A. Mpofu et al. / International Jou

A. Mpofu et al. / International Journal of Food Microbiology 217 (2016) 42–48 45 ml/min at 40 °C. Detection was done by refractive index (Shodex RI
101). Sample volume was 10 μL and the run time was 30 min. 2.8. pH measurement
The pH values during the experiments were measured using a com- bined glass electrode pH meter (WTW, Weilheim, Germany) that was calibrated using standard buffer solutions (Merck, Darmstadt, Germa- ny) at pH 4.0 and 7.0. The pH was determined each time a sample was taken for microbial analysis at times indicated above.
2.9. Statistical analysis
Independent experiments including inoculum preparation, product making and storage were performed in triplicate. Data points were rep- resented by the mean, with the standard deviation indicated by error bars. The mean values of pH of all samples as well as mean log counts of the bacterial pathogens and L. rhamnosus yoba were compared using one-way ANOVA and Tukey's post-hoc tests. Statistical analysis was done using SPSS 13.0 for Windows (Apache Software Foundation, Forest Hill, Maryland, USA) and Microsoft Excel.
3. Results and discussion
3.1. pH changes in traditional and yoba mutandabota
The time course of acidification in traditional mutandabota was sim- ilar in all experiments with the 5 cocktails of bacterial pathogens (Figs. 2 to 6). The pH was 3.5 (n = 15) immediately after preparation when mutandabota was ready for consumption at time 0 h (t = 0). This pH- value remained rather constant throughout the 24 h potential con- sumption time, also regarded as the storage period, and at t = 24 the pH was 3.4 ± 0.1. The low pH could be attributed to the acidic nature of dry baobab fruit pulp. Airan and Desai (1954) and Carr (1955) first highlighted the presence of organic acids in baobab fruit pulp. Later re- ports by Nour et al. (1980) and Vertuani et al. (2002) confirmed the presence of citric, tartaric, malic, succinic and ascorbic acids in baobab fruit pulp. For yoba mutandabota (Figs. 2 to 6) at the moment of simul- taneous inoculation with L. rhamnosus yoba and the pathogenic bacteria cocktail into the 4% pulp–milk mixture (t = −24 h), the pH was 4.2 ± 0.1 (n = 15). After 9 h the pH remained stable at 4.2. At t = 0, signaling the end of the fermentation stage, the pH was 3.7 ± 0.1. The lowering of pH from 4.2 to 3.7 during the fermentation phase could be attributed to organic acids such as lactic acid produced by the fermenting L. rhamnosus yoba. When the remaining 10% pulp and 7% sugar were added to get the standard constituents of mutandabota, the pH remained stable at 3.7 ± 0.1. Yoba mutandabota was then ready for
Fig. 2. Kinetics of Lactobacillus rhamnosus yoba and Bacillus cereus during production of traditional and yoba mutandabota. Fermentation takes 24 h, 0 h is the start of potential consumption time; (open triangle) Lactobacillus rhamnosus yoba in yoba mutandabota, (closed square) B. cereus in traditional mutandabota, (open square) B. cereus in yoba mutandabota, (closed circle) pH changes in traditional mutandabota, (open circle) pH changes in yoba mutandabota. Points represented on the detection limit indicate results below the detection limit (no detection).
Fig. 3. Kinetics of Lactobacillus rhamnosus yoba and Campylobacter jejuni during production of traditional and yoba mutandabota. Fermentation takes 24 h, 0 h is the start of potential consumption time; (open triangle) Lactobacillus rhamnosus yoba in yoba mutandabota, (closed square) C. jejuni in traditional mutandabota, (open square) C. jejuni in yoba mutandabota, (closed circle) pH changes in traditional mutandabota, (open circle) pH changes in yoba mutandabota.
consumption. The pH remained rather constant at 3.3 ± 0.1 throughout the storage period of yoba mutandabota resulting in a pH of 3.3 ± 0.1 at t=24.
In preliminary experiments to determine growth of L. rhamnosus yoba at different pH values obtained by mixing different concentrations of baobab fruit pulp and UHT full fat cow's milk, it was shown that a fruit pulp content of 2% gave a pH of 5. This pH value allowed growth of L. rhamnosus yoba but was not enough to sustain growth of the bacterium over a 24 h period due to substrate limitation. Doubling the amount of fruit pulp to 4% resulted in a pH of 4.2. This pulp concentration of 4% and pH value of 4.2 allowed sustained growth of L. rhamnosus yoba over a 24 h period. Further doubling of the fruit pulp concentration to 8% resulted in a further decrease in pH (3.9), which allowed survival of L. rhamnosus yoba, but not its growth (Mpofu et al., 2014b).
3.2. Growth of L. rhamnosus yoba in yoba mutandabota with pathogens
L. rhamnosus yoba, an isolate of the probiotic bacterium L. rhamnosus GG (Kort and Sybesma, 2012) was chosen for this study. L. rhamnosus GG, originally cultured from a healthy human intestinal source, has been thoroughly studied and used safely as a probiotic strain in a variety of probiotic foods (Bernardeau et al., 2006; Hatakka et al., 2001; Kalliomäki et al., 2001). L. rhamnosus GG is widely prescribed for treat- ment of acute diarrhea in children, its efficacy was evaluated by in vivo studies (Canani et al., 2007; Grandy et al., 2010; Hojsak et al., 2010). The growth of L. rhamnosus yoba in yoba mutandabota followed a similar pattern in each experiment (Figs. 2 to 6). Generally, from an inoculation
Fig. 4. Kinetics of Lactobacillus rhamnosus yoba and Listeria monocytogenes during produc- tion of traditional and yoba mutandabota. Fermentation takes 24 h, 0 h is the start of poten- tial consumption time; (open triangle) Lactobacillus rhamnosus yoba in yoba mutandabota, (closed square) Listeria monocytogenes in traditional mutandabota, (open square) Listeria monocytogenes in yoba mutandabota, (closed circle) pH changes in traditional mutandabota, (open circle) pH changes in yoba mutandabota.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

A. Mpofu et al. นานาชาติสมุดของจุลชีววิทยาอาหาร 217 (2016) 42-48 45 ml/min ที่ 40 องศาเซลเซียส ตรวจสอบได้โดยดรรชนีหักเห (Shodex RI101) ปริมาณตัวอย่าง 10 μL และเวลาที่ใช้ได้ 30 นาที 2.8 วัดค่า pHค่า pH ระหว่างการทดลองถูกวัดโดยใช้การ com - แก้ว bined อิเล็กโทรด pH มิเตอร์ (WTW, Weilheim เยอรมนี) ที่ถูกปรับเทียบโดยใช้โซลูชั่นบัฟเฟอร์มาตรฐาน (เมอร์ค ดาร์มส Germa ny) ที่ pH 7.0 และ 4.0 PH มีกำหนดเวลาแต่ละตัวอย่างถูกนำสำหรับการวิเคราะห์จุลินทรีย์ที่ระบุข้างต้น2.9. สถิติวิเคราะห์ทดลองด้วยตนเองรวมทั้งการเตรียม inoculum ทำผลิตภัณฑ์และการจัดเก็บถูกดำเนินการใน triplicate จุดข้อมูลได้แทน-resented โดยค่าเฉลี่ย ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานที่ระบุ โดยแถบข้อผิดพลาดด้วย ค่าเฉลี่ยของค่า pH ของตัวอย่าง ตลอดจนหมายถึง การบันทึกจำนวนของโรคแบคทีเรียและ L. rhamnosus yoba ถูกเปรียบเทียบใช้ทางเดียวการวิเคราะห์ความแปรปรวนและของ Tukey ฮอคลงทดสอบ วิเคราะห์ทางสถิติโดยใช้โปรแกรม 13.0 สำหรับ Windows (มูลนิธิซอฟต์แวร์ Apache ป่าเขา แมริแลนด์ สหรัฐอเมริกา) และ Microsoft Excel3. ผลลัพธ์ และสนทนา3.1 การเปลี่ยนแปลง pH ในแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabotaเวลาเวลาของยูใน mutandabota แบบดั้งเดิมมี sim ilar ในการทดลองทั้งหมดกับค็อกเทล 5 ของโรคแบคทีเรีย (Figs. 2-6 ขวบ) PH 3.5 (n = 15) ทันทีหลังจากเตรียมเมื่อ mutandabota พร้อมใช้เวลา 0 h (t = 0) ค่า pH นี้ยังคงค่อนข้างคงที่ตลอด 24 ชมเป็นคอน sumption เมื่อ นี้ ถือว่าเป็นระยะเวลาจัดเก็บ และที่ t = 24 pH ได้ 3.4 ± 0.1 PH ต่ำอาจเกิดจากธรรมชาติของเยื่อ baobab เครื่องมือแห้งผลไม้เปรี้ยว Airan และ Desai (1954) และคาร์ (1955) แรกเน้นของกรดอินทรีย์ในเยื่อผลไม้ baobab เครื่องมือ รีพอร์ตในภายหลัง โดยนูร et al. (1980) และ Vertuani et al. (2002) ยืนยันสถานะแอซิด ซิทริก tartaric, malic, succinic และกรดแอสคอร์บิคในเยื่อผลไม้ baobab เครื่องมือ สำหรับ yoba mutandabota (Figs. 2 กับ 6) simul - taneous inoculation L. rhamnosus yoba และแบคทีเรีย pathogenic ค็อกเทลผสมเยื่อ – นม 4% ในขณะ (t = −24 h), pH ได้ 4.2 ± 0.1 (n = 15) หลังจากที่ 9 h pH ยังคงมีเสถียรภาพอยู่ที่ 4.2 ที่ t = 0 สัญญาณสิ้นสุดของระยะการหมัก pH ได้ 3.7 ± 0.1 การลดลงของ pH จาก 4.2 3.7 ระหว่างขั้นตอนการหมักอาจเกิดจากกรดอินทรีย์เช่นกรดแลกติกที่ผลิต โดย yoba การ rhamnosus L. fermenting เมื่อเยื่อกระดาษที่เหลือ 10% และ 7% น้ำตาลเพิ่มไป constituents มาตรฐานของ mutandabota, pH ยังคงมีเสถียรภาพที่ 3.7 ± 0.1 Yoba mutandabota ถูกแล้วพร้อมสำหรับFig. 2 จลนพลศาสตร์ของแลคโตบาซิลลัส rhamnosus yoba และคัด cereus ในระหว่างการผลิตแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota หมักใช้เวลา 24 h, 0 h คือ จุดเริ่มต้นอาจใช้เวลา (เปิดสามเหลี่ยม) แลคโตบาซิลลัส rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota, cereus เกิด (ปิดสแควร์) ในแบบ mutandabota, cereus เกิด (เปิดสแควร์) ใน yoba mutandabota, (ปิดวง) การเปลี่ยนแปลง pH ในแบบ mutandabota, pH (เปิดวง) เปลี่ยนแปลงใน yoba mutandabota จุดที่แสดงในวงเงินตรวจระบุผลการตรวจสอบขีดจำกัดต่ำสุด (ไม่ตรวจสอบ)Fig. 3 จลนพลศาสตร์ของแลคโตบาซิลลัส rhamnosus yoba และ Campylobacter jejuni ในระหว่างการผลิตแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota หมักใช้เวลา 24 h, 0 h คือ จุดเริ่มต้นอาจใช้เวลา (เปิดสามเหลี่ยม) แลคโตบาซิลลัส rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota, (ปิดสแควร์) C. jejuni ในแบบ mutandabota, (เปิดสแควร์) C. jejuni ใน yoba mutandabota, (ปิดวง) การเปลี่ยนแปลง pH ในแบบ mutandabota, pH (เปิดวง) เปลี่ยนแปลงใน yoba mutandabotaปริมาณการใช้ PH ยังคงค่อนข้างคงที่ที่ 3.3 ± 0.1 ตลอดเก็บ yoba mutandabota เกิดใน pH 3.3 ± 0.1 ที่ t = 24ในการทดลองเบื้องต้นเพื่อตรวจสอบการเจริญเติบโตของ yoba rhamnosus L. ที่ค่า pH แตกต่าง โดยความเข้มข้นแตกต่างกันผล baobab เครื่องมือผสม เยื่อและยูเอชทีเต็มไขมันวัวนม มันถูกแสดงว่า เยื่อผลไม้เนื้อหาของ 2% ให้ pH 5 ค่า pH นี้ได้เจริญเติบโตของ L. rhamnosus yoba แต่ไม่เพียงพอเพื่อให้เจริญเติบโตของแบคทีเรียในระยะ 24 ชมเนื่องจากข้อจำกัดของพื้นผิว จำนวนเยื่อผลไม้ 4% จะส่งผลให้ใน pH 4.2 เข้มข้นเยื่อนี้ 4% และค่า pH 4.2 ได้ sustained เติบโตของ L. rhamnosus yoba ระยะ 24 ชม จะเพิ่มเติม ของผลไม้เยื่อความเข้มข้น 8% ส่งผลให้ลดลงไป pH (3.9), ซึ่งได้รับอนุญาตการอยู่รอดของ L. rhamnosus yoba แต่ไม่เติบโตของมัน (Mpofu et al., 2014b)3.2 การเจริญเติบโตของ yoba rhamnosus L. ใน mutandabota yoba กับโรคL. rhamnosus yoba แยกของโปรไบโอติกส์แบคทีเรีย L. rhamnosus GG (Kort และ Sybesma, 2012) ถูกเลือกสำหรับการศึกษานี้ L. rhamnosus GG เดิมอ่างจากแหล่งมนุษย์ลำไส้มีสุขภาพดี มีการศึกษา ทั้งปลอดภัยใช้เป็นโปรไบโอติกส์สายพันธุ์ในความหลากหลายของอาหารโปรไบโอติกส์ (Bernardeau และ al., 2006 Hatakka และ al., 2001 Kalliomäki และ al., 2001) L. rhamnosus GG มีอย่างกว้างขวางกำหนดการรักษาการติดขัดของโรคอุจจาระร่วงเฉียบพลันในเด็ก ประสิทธิภาพถูกประเมิน โดยการศึกษาในสัตว์ทดลอง (Canani et al., 2007 แกรนดี้ et al., 2010 Hojsak et al., 2010) การเติบโตของ yoba rhamnosus L. ใน yoba mutandabota ตามรูปแบบที่คล้ายกันในแต่ละการทดลอง (Figs. 2-6 ขวบ) ทั่วไป จากการ inoculationFig. 4 จลนพลศาสตร์ของแลคโตบาซิลลัส rhamnosus yoba และออลิ monocytogenes ผลิตภัณฑ์เซรามิคสเตรชันดั้งเดิมและ yoba mutandabota หมักใช้เวลา 24 h, 0 h คือ จุดเริ่มต้นของ poten - tial ใช้เวลา (เปิดสามเหลี่ยม) แลคโตบาซิลลัส rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota, (ปิดเหลี่ยม) ออลิ monocytogenes ในแบบ mutandabota, (เปิดสแควร์) ออลิ monocytogenes ใน yoba mutandabota, (ปิดวง) การเปลี่ยนแปลง pH ในแบบ mutandabota, pH (เปิดวง) เปลี่ยนแปลงใน yoba mutandabota

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

A. Mpofu et al, / วารสารนานาชาติจุลชีววิทยาอาหาร 217 (2016) 42-48 45 มล. / นาทีที่ 40 องศาเซลเซียส การตรวจสอบทำโดยดัชนีหักเห (RI Shodex
101) ปริมาณตัวอย่าง 10 ไมโครลิตรและเวลาการทำงานเป็นเวลา 30 นาที 2.8 วัดค่า pH
ค่าพีเอชในช่วงทดลองวัดโดยใช้กระจกแบบผสมอิเล็กโทรสั่ง pH เมตร (WTW, Weilheim, เยอรมนี) ที่ได้รับการสอบเทียบโดยใช้สารละลายบัฟเฟอร์มาตรฐาน (เมอร์ค, ดาร์มสตัด, Germa- ny) ที่ pH 4.0 และ 7.0 พีเอชที่ถูกกำหนดในแต่ละครั้งที่ถูกนำตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์จุลินทรีย์ในช่วงเวลาที่ระบุไว้ข้างต้น.
2.9
การวิเคราะห์ทางสถิติการทดลองอิสระรวมถึงการเตรียมหัวเชื้อทำสินค้าและการเก็บรักษาได้ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่า จุดที่ข้อมูลไม่พอใจ rep- โดยเฉลี่ยมีค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานที่ระบุโดยแถบข้อผิดพลาด ค่าเฉลี่ยของค่า pH ของกลุ่มตัวอย่างทั้งหมดรวมทั้งหมายถึงการเข้าสู่ระบบการนับจำนวนของเชื้อโรคแบคทีเรียและ L. rhamnosus yoba ถูกนำมาเปรียบเทียบโดยใช้ทางเดียวและวิเคราะห์ความแปรปรวนของ Tukey ทดสอบ post-hoc การวิเคราะห์ทางสถิติที่ได้กระทำโดยใช้โปรแกรม SPSS 13.0 สำหรับ Windows (Apache Software Foundation, ป่าฮิลล์, แมรี่แลนด์สหรัฐอเมริกา) และ Microsoft Excel.
3 และการอภิปรายผล
3.1 การเปลี่ยนแปลงค่า pH ในแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota
แน่นอนช่วงเวลาของกรดใน mutandabota แบบดั้งเดิมถูกซิม ILAR ในการทดลองทั้งหมดที่มี 5 เครื่องดื่มค็อกเทลของเชื้อโรคแบคทีเรีย (มะเดื่อ. 2-6) ค่าพีเอช 3.5 (n = 15) ทันทีหลังจากที่การเตรียมความพร้อมเมื่อ mutandabota ก็พร้อมสำหรับการบริโภคในเวลา 0 h (t = 0) ค่า pH- นี้ยังคงค่อนข้างคงที่ตลอดเวลาที่กินกระแสศักยภาพชั่วโมง 24 ถือว่ายังเป็นระยะเวลาการเก็บและที่ t = 24 พีเอชเท่ากับ 3.4 ± 0.1 ค่า pH ต่ำสามารถนำมาประกอบกับธรรมชาติที่เป็นกรดของเยื่อกระดาษแห้งผลไม้โกงกาง Airan และ Desai (1954) และคาร์ (1955) เป็นครั้งแรกที่เน้นการปรากฏตัวของกรดอินทรีย์ในเนื้อผลไม้โกงกาง พอร์ตอีกครั้งในภายหลังโดยนัว et al, (1980) และ Vertuani et al, (2002) ได้รับการยืนยันการปรากฏตัวของซิตริก, tartaric, malic, ซัคและกรดแอสคอบิในเนื้อผลไม้โกงกาง สำหรับ yoba mutandabota (มะเดื่อ. 2-6) ในขณะที่การฉีดวัคซีน simul- taneous กับ L. rhamnosus yoba และค๊อกเทลเชื้อแบคทีเรียก่อโรคเข้าไปในเยื่อกระดาษผสมนม 4% (t = -24 ชั่วโมง) ค่า pH 4.2 ± 0.1 (n = 15) หลังจาก 9 ชั่วโมงค่า pH คงที่ที่ 4.2 ที่ t = 0, การส่งสัญญาณการสิ้นสุดของขั้นตอนการหมักที่ค่า pH 3.7 ± 0.1 การลดค่า pH 4.2-3.7 ในระหว่างขั้นตอนการหมักอาจจะประกอบไปด้วยกรดอินทรีย์เช่นกรดแลคติกที่ผลิตโดยการหมัก L. rhamnosus yoba เมื่อส่วนที่เหลืออีก 10% อ้อยและน้ำตาล 7% มีการเพิ่มที่จะได้รับคนละมาตรฐานของ mutandabota พีเอชที่ยังคงทรงตัวอยู่ที่ 3.7 ± 0.1 Yoba mutandabota
แล้วก็พร้อมสำหรับรูป 2. จลนศาสตร์ของ yoba rhamnosus แลคโตบาซิลลัสและ Bacillus cereus ในระหว่างการผลิตแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota การหมักจะใช้เวลา 24 ชั่วโมง, 0 ชั่วโมงเป็นจุดเริ่มต้นของเวลาการบริโภคที่อาจเกิดขึ้น; (เปิดสามเหลี่ยม) Lactobacillus rhamnosus yoba yoba ใน mutandabota (ปิดตาราง) เชื้อ B. cereus ใน mutandabota แบบดั้งเดิม (เปิดตาราง) เชื้อ B. cereus ใน yoba mutandabota (วงกลมปิด) การเปลี่ยนแปลงค่า pH ใน mutandabota แบบดั้งเดิม (วงกลมเปิด) การเปลี่ยนแปลงค่า pH ใน yoba mutandabota สิ่งที่น่าเป็นตัวแทนในการตรวจสอบวงเงินแสดงผลกว่าขีด จำกัด การตรวจสอบ (ไม่มีการตรวจสอบ).
รูป 3. จลนศาสตร์ของ yoba rhamnosus แลคโตบาซิลลัสและ Campylobacter jejuni ในระหว่างการผลิตแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota การหมักจะใช้เวลา 24 ชั่วโมง, 0 ชั่วโมงเป็นจุดเริ่มต้นของเวลาการบริโภคที่อาจเกิดขึ้น; (เปิดสามเหลี่ยม) Lactobacillus rhamnosus yoba yoba ใน mutandabota (ปิดตาราง) C. jejuni ใน mutandabota แบบดั้งเดิม (เปิดตาราง) C. jejuni ใน yoba mutandabota (วงกลมปิด) การเปลี่ยนแปลงค่า pH ใน mutandabota แบบดั้งเดิม (วงกลมเปิด) การเปลี่ยนแปลงค่า pH ใน yoba mutandabota.
การบริโภค ค่าพีเอชยังคงค่อนข้างคงที่ที่ 3.3 ± 0.1 ตลอดระยะเวลาการเก็บรักษา mutandabota yoba ส่งผลให้ค่า pH 3.3 ± 0.1 ที่ t = 24.
ในการทดลองเบื้องต้นเพื่อตรวจสอบการเจริญเติบโตของ L. rhamnosus yoba ที่ค่าพีเอชที่แตกต่างกันได้โดยการผสมความเข้มข้นแตกต่างกันของ เยื่อไม้โกงกางและยูเอชทีเต็มนมวัวไขมันของมันก็แสดงให้เห็นว่ามีปริมาณเนื้อผลไม้ 2% ให้ค่า pH ของ 5. ค่า pH นี้ได้รับอนุญาตการเจริญเติบโตของ L. rhamnosus yoba แต่ก็ไม่เพียงพอที่จะรักษาอัตราการเติบโตของแบคทีเรียมากกว่า 24 ระยะเวลาชั่วโมงเนื่องจากข้อ จำกัด กับพื้นผิว เสแสร้งปริมาณของเนื้อผลไม้ถึง 4% ส่งผลให้ค่า pH 4.2 ความเข้มข้นของเยื่อนี้เท่ากับ 4% ค่าพีเอช 4.2 ได้รับอนุญาตให้เติบโตอย่างยั่งยืนของ L. rhamnosus yoba เป็นระยะเวลากว่า 24 ชั่วโมง เพิ่มขึ้นต่อไปของความเข้มข้นของเนื้อผลไม้ถึง 8% ส่งผลให้เกิดการลดลงต่อไปในค่า pH (3.9) ซึ่งได้รับอนุญาตให้อยู่รอดของ L. rhamnosus yoba แต่ไม่เจริญเติบโตของมัน (Mpofu et al., 2014b).
3.2 การเจริญเติบโตของ L. rhamnosus yoba yoba ใน mutandabota
กับเชื้อโรคลิตร rhamnosus yoba การแยกของแบคทีเรียโปรไบโอติก L. rhamnosus GG (Kort และ Sybesma 2012) เป็นทางเลือกสำหรับการศึกษาครั้งนี้ L. rhamnosus GG เดิมที่เพาะเลี้ยงจากแหล่งในลำไส้ของมนุษย์มีสุขภาพดีได้รับการศึกษาอย่างทั่วถึงและใช้อย่างปลอดภัยในฐานะที่เป็นสายพันธุ์โปรไบโอติกในความหลากหลายของอาหารโปรไบโอติก (Bernardeau et al, 2006;.. Hatakka et al, 2001; Kalliomäki et al, , 2001) L. rhamnosus GG มีการกำหนดกันอย่างแพร่หลายสำหรับ ment ลูออไรด์ของโรคท้องร่วงเฉียบพลันในเด็กรู้ความสามารถของตนได้รับการประเมินโดยการศึกษาในร่างกาย (Canani et al, 2007;.. Grandy et al, 2010;. Hojsak et al, 2010) การเจริญเติบโตของ L. rhamnosus yoba yoba ใน mutandabota ตามรูปแบบที่คล้ายกันในแต่ละการทดลอง (มะเดื่อ. 2-6)
โดยทั่วไปจากการฉีดวัคซีนรูป 4. จลนศาสตร์ของ yoba rhamnosus แลคโตบาซิลลัสและ Listeria monocytogenes ในช่วงของการผลิตแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota การหมักจะใช้เวลา 24 ชั่วโมง, 0 ชั่วโมงเป็นจุดเริ่มต้นของเวลา poten- บริโภค TIAL นั้น (เปิดสามเหลี่ยม) Lactobacillus rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota (ปิดตาราง) เชื้อ Listeria monocytogenes ใน mutandabota แบบดั้งเดิม (เปิดตาราง) เชื้อ Listeria monocytogenes ใน yoba mutandabota (วงกลมปิด) การเปลี่ยนแปลงค่า pH ใน mutandabota แบบดั้งเดิม (วงกลมเปิด) การเปลี่ยนแปลงค่า pH ใน yoba mutandabota .

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

1 . mpofu et al . / วารสารจุลชีววิทยาอาหาร 217 ( 2016 ) 42 - 48 45 มิลลิลิตร / นาทีที่ 40 ° C สามารถทำได้โดยดัชนีหักเห ( shodex ริ
101 ) ปริมาณจำนวน 10 μ L และใช้เวลา 30 นาที 2.8 . เครื่องวัดค่าความเป็นกรด - ด่าง
ในระหว่างการทดลองวัดโดยใช้ขั้วไฟฟ้าแก้วดอทคอม - bined เครื่องวัด ( wtw Weilheim , ,เยอรมัน ) นั่นคือการปรับสารละลายบัฟเฟอร์มาตรฐาน ( เมอร์คเจอม่า - ดาร์มชตัท , , NY ) ที่ pH 4.0 และ 7.0 . ค่า pH คือกำหนดเวลาแต่ละตัวอย่างถูกนำมาวิเคราะห์จุลินทรีย์ในเวลาที่ระบุข้างต้น .
2.9 . สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูล ได้แก่ การเตรียมเชื้อ
อิสระในการทดลอง ทำให้ผลิตภัณฑ์และกระเป๋ามีการปฏิบัติทั้งสามใบ จุดข้อมูลตัวแทน - ไม่พอใจ โดยหมายถึงกับส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานแสดงด้วยแถบข้อผิดพลาด ค่าเฉลี่ย ค่า pH ของตัวอย่างทั้งหมด รวมทั้งหมายถึงบันทึกนับจากเชื้อโรคแบคทีเรียและ rhamnosus yoba เปรียบเทียบโดยใช้สถิติการวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียวคือ Post Hoc Tests . การวิเคราะห์ข้อมูลทางสถิติ โดยใช้โปรแกรม SPSS for Windows ( ทั้งมูลนิธิซอฟต์แวร์อะแพชี , ป่าเขา , Maryland , USA ) และ Microsoft Excel .
3 ผลและการอภิปราย
3.1 .การเปลี่ยนแปลงของ pH ในแบบดั้งเดิม และ yoba mutandabota
แน่นอนเวลาของกรดใน mutandabota แบบดั้งเดิม คือ ซิม - ilar ในการทดลองทั้งหมดมี 5 ค็อกเทลแบคทีเรียก่อโรค ( Figs 2 - 6 ) ที่ pH 3.5 ( n = 15 ) ทันทีหลังจากการเตรียมการเมื่อ mutandabota พร้อมสำหรับการบริโภคในเวลา 0 H ( t = 0 )- ค่า pH ยังคงค่อนข้างคงที่ตลอด 24 ชั่วโมง ศักยภาพคอน - เวลามีสมมุติฐาน ยังถือเป็นช่วงกระเป๋า และที่ t = 24 pH 3.4 ± 0.1 pH ต่ำ อาจจะเกิดจากธรรมชาติที่เป็นกรดของบับแห้งผลไม้เยื่อกระดาษ และ airan Desai ( 1954 ) และ คาร์ ( 1955 ) แรก เน้นการปรากฏตัวของกรดอินทรีย์ใน Baobab ผลไม้เยื่อกระดาษ ต่อมา Re - พอร์ตโดยเรา et al .( 1980 ) และ vertuani et al . ( 2002 ) ยืนยันการแสดงตนของกรดทาร์ทาริค , , , วิตามินซีและกรดซัคซิ Baobab ผลไม้เยื่อกระดาษ สำหรับ yoba mutandabota ( Figs 2 กับ 6 ) ในช่วงเวลาของการ taneous พร้อ - L rhamnosus yoba และเชื้อแบคทีเรียค็อกเทลลง 4% และเยื่อกระดาษผสมนม ( t = − 24 H ) , pH 4.2 ± 0.1 ( n = 15 ) หลังจาก 9 H ) ทรงตัวที่ pH 4.2 .ที่ t = 0 , สัญญาณการสิ้นสุดของการหมักเวที , pH 3.7 ± 0.1 การลดของ pH จาก 4.2 การ 3.7 ในระหว่างการหมักระยะอาจจะเกิดจากกรดอินทรีย์ เช่น กรดแลคติกที่ผลิตโดยการหมักผม rhamnosus yoba . เมื่อเหลืออีก 10 % และเยื่อกระดาษ 7 % น้ำตาลเพิ่มเพื่อให้ได้องค์ประกอบมาตรฐานของ mutandabota , pH ยังคงมีเสถียรภาพที่ 3.7 ± 0.1yoba mutandabota ก็พร้อม
รูปที่ 2 จลนศาสตร์และ Lactobacillus rhamnosus yoba Bacillus cereus ในการผลิตแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota . การหมักจะใช้เวลา 24 ชั่วโมง 0 H คือการเริ่มต้นของเวลาการเปิดศักยภาพ สามเหลี่ยม ) Lactobacillus rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota ( ปิดสแควร์ ) B . cereus ใน mutandabota ดั้งเดิม ( เปิดสี่เหลี่ยม ) B . cereus ใน mutandabota yoba ,( ปิดวง ) การเปลี่ยนแปลง pH ใน mutandabota ดั้งเดิม ( เปิดวง ) การเปลี่ยนแปลง pH ใน yoba mutandabota . จุดแสดงในขีดจำกัดแสดงผลต่ำกว่าขีดจำกัด ( ไม่เจอ )
รูปที่ 3 จลนศาสตร์และเชื้อ Lactobacillus rhamnosus yoba รวมทั้งระหว่างการผลิตแบบดั้งเดิมและ yoba mutandabota . การหมักจะใช้เวลา 24 ชั่วโมง0 H คือการเริ่มต้นของเวลาการเปิดศักยภาพ สามเหลี่ยม ) Lactobacillus rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota ( ปิดสแควร์ ) C ใช้ใน mutandabota ดั้งเดิม ( เปิดสี่เหลี่ยม ) C ใช้ใน yoba mutandabota ( ปิดวง ) การเปลี่ยนแปลง pH ใน mutandabota ดั้งเดิม ( เปิดวง ) การเปลี่ยนแปลง pH ใน yoba mutandabota .
การบริโภค pH ยังคงค่อนข้างคงที่ที่ 3.3 ± 0ที่ 1 ตลอดระยะเวลาการเก็บ yoba mutandabota ทำให้ pH 3.3 ± 0.1 ที่ t = 24 .
ในการทดลองเบื้องต้นเพื่อตรวจสอบการเจริญเติบโตของ L . rhamnosus yoba ที่ค่า pH ที่แตกต่างกันได้ โดยผสมความเข้มข้นแตกต่างกันของเยื่อไม้บับ และเนื้อวัวนมไขมันเต็ม พบว่าผลไม้ที่ผลิตเนื้อหาของ % 2 ทำให้ pH ของ 5 นี้มีค่า pH อนุญาตการเจริญเติบโตของ Lrhamnosus yoba แต่ก็ไม่เพียงพอที่จะสนับสนุนการเจริญเติบโตของแบคทีเรียมากกว่า 24 ชั่วโมง ( ระยะเวลา เนื่องจากข้อจำกัด จํานวนของเยื่อไม้ 4 % ส่งผลให้พีเอช 4.2 . นี้ผลิตความเข้มข้น 4% และค่า pH 4.2 อนุญาตการเติบโตอย่างยั่งยืนของ L . rhamnosus yoba ช่วง 24 H . ต่อไปเป็นสองเท่าของเยื่อไม้ความเข้มข้น 8% ส่งผลให้ลดพีเอช ( 3.9 )ซึ่งได้รับอนุญาตการล. rhamnosus yoba แต่ไม่เติบโต ( mpofu et al . , 2014b )
2 . การเจริญเติบโตของ L . rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota กับเชื้อโรค
L rhamnosus yoba , แยกของโปรไบโอติกแบคทีเรีย . rhamnosus GG ( สั้น และ sybesma 2012 ) ถูกเลือกสำหรับการศึกษานี้ ฉัน rhamnosus GG เดิมที่เพาะเลี้ยงจากมนุษย์ในแหล่งมีการศึกษาอย่างละเอียดเกี่ยวกับและใช้อย่างปลอดภัย เป็นสายพันธุ์ โปรไบโอติกในความหลากหลายของอาหารโปรไบโอติก ( bernardeau et al . , 2006 ; hatakka et al . , 2001 ; kallioma ̈กิ et al . , 2001 ) ฉัน rhamnosus GG อย่างกว้างขวางกำหนดให้ปฏิบัติการของโรคอุจจาระร่วงเฉียบพลันในเด็ก เรี่ยวแรงที่ประเมินโดยการศึกษาในสัตว์ ( canani et al . , 2007 ; แกรนดี et al . , 2010 ; hojsak et al . , 2010 ) การเจริญเติบโตของ Lrhamnosus yoba ใน yoba mutandabota ตามแบบแผนที่คล้ายคลึงกันในแต่ละการทดลอง ( Figs 2 - 6 ) โดยทั่วไป จากการฉีดวัคซีน
รูปที่ 4 จลนศาสตร์และ Lactobacillus rhamnosus yoba วงแหวนแวนอัลเลนใน produc tion - แบบดั้งเดิม และแบบ yoba mutandabota . การหมักจะใช้เวลา 24 ชั่วโมง 0 H คือการเริ่มต้นของ poten - เวลาการบริโภค ด้วยเหตุนี้ ;( สามเหลี่ยมเปิด ) Lactobacillus rhamnosus yoba ใน yoba mutandabota ( ปิดสแควร์ ) monocytogenes Listeria ใน mutandabota ดั้งเดิม ( เปิดสี่เหลี่ยม ) monocytogenes Listeria ใน yoba mutandabota ( ปิดวง ) การเปลี่ยนแปลง pH ใน mutandabota ดั้งเดิม ( เปิดวง ) การเปลี่ยนแปลง pH ใน yoba mutandabota .