพันธุ์ที่ปิดกั้นการสังเคราะห์ GPI . pig-a เป็นเซ็กส์ลิงค์ยีนยีนผลิตภัณฑ์ที่มีหน้าที่เป็นผู้ประกาศข่าวสำหรับโปรตีนที่ผิวเซลล์การกลายพันธุ์ใน pig-a สามารถตรวจพบได้ในเซลล์เม็ดเลือดแดงของหนู หนู ลิง และมนุษย์ โดยวิธีการของแอนติบอดีต่อโปรตีนเรืองแสง GPI ยึดเซลล์ผิว เช่น cd59 . การใช้แอนติบอดีที่มากกว่าหนึ่งเครื่องหมาย GPI เชื่อมโยงมีการเสนอเป็นวิธีการทำให้โดยเฉพาะเซลล์ pig-a ใช้ proaerolysin ( proaer ) ( หรือโดยการไหลความจริงที่ว่าวิธีเดียวกันสามารถดำเนินการในหลายสายพันธุ์ ทำให้การวิเคราะห์แนวโน้มสำหรับการเปรียบเทียบของมนุษย์ และควบคุมความเสี่ยงในสัตว์ทดลอง
นอกจากระบุว่าตัวแทนการศึกษาการกลายพันธุ์ยีน , ให้ข้อมูลเกี่ยวกับกลไกการจัดสรรเพื่อความเข้าใจเกี่ยวกับการเปลี่ยนแปลงอันตราย แทนการลบฐานคู่และขนาดใหญ่ซึ่งอาจจะไม่บนพื้นฐานของฟีโนไทป์ , สามารถที่แตกต่าง ผ่านการใช้ติดตามเป้าหมายและวิธีของภาคใต้ ที่ใช้ฐานแทนจะบอบบางเกินไปที่จะพบบนไม้ ในขณะที่การเปลี่ยนแปลงโครงสร้างทั้งหมดจะมองเห็นได้การวิเคราะห์ระดับโมเลกุลได้ถูกใช้ในการกำหนดสัดส่วนของการกลายพันธุ์ที่ ascribable เพื่อลบและการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างอื่น ๆ ได้หลายวิธี ได้แก่ เฉพาะสถานที่ทดสอบการกลายพันธุ์ในหนูและเซลล์สืบพันธุ์ ( hprt มนุษย์ ความผิดปกติของยีนส์ได้โดดเด่นในระดับโมเลกุลโดยการวิเคราะห์ลำดับเบสดีเอ็นเอยีนทั้งในหนูและในการควบคุมยีนหลาย hprt การกลายพันธุ์จากเซลล์มนุษย์ในหลอดทดลองและในสัตว์ทดลอง มาทำการวิเคราะห์ในระดับโมเลกุล และจัดตามฐานคู่ เปลี่ยน กรอบกะ , ลบ , ลบขนาดเล็ก ขนาดใหญ่ และการเปลี่ยนแปลงอื่น ๆ .

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.