and chlorophylls which are responsi

and chlorophylls which are responsible for the antioxidant activity
(Rodriguez-Carpena, Morcuende, Andrade, Kylli, & Estevez, 2011).
Even though avocado byproducts are known for their antioxidant
capacity, their specific free-radical specific scavenging capacity is
yet to be determined.
On the other hand, nisin, a peptide with antimicrobial activity
produced by Lactococcus lactis sp lactis, is generally recognized as
safe and has been used in several ways to control pathogens in
foods (Juneja, Dwivedi, & Yan, 2012; Mills, Stanton, Hill, & Ross,
2011). The antimicrobial mechanism of nisin is due to the interaction
with lipid II in the bacterial plasma membrane, with the subsequent
formation of pores that induces leakage of the cytosolic
contents (Bauer & Dicks, 2005). There are some studies about the
interaction of nisin with certain antioxidant extracts or compounds
that found a synergic effect when these are applied to food without
sensorial changes (Abdollahzadeh, Rezaei, & Hosseini, 2014; Gao
et al., 2014).
The aims of this study are: a) to know the composition, the
antioxidant and antimicrobial capacities of avocado seed and peel
extracts; b) to optimize a mixture of natural additives such as nisin
(an antimicrobial) with avocado seed and peel (an antioxidant)
through surface response and to maximize both responses; c) to
come up with a new alternative for food additives.
2. Materials and methods
2.1. Chemicals
Nisin (2.5% w/w balanced with sodium chloride and denatured
milk solids, 106 IU/g), 2,20-azobis(2-methylpropionamidine) dihydrochloride
(AAPH), Trolox, Folin-Ciocalteu's phenol reagent, gallic
acid, quercetin, 2,4,6-tris(2-pyridyl)-s-triazine (TPTZ) and other
reagents were purchased from SigmaeAldrich Co. (St. Louis, MO,
USA).
2.2. Avocado samples and extraction
Avocado fruits (P. americana, Hass variety) were purchased at
the Central de Abastos in Mexico City and were maintained at room
temperature until they reached ripeness ready-to-eat. Fully ripened
fruits were manually separated into seed, pulp, and peel, and the
weight for each component was obtained. Seed and peel were
finely ground in a blender and dried at 40 C for 24 h in an air flow
oven. The moisture was measured by weight difference. Then, 50 g
of dry avocado seed or peel was added to 500mL of boiling distilled
water. This mixture was boiled and stirred by a magnetic stirrer for
30 min (Xu et al., 2008). The extract was filtered with filter paper
(Whatman No. 4). The filtrate was frozen and lyophilized at
5 mmHg at 50 C (Freezone 2.5; Labconco Corp. Kansas, MO, USA).
The lyophilized powder was stored at 20 C. The extracts were
dissolved in distilled water at 50 mg/mL before each characterization
assay (color, radical scavenging capacity, and composition).
2.3. Color measurement
The color of the peel, seed, pulp, and the resulting extracts were
measured utilizing a colorimeter (ColorFlex EZ spectrophotometer
45/0; HunterLab, Reston, VA, USA). The CIELAB color coordinates
(L*, a* and b*) were set at a 10 angle observer and D65 light source.
2.4. Total phenolic content
Phenolics were measured using the Folin-Ciocalteu's phenol
reagent (Singleton & Rossi, 1965) with modifications. Two hundred
microliters of extract was mixed with 1 mL of Folin-Ciocalteu's
reagent (1 N) and 0.8 mL of 7.5% Na2CO3. The mixture was incubated
at room temperature for 30 min. The absorbance was
measured at 760 nmusing a Synergy HTspectrofluorometer (Biotek
Instruments Inc., Winooski, VT, USA). The results are expressed as
mg of gallic acid equivalents (GAE) per gram of extract (dry weight,
dw).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

และ chlorophylls ซึ่งกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระ(ร็อดริเกซ-Carpena, Morcuende, Andrade, Kylli และ Estevez, 2011)แม้ พลอยอะโวคาโดเป็นที่รู้จักสำหรับสารต้านอนุมูลอิสระของพวกเขากำลังการผลิต การเฉพาะอนุมูลอิสระเฉพาะ scavenging กำลังยังสามารถกำหนดบนมืออื่น ๆ nisin เพปไทด์กับกิจกรรมจุลินทรีย์ผลิต โดย Lactococcus lactis sp lactis เป็นที่รู้จักโดยทั่วไปเป็นปลอดภัย และมีการใช้หลายวิธีในการควบคุมโรคในอาหาร (Juneja, Dwivedi และ ยาน 2012 โรงงานผลิต สแตนตัน เนินเขา และ รอสส์2011) ด้วยกลไกการยับยั้งจุลินทรีย์ของ nisin มีเนื่องจากการโต้ตอบมีไขมัน II ในการเชื้อแบคทีเรียพลาสมาเมมเบรน ด้วยซึ่งต่อมาก่อตัวของรูขุมขนที่ก่อให้เกิดการรั่วไหลของการ cytosolicเนื้อหา (Bauer และ Dicks, 2005) มีบางการศึกษาเกี่ยวกับการโต้ตอบของ nisin ด้วยสารสกัดจากสารต้านอนุมูลอิสระหรือสารบางอย่างที่พบผล synergic เมื่อเหล่านี้ใช้กับอาหารโดยไม่เปลี่ยนแปลง sensorial (Abdollahzadeh, Rezaei, & Hosseini, 2014 เการ้อยเอ็ด al., 2014)จุดมุ่งหมายของการศึกษานี้มี:) รู้องค์ประกอบ การกำลังการผลิตสารต้านอนุมูลอิสระและต้านจุลชีพของอะโวคาโดเมล็ดและเปลือกสารสกัดจาก ขการปรับส่วนผสมของสารจากธรรมชาติเช่น nisin(มีจุลินทรีย์) กับอะโวคาโดเมล็ดและเปลือก (เป็นสารต้านอนุมูลอิสระ)ผ่านพื้นผิวตอบสนอง และ เพื่อเพิ่มการตอบสนองทั้งสอง ค) ที่จะเกิดขึ้นกับทางเลือกใหม่สำหรับวัตถุเจือปนอาหาร2. วัสดุและวิธีการ2.1. เคมีภัณฑ์Nisin (2.5% w/w ความสมดุลกับโซเดียมคลอไรด์ และ denaturedของแข็งในนม 106 IU/g), 2,20-azobis(2-methylpropionamidine) dihydrochloride(AAPH), Trolox, Folin-Ciocalteu วางรีเอเจนต์ gallicกรด quercetin, 2,4,6-tris(2-pyridyl)-s-triazine (TPTZ) และอื่น ๆซื้อจาก บริษัท SigmaeAldrich (St. Louis, MO, reagentsสหรัฐอเมริกา)2.2. ตัวอย่างที่อโวคาโดและสกัดซื้อผลไม้อะโวคาโด (P. อเมริกานา Hass หลากหลาย) ที่Abastos เดอกลางในเม็กซิโกซิตี้ และถูกรักษาไว้ที่ห้องอุณหภูมิจนพวกเขาถึงพร้อมกิน ripeness ทั้งหมดสุกผลไม้ได้ด้วยตนเองแบ่งออกเป็นเมล็ด เยื่อกระดาษ และ เปลือก และน้ำหนักสำหรับแต่ละส่วนได้รับ เมล็ดและเปลือกประณีตในเบลนเดอร์เป็น และพื้นแห้งที่ 40 C ใน 24 ชมในการไหลอากาศเตาอบ เป็นวัดความชื้น โดยความแตกต่างของน้ำหนัก แล้ว 50 gอะโวคาโดเมล็ดแห้งหรือเปลือกถูกเพิ่มขนาด 500 มล.ของต้มกลั่นน้ำ ส่วนผสมนี้ถูกต้ม และกวน โดยช้อนคนแม่เหล็กสำหรับ30 นาที (Xu et al., 2008) สารสกัดได้กรอง ด้วยกระดาษกรอง(Whatman หมายเลข 4) สารกรองถูกแช่แข็ง และ lyophilized ที่5 mmHg ที่ 50 C (Freezone 2.5 Labconco Corp. แคนซัส MO สหรัฐอเมริกา)ผง lyophilized ถูกเก็บไว้ที่ 20 เซลเซียส สารสกัดได้ละลายในน้ำกลั่นที่ 50 mg/mL ก่อนการจำแนกแต่ละวิเคราะห์ (สี กำลังรุนแรง scavenging และองค์ประกอบ)2.3 สีวัดมีสีในเปลือก เมล็ด เยื่อกระดาษ และสารสกัดจากผลวัดการใช้เครื่อง (ColorFlex EZ เครื่องทดสอบกรดด่าง45 /0 HunterLab, Reston, VA สหรัฐอเมริกา) พิกัดสี CIELAB(L * การ * และ b *) ถูกตั้งค่าที่มุม 10 แหล่งและแหล่งกำเนิดแสง D652.4 การรวมเนื้อหาฟีนอPhenolics ถูกวัดโดยใช้วาง Folin-Ciocalteu ของรีเอเจนต์ (เดี่ยว & Rossi, 1965) พร้อมปรับเปลี่ยน สองร้อยmicroliters ของสารสกัดที่ผสมกับ mL 1 ของ Folin-Ciocalteuรีเอเจนต์ (1 N) และ 0.8 mL 7.5% Na2CO3 ส่วนผสมคือ incubatedที่อุณหภูมิห้องสำหรับ 30 นาที Absorbance ที่ถูกวัดที่ 760 nmusing HTspectrofluorometer Synergy (Biotekเครื่องมือ Inc., Winooski, VT สหรัฐอเมริกา) ผลลัพธ์จะแสดงในรูปมก.เทียบเท่ากรด gallic (GAE) ต่อกรัม (น้ำหนักแห้ง สารสกัดจากdw)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

และ chlorophylls ที่มีความรับผิดชอบสำหรับกิจกรรมสารต้านอนุมูลอิสระ
(Rodriguez-Carpena, Morcuende, Andrade, Kylli และสเตเวซ, 2011).
แม้ว่าจะเกิดอะโวคาโดเป็นที่รู้จักสำหรับสารต้านอนุมูลอิสระของพวกเขากำลังการผลิต, ความสามารถในการขับของพวกเขาที่เฉพาะเจาะจงเฉพาะอนุมูลอิสระคือยังไม่ได้กำหนด. บนมืออื่น ๆ , ไนซิน, เปปไทด์ที่มีฤทธิ์ต้านจุลชีพผลิตโดยLactococcus lactis SP lactis ได้รับการยอมรับโดยทั่วไปเป็นที่ปลอดภัยและมีการใช้ในหลายวิธีที่จะควบคุมเชื้อโรคในอาหาร(Juneja, Dwivedi และย่าน 2012; มิลส์สแตนตัน ฮิลล์และรอสส์, 2011) กลไกการต้านจุลชีพของไนซินเกิดจากการปฏิสัมพันธ์กับไขมันที่สองในเยื่อหุ้มแบคทีเรียที่ตามมากับการก่อตัวของรูขุมขนที่ก่อให้เกิดการรั่วไหลของcytosolic เนื้อหา (บาวเออร์และจู๋ 2005) มีการศึกษาเกี่ยวกับการมีปฏิสัมพันธ์ของไนซินด้วยสารสกัดจากสารต้านอนุมูลอิสระหรือสารที่พบว่ามีผลกระทบsynergic เมื่อเหล่านี้จะถูกนำไปใช้กับอาหารโดยไม่ได้เปลี่ยนแปลงความรู้สึก(Abdollahzadeh, Rezaei และ Hosseini 2014; Gao. et al, 2014). จุดมุ่งหมายของ การศึกษาครั้งนี้คือก) ที่จะรู้ว่าองค์ประกอบของสารต้านอนุมูลอิสระและความสามารถต้านจุลชีพของอะโวคาโดและเมล็ดเปลือกสารสกัด; ข) เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพของส่วนผสมของสารเติมแต่งที่เป็นธรรมชาติเช่นไนซิน(ยาต้านจุลชีพ) อะโวคาโดที่มีเมล็ดและเปลือก (สารต้านอนุมูลอิสระ) ผ่านการตอบสนองพื้นผิวและเพื่อเพิ่มการตอบสนองของทั้งสอง ค) ที่จะเกิดขึ้นกับทางเลือกใหม่สำหรับวัตถุเจือปนอาหาร. 2 วัสดุและวิธีการ2.1 สารเคมีไนซิน (2.5% w / w การสมดุลกับโซเดียมคลอไรด์และแปลงสภาพของแข็งนม106 IU / g) 2,20-azobis (2 methylpropionamidine) dihydrochloride (AAPH) Trolox, Folin-Ciocalteu ของสารฟีนอล, ฝรั่งเศสกรดquercetin , 2,4,6-tris (2-pyridyl) -s-triazine (TPTZ) และอื่น ๆ ที่น้ำยาที่ซื้อมาจากSigmaeAldrich จำกัด (เซนต์หลุยส์, MO, USA). 2.2 ตัวอย่างอโวคาโดและการสกัดผลไม้อะโวคาโด (พี Americana, Hass หลากหลาย) กำลังซื้อที่เซ็นทรัลเดAbastos ในกรุงเม็กซิโกซิตี้และได้รับการเก็บรักษาไว้ที่ห้องอุณหภูมิจนถึงสุกพร้อมรับประทาน ครบสุกผลไม้ที่ถูกแยกออกด้วยตนเองลงในเมล็ดเยื่อกระดาษและเปลือกและน้ำหนักสำหรับแต่ละองค์ประกอบที่ได้รับ เมล็ดและเปลือกถูกบดละเอียดในเครื่องปั่นและแห้งที่ 40 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมงในการไหลอากาศเตาอบ ความชื้นโดยวัดจากน้ำหนักที่แตกต่างกัน จากนั้น 50 กรัมเมล็ดแห้งหรืออะโวคาโดเปลือกถูกบันทึกอยู่ใน500mL ต้มกลั่นน้ำ ส่วนผสมนี้ถูกต้มและกวนโดยกวนแม่เหล็กสำหรับ30 นาที (Xu et al., 2008) สารสกัดที่ได้รับการกรองด้วยกระดาษกรอง(Whatman ฉบับที่ 4) กรองถูกแช่แข็งและแห้งที่5 มิลลิเมตรปรอทที่ 50 C (Freezone 2.5; Labconco คอร์ปแคนซัสมิสซูรีสหรัฐอเมริกา)?. ผงแห้งเก็บไว้ที่ 20 C? สารสกัดถูกละลายในน้ำกลั่นที่ 50 มิลลิกรัม / มิลลิลิตรก่อนที่แต่ละตัวละครทดสอบ(สีความจุต้านอนุมูลและองค์ประกอบ). 2.3 วัดสีสีของเปลือกเมล็ดเยื่อกระดาษและสารสกัดจากผลที่ถูกวัดโดยใช้colorimeter (ที่ ColorFlex spectrophotometer EZ 45 /? 0 ?; HunterLab เรสตัน, VA, USA) พิกัด CIELAB สี(L *, a * ​​และ b *) ถูกตั้งไว้ที่ 10? สังเกตการณ์มุมและแหล่งกำเนิดแสง D65. 2.4 เนื้อหาฟีนอลรวมPhenolics ถูกวัดโดยใช้ Folin-Ciocalteu ของฟีนอลสาร(ซิงเกิลและรอสซี 1965) มีการปรับเปลี่ยน สองร้อยmicroliters ของสารสกัดผสมกับ 1 มิลลิลิตร Folin-Ciocalteu ของสาร(1 N) และ 0.8 มิลลิลิตร 7.5% Na2CO3 ส่วนผสมที่ถูกบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 นาที การดูดกลืนแสงที่ได้รับการวัดที่ 760 nmusing พลัง HTspectrofluorometer (Biotek เครื่องมืออิงค์นุ, VT, สหรัฐอเมริกา) ผลลัพธ์ที่ได้จะแสดงเป็นมิลลิกรัมเทียบเท่ากรดฝรั่งเศส (GAE) ต่อกรัมของสารสกัด (น้ำหนักแห้ง DW)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

แล้วคลอโรฟิลล์ซึ่งเป็นผู้รับผิดชอบ
สารต้านอนุมูลอิสระ ( โรดริเกซ carpena morcuende kylli อันดราเด้ , , , , &เอสเตเวซ , 2011 ) .
แม้ว่าอาโวคาโด พลอยเป็นที่รู้จักสำหรับสารต้านอนุมูลอิสระ
ของพวกเขาเฉพาะอนุมูลอิสระเฉพาะการความจุ
ยังไม่ได้กําหนด .
บนมืออื่น ๆ , ปุ่ม , เป็ปไทด์ด้วย กิจกรรมการยับยั้ง
ผลิตโดย SP lactis แลคโตค คัส lactis ,เป็นที่ยอมรับโดยทั่วไปเป็นที่
ปลอดภัยและมีการใช้หลายวิธีในการควบคุมเชื้อโรคในอาหาร ( juneja dwivedi
, & , ยัน , 2012 ; มิลส์ สแตนตัน , เนินเขา , & Ross
2011 ) กลไกการดื้อยาต้านจุลชีพของเชื้อหลังเนื่องจากการปฏิสัมพันธ์
กับไขมัน 2 ในเมมเบรนพลาสม่าแบคทีเรียกับการก่อตัวตามมา
ของรูขุมขนที่ก่อให้เกิดการรั่วไหลของข้อมูล cytosolic
( บาวเออร์& Dicks , 2005 )มีการศึกษาเกี่ยวกับการต้านหลังแน่นอน

พบว่าสารสกัดหรือสารผลซึ่งทำงานร่วมกันเมื่อเหล่านี้จะใช้กับอาหาร โดยไม่มีการเปลี่ยนแปลงต่อ ( abdollahzadeh rezaei
, , จะบัน& 2014 ; เกา
et al . , 2010 ) .
วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้คือ : ) เพื่อทราบ องค์ประกอบและความสามารถของสารต้านอนุมูลอิสระต้าน
เมล็ดอะโวคาโด และ สารสกัดจากเปลือก
;ข ) การปรับส่วนผสมของวัตถุธรรมชาติ เช่น ไนซิน
( จุลชีพ ) กับเมล็ดอะโวคาโดและเปลือก ( สารต้านอนุมูลอิสระ )
ผ่านพื้นผิวตอบสนองและเพิ่มทั้งการตอบสนอง ; C )
มากับทางเลือกใหม่สำหรับวัตถุเจือปนอาหาร .
2 วัสดุและวิธีการ
2.1 . สารเคมี
หลัง ( 2.5 % w / w ที่สมดุลกับโซเดียม คลอไรด์ และใช้ของแข็งนม 106 IU /
, G ) 220 azobis ( 2-methylpropionamidine ) :
( aaph ) สารฟีนอลเป็น folin ciocalteu รีเอเจนต์ , ฝรั่งเศส
กรด แหล่งปลูก 2,4,6-tris ( และ ) - คือ ( tptz ) และสารเคมีอื่น ๆ
ซื้อมาจาก sigmaealdrich Co . ( เซนต์หลุยส์ , มิสซูรีสหรัฐอเมริกา

) 2.2 . อะโวคาโด ผลไม้อย่างอะโวคาโดและการสกัด
( หน้า Americana , แฮสความหลากหลาย ) ซื้อที่
เซ็นทรัล เดอ abastos ในเม็กซิโก และถูกเก็บรักษาไว้ที่อุณหภูมิห้อง
จนถึงสุกพร้อมที่จะกิน .
ผลสุกเต็มที่ด้วยตนเองแยกออกเป็นเมล็ด เปลือก เนื้อ และ และสำหรับแต่ละองค์ประกอบ
น้ำหนักได้ . เมล็ดและเปลือก
บดละเอียดในเครื่องปั่นและอบแห้งที่อุณหภูมิ 40 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง  ไหล
อากาศในเตาอบ ความชื้นวัดจากความแตกต่างของน้ำหนัก แล้ว 50 g
เมล็ดอะโวคาโดแห้ง หรือเปลือกเพิ่ม 500 มล. ต้มกลั่น
น้ำ ส่วนผสมนี้ถูกต้มและกวนโดย stirrer แม่เหล็ก
30 นาที ( Xu et al . , 2008 ) สารสกัดถูกกรองด้วยกระดาษกรอง
( whatman หมายเลข 4 ) หนักถูกแช่แข็งและแห้งที่
5 มิลลิเมตรปรอท ที่  50  C ( ฟรีโซน 2.5 ; แล็บคอนโก้คอร์ปแคนซัสมิสซูรีสหรัฐอเมริกา )
lyophilized ผงที่เก็บรักษาที่  20  สกัดถูก
Cละลายในน้ำกลั่นที่ 50 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร ก่อนที่แต่ละลักษณะ
assay ( สี , ความจุเป็นตัวเร่งปฏิกิริยา และส่วนประกอบ ) .
2.3 สีวัด
สีเปลือกเมล็ด เยื่อ และสารสกัดจากผลคือ
วัดใช้ระบบดิจิตอล ( colorflex เครื่อง Spectrophotometer
45  / 0  ; hunterlab Reston , VA , USA ) สีแถบพิกัด
( L *a * และ b * ) ถูกตั้งไว้ที่ 10  D65 แหล่งกำเนิดแสงและมุมสังเกตการณ์ .
2.4 . รวมเนื้อหา
ฟีโนลิกผลวัดโดยใช้ folin ciocalteu ของฟีนอล
Reagent ( ฌอน แอสติน&รอสซี่ , 1965 ) ที่มีการปรับเปลี่ยน สองร้อย
ตัวเลขของสารสกัดผสมกับ 1 มิลลิลิตรของ
folin ciocalteu Reagent ( 1 ) และ 0.8 ml 7.5 Na2CO3 . ส่วนผสมจะถูกบ่ม
ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 นาทีนถูก
วัดที่ 760 nmusing synergy htspectrofluorometer ( biotek
เครื่องมือสำหรับ Winooski , VT , USA ) ผลลัพธ์ที่ได้จะแสดงเป็น
มิลลิกรัม เทียบเท่าเพิ่มขึ้น ( เก ) ต่อกรัมสารสกัด ( น้ำหนัก
dw แห้ง )