Samples for BOD5 analyses were obta

Samples for BOD5 analyses were obtained from ponds on the Auburn University
Fisheries Research Unit, Auburn, AL, and on channel catfish Ictalurus punctatus farms in
Hale County, Alabama. Grab samples of surface water were put in 2-L plastic bottles and
held on ice in insulated chests for transport to the laboratory. The maximum time between
collection and initiation of analysis was 6 h, but most analyses were started within 2 or 3 h
after collection. Primary standard solutions for BOD5 were prepared from 1:1 mixtures of
glucose and glutamic acid (Clesceri et al., 1998).///////Standard BOD5 analyses were in accordance with Section 5210B of Standard Methods
for the Examination of Water and Wastewater (Clesceri et al., 1998). Water temperature
was adjusted to 20
1 8C by placing samples in a water bath. Each sample was treated
with sulfuric acid or sodium hydroxide solution to provide a pH between 6.5 and 7.5.
Samples were agitated to equilibrate dissolved oxygen concentration between 8.5 and
9 mg/L. Depending upon turbidity, aliquots of 50–200 mL from each sample were transferred to duplicate flasks and diluted to exactly 400 mL with BOD dilution water. The
dilution water was prepared from dry, nutrient premix (BOD Nutrient Buffer Pillows, Hach
Chemical Company, Loveland, CO, USA). A 2-mL aliquot of bacterial seed inoculum
(Polyseed1, Polybac Corporation, Bethleham, PA, USA) was introduced into each flask
before the samples were diluted. A nitrification inhibitor was not used. A BOD bottle
(305
1 mL) was filled from each flask, and the dissolved oxygen (DO) concentration was
measured immediately with a polarographic DO meter with BOD bottle probe and
mechanical stirring boot (Yellow Spring Instrument Company, Yellow Springs, OH, USA).
After removing the probe, a few drops of sample were added to replace water adhering to
the probe so that the bottle could be stoppered without creating air bubbles inside. The well
around the stopper was filled with sample, and a plastic cap was placed over the stopper and
well to prevent evaporation. Three dilution water blanks and three bacterial seed controls
were also prepared with each run. Samples, blanks, and seed controls were incubated in the
dark at 20
0.5 8C. After 5 days, the DO concentration in each bottle was measured with
the BOD bottle probe. The BOD5 was calculated with the following equation:@@@@@@@@@@@ where D1, initial DO concentration of sample, mg/L; D2, DO concentration of sample after
5 days, mg/L; B1, initial DO concentration of seed control, mg/L; B2, DO concentration of
seed control after 5 days, mg/L; P, decimal volumetric fraction of sample used; F, volume
of seed in diluted sample/volume of seed in seed control.///////////Samples for the alternate BOD5 method (direct method) were adjusted to 20
1 8C, pH
6.5–7.5, and DO of 8.5–9.0 mg/L as described above. Two BOD bottles were filled from
each sample, DO concentration was measured, a few drops of sample were added to the
bottle after removing the probe, and bottles were stoppered, capped, and incubated at
20
0.5 8C in the dark. In addition, a 50-mL bottle was filled with each sample, capped,
and held in the incubator with the BOD bottles. After 24 h, DO concentrations in BOD
bottles were measured with the BOD probe. The DO concentrations were recorded and the
samples were aerated by an oil-free aquarium air pump with plastic tubing and small air
stone until the DO concentration was above 8 mg/L. No attempt was made to saturate the
sample because of the slow rate of oxygenation between 8 mg/L DO and saturation.Water
that adhered to the aeration device and BOD bottle probe was replaced with sample from
the 50-mL bottles, and bottles were placed back in the incubator. Dissolved oxygen was
measured again after 48 h of incubation for those samples that contained less than 4 mg/L
DO after 24 h of incubation. After 72 h of incubation, DO was measured and all samples
were re-aerated. These samples with less than 4 mg/L DO after 72 h incubation were
checked again at 96 h. The final DO measurement was made after 5 days (120 h). The
BOD5 concentration was calculated by summing the losses of DO during the 5-day
incubation as follows:@@@@@@@@@@@@where Di, initial DO concentration or DO concentration after each re-aeration; Df, DO
concentration before each re-aeration or after 5 days (120 h).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ตัวอย่างสำหรับวิเคราะห์ BOD5 ได้รับมาจากบ่อในมหาวิทยาลัยออเบิร์นหน่วยวิจัยประมง ออเบิร์น AL และอเมริกัน Ictalurus punctatus ฟาร์มในเขตเฮล อลาบามา ใส่ในขวดพลาสติก 2 L คว้าตัวอย่างน้ำผิวดิน และจัดขึ้นบนน้ำแข็งในทรวงอกฉนวนสำหรับการขนส่งให้ห้องปฏิบัติการ เวลาสูงสุดระหว่างคอลเลกชันและการเริ่มต้นของการวิเคราะห์คือ 6 h แต่เริ่มวิเคราะห์มากที่สุดภายใน 2 หรือ 3 hหลังจากคอลเลกชัน โซลูชั่นมาตรฐานหลักสำหรับ BOD5 ถูกเตรียมจากการผสม 1:1กลูโคสและกลูตาเมต (Clesceri et al., 1998).///Standard BOD5 วิเคราะห์ได้ตามส่วน 5210B ของวิธีมาตรฐานตรวจสอบน้ำและน้ำเสีย (Clesceri et al., 1998) อุณหภูมิน้ำถูกปรับปรุงให้ 20 1 8C ได้ โดยทำตัวอย่างในห้องน้ำ แต่ละอย่างได้รับกับกรดซัลฟิวริกหรือโซเดียมไฮดรอกไซด์โซลูชันให้มี pH ระหว่าง 6.5 และ 7.5ตัวอย่างนั้นกระตุ้นทำการ equilibrate ความเข้มข้นของออกซิเจนละลายระหว่าง 8.5 และL. 9 มิลลิกรัมขึ้นอยู่กับความขุ่นของน้ำ aliquots 50 – 200 มล.จากแต่ละตัวอย่างถูกโอนย้ายไปน้ำซ้ำ และผสมการว่า BOD เจือจางน้ำ 400 mL ที่น้ำเจือจางที่เตรียมจากแห้ง ธาตุอาหาร premix (BOD สารบัฟเฟอร์หมอน Hachสารเคมีบริษัท Loveland, CO สหรัฐอเมริกา) ส่วนลงตัว 2 mL ของ inoculum ของเชื้อแบคทีเรียจากเมล็ด(Polyseed1, Polybac Corporation แหล่ง PA สหรัฐอเมริกา) ถูกนำเข้าสู่หนาวละก่อนที่ตัวอย่างถูกทำให้เจือจาง ไม่มีใช้ผลการอนาม็อกซ์ ขวด BOD(305 1 mL) มีการกรอกข้อมูลจากแต่ละหนาว และความเข้มข้นออกซิเจนละลาย (DO)วัดทันที ด้วยเครื่องวัดโด polarographic กับโพรบขวด BOD และเครื่องกวนบูต (บริษัทเครื่องมือสปริงสีเหลือง เหลืองสปริง OH สหรัฐอเมริกา)หลังจากเอาโพรบ เพิ่มหยดของตัวอย่างแทนน้ำยึดมั่นโพรบให้ขวดที่สามารถ stoppered โดยการสร้างฟองอากาศภายใน ดีสถานที่จุกก็เต็มไป ด้วยตัวอย่าง และฝาครอบพลาสติกที่วางจุกที่ และอย่างดีเพื่อป้องกันการระเหย สามช่องน้ำเจือจางและควบคุมเชื้อแบคทีเรียจากเมล็ดสามนอกจากนี้ยังได้เตรียมพร้อมกับรันแต่ละ ตัวอย่าง ช่อง และเมล็ดพันธุ์ควบคุมมี incubated ในการมืดที่ 20 0.5 ซี 8 หลังจาก 5 วัน ทำความเข้มข้นในแต่ละขวดถูกวัดด้วยโพรบขวด BOD BOD5 ถูกคำนวณ ด้วยสมการต่อไปนี้: @@@ ที่ง 1 ทำความเข้มข้นเริ่มต้นของตัวอย่าง mg/L D2 ทำความเข้มข้นของตัวอย่างหลังจาก5 วัน mg/L B1 ทำความเข้มข้นเริ่มต้นของเมล็ดพันธุ์ควบคุม mg/L B2 เข้มข้นทำเมล็ดพันธุ์ควบคุมหลังจาก 5 วัน mg/L P เศษทศนิยม volumetric ของตัวอย่างที่ใช้ F ระดับเสียงของเมล็ดตัวอย่างแตกออกปริมาณของเมล็ดในเมล็ด control.///Samples สำหรับ BOD5 อื่น วิธี (วิธีทางตรง) ถูกปรับ 20 1 8C, pH6.5 – 7.5 และโด 8.5-9.0 mg/L ตามที่อธิบายไว้ข้างต้น เต็มไปสองขวด BOD จากแต่ละอย่าง ทำสมาธิที่วัด เพิ่มการหยดของตัวอย่างหลังจากเอาโพรบ และขวดขวด stoppered ร็อคกี้ และ incubated ที่20 0.5 8C ในมืด นอกจากนี้ ขวด 50 mL ก็เต็มไป ด้วยตัวอย่างแต่ละ ร็อคกี้และจัดขึ้นในการบ่มเพาะวิสาหกิจกับขวด BOD หลังจาก 24 ชม ทำความเข้มข้นใน BODขวดถูกวัด ด้วยโพรบ BOD ความเข้มข้นการทำบันทึกและตัวอย่างที่อากาศ โดยการปั๊มอากาศสัตว์ปราศจากน้ำมันกับพลาสติกท่ออากาศขนาดเล็กหินจนกว่าความเข้มข้นทำได้เหนือ 8 มิลลิกรัม/L. ไม่พยายามที่ทำให้การตัวอย่างเนื่องจาก มีอัตราช้า oxygenation ระหว่างทำ 8 mg/L และความเข้ม น้ำที่ปฏิบัติตามอุปกรณ์ aeration และโพรบขวด BOD ถูกแทนที่ ด้วยตัวอย่างขวด 50 mL และขวดถูกวางในการบ่มเพาะวิสาหกิจ มีปริมาณออกซิเจนละลายวัดอีกครั้งหลังจาก 48 h ของการบ่มตัวอย่างเหล่านั้นที่ประกอบด้วยน้อยกว่า 4 mg/Lทำหลังจาก 24 ชมของคณะทันตแพทยศาสตร์ มีวัดหลังจากทำ h 72 ของคณะทันตแพทยศาสตร์ และตัวอย่างทั้งหมดมีอีกอากาศ ทำตัวอย่างนี้ มีน้อยกว่า 4 mg/L หลังจากบ่ม 72 h ได้ตรวจสอบอีกครั้งที่ 96 h ทำการวัดทำขั้นสุดท้ายหลังจาก 5 วัน (เอช 120) ที่เข้มข้น BOD5 คำนวณ โดยรวมขาดทุนจากของทำใน 5 วันคณะทันตแพทยศาสตร์เป็น Di ใน follows:@@@where เริ่มต้นทำสมาธิ หรือทำสมาธิหลังจาก aeration อีกละ Df ทำความเข้มข้น ก่อนละ aeration ใหม่ หรือ หลัง 5 วัน (เอช 120)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ BOD5
ที่ได้รับจากบ่อในมหาวิทยาลัยออเบิร์ประมงหน่วยวิจัยออเบิร์น, อลาบาม่าและในช่องทางฟาร์มปลาดุก Ictalurus punctatus
ในเฮลเคาน์ตี้แอละแบมา คว้าตัวอย่างของน้ำผิวดินถูกใส่ในขวดพลาสติก 2
ลิตรและเมื่อวันที่น้ำแข็งในหีบฉนวนสำหรับการขนส่งไปยังห้องปฏิบัติการ เวลาสูงสุดระหว่างการเก็บเงินและการเริ่มต้นของการวิเคราะห์เป็น 6 ชั่วโมง แต่การวิเคราะห์ส่วนใหญ่ได้เริ่มต้นภายใน 2 หรือ 3 ชั่วโมงหลังจากที่คอลเลกชัน ประถมโซลูชั่นมาตรฐาน BOD5 ที่เตรียมจาก 1: 1 ผสม(. Clesceri, et al, 1998) กลูโคสและกรดกลูตามิ ./////// วิเคราะห์มาตรฐาน BOD5 เป็นไปตามมาตรา 5210B ของวิธีการมาตรฐานสำหรับการตรวจสอบของน้ำและน้ำทิ้ง (Clesceri et al., 1998) อุณหภูมิของน้ำมีการปรับถึง 20? 1 8C โดยการวางตัวอย่างในอ่างน้ำ ตัวอย่างแต่ละคนได้รับการรักษาด้วยกรดซัลฟูริกหรือสารละลายโซเดียมไฮดรอกไซที่จะให้ค่า pH ระหว่าง 6.5 และ 7.5. ตัวอย่างตื่นเต้นที่จะสมดุลความเข้มข้นของออกซิเจนที่ละลายในน้ำระหว่าง 8.5 และ9 มิลลิกรัม / ลิตร ทั้งนี้ขึ้นอยู่กับความขุ่น aliquots ของ 50-200 มิลลิลิตรจากแต่ละตัวอย่างถูกย้ายไปซ้ำขวดและลดลงเหลือ 400 มิลลิลิตรว่าด้วยคณะกรรมการน้ำที่ทำให้เจือจาง น้ำที่ทำให้เจือจางที่เตรียมจากแห้งสารอาหารพรีมิกซ์ (BOD สารอาหารหมอนบัฟเฟอร์, Hach บริษัท เคมีเลิฟแลนด์, CO, USA) หาร 2 มิลลิลิตรของเชื้อแบคทีเรียเมล็ด(Polyseed1, Polybac คอร์ปอเรชั่น Bethleham, PA, สหรัฐอเมริกา) ถูกนำเข้าสู่ขวดแต่ละก่อนที่กลุ่มตัวอย่างที่ถูกปรับลด ยับยั้งไนตริฟิเคไม่ได้ใช้ ขวดบีโอดี(305? 1 มิลลิลิตร) ก็เต็มไปจากแต่ละขวดและออกซิเจนละลายน้ำ (DO) ความเข้มข้นได้รับการวัดทันทีที่มีโพลาโรกราฟิกDO เมตรสอบสวนขวดบีโอดีและบูตกวนกล(สีเหลืองฤดูใบไม้ผลิตราสาร บริษัท , เหลืองสปริงส์, OH, สหรัฐอเมริกา). หลังจากลบสอบสวนไม่กี่หยดของกลุ่มตัวอย่างที่ถูกเพิ่มเข้ามาแทนที่น้ำยึดมั่นในการสอบสวนเพื่อให้ขวดอาจจะจุกโดยไม่ต้องสร้างฟองอากาศภายใน ดีรอบจุกก็เต็มไปด้วยตัวอย่างและฝาพลาสติกถูกวางอยู่เหนืออุดและดีเพื่อป้องกันการระเหย สามช่องว่างน้ำที่ทำให้เจือจางสามควบคุมเมล็ดพันธุ์ของเชื้อแบคทีเรียได้จัดทำยังมีการทำงานในแต่ละ ตัวอย่างช่องว่างและการควบคุมเมล็ดพันธุ์ถูกบ่มในที่มืดที่ 20? 0.5 8C หลังจาก 5 วัน, ความเข้มข้น DO ในขวดแต่ละวัดที่มีการสอบสวนขวดคณะกรรมการ BOD5 ที่คำนวณด้วยสมการต่อไปนี้: @@@@@@@@@@@ ที่ D1, DO เริ่มต้นความเข้มข้นของตัวอย่างมิลลิกรัม / ลิตร; D2, DO ความเข้มข้นของกลุ่มตัวอย่างหลังจาก5 วัน, mg / l; B1, DO เริ่มต้นความเข้มข้นของการควบคุมเมล็ดมิลลิกรัม / ลิตร; B2, DO ความเข้มข้นของการควบคุมเมล็ดพันธุ์หลังจาก5 วัน, mg / l; P, ส่วนปริมาตรทศนิยมของกลุ่มตัวอย่างที่ใช้ F ปริมาณเมล็ดพันธุ์ในกลุ่มตัวอย่างที่เจือจาง/ ปริมาณของเมล็ดพันธุ์ในการควบคุมเมล็ด ./////////// ตัวอย่างสำหรับวิธีการอื่น BOD5 (วิธีโดยตรง) มีการปรับถึง 20? 1 8C, พีเอช6.5-7.5 และ DO ของ 8.5-9.0 มิลลิกรัม / ลิตรตามที่อธิบายไว้ข้างต้น สองขวด BOD เต็มไปจากแต่ละตัวอย่างเข้มข้นวัดDO ไม่กี่หยดของกลุ่มตัวอย่างถูกเพิ่มเข้าไปในขวดหลังจากลบสอบสวนและจุกขวดถูกต่อยอดและบ่มที่20? 0.5 8C ในที่มืด นอกจากนี้ยังมีขวด 50 มิลลิลิตรก็เต็มไปด้วยตัวอย่างแต่ละปกคลุมและจัดขึ้นในศูนย์บ่มเพาะกับขวดคณะกรรมการ หลังจาก 24 ชั่วโมง, DO ความเข้มข้นในการประชุมคณะกรรมการ บริษัทขวดถูกวัดกับคณะกรรมการสอบสวน ความเข้มข้น DO ถูกบันทึกไว้และตัวอย่างมวลเบาจากพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำที่ปราศจากน้ำมันปั๊มลมกับท่อพลาสติกและอากาศขนาดเล็กหินจนความเข้มข้นDO อยู่เหนือ 8 มิลลิกรัม / ลิตร ไม่มีความพยายามใดที่จะทำให้เต็มตัวอย่างเพราะอัตราการชะลอตัวของออกซิเจนระหว่างวันที่ 8 มก. / ลิตรและ DO saturation.Water ที่ยึดติดกับอุปกรณ์เติมอากาศและคณะกรรมการสอบสวนขวดถูกแทนที่ด้วยตัวอย่างจากขวด 50 มิลลิลิตรและขวดถูกวางไว้ กลับมาอยู่ในศูนย์บ่มเพาะ ออกซิเจนที่ละลายน้ำได้รับการวัดอีกครั้งหลังจาก 48 ชั่วโมงของการบ่มสำหรับตัวอย่างที่มีน้อยกว่า 4 มิลลิกรัม / ลิตรทำหลังจาก24 ชั่วโมงของการบ่ม หลังจาก 72 ชั่วโมงของการบ่ม, DO วัดและตัวอย่างทั้งหมดถูกมวลเบาอีกครั้ง ตัวอย่างเหล่านี้มีน้อยกว่า 4 มิลลิกรัม / ลิตรทำหลังจากการบ่ม 72 ชั่วโมงได้รับการตรวจสอบอีกครั้งใน96 ชั่วโมง การวัด DO สุดท้ายถูกทำขึ้นหลังจาก 5 วัน (120 ชั่วโมง) เข้มข้น BOD5 ที่คำนวณได้จากข้อสรุปของการสูญเสียที่ทำในช่วง 5 วันบ่มดังนี้@@@@@@@@@@@@ ที่ดิเข้มข้นเริ่มต้นทำหรือทำหลังจากที่แต่ละความเข้มข้นอีกครั้งอากาศ; df, DO เข้มข้นก่อนที่แต่ละคนอีกครั้งหลังจากการเติมอากาศหรือ 5 วัน (120 ชั่วโมง)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตัวอย่างการวิเคราะห์ factor ที่ได้จากบ่อใน Auburn ประมงมหาวิทยาลัย
หน่วยวิจัย , สีน้ำตาล , อัล และปลาดุกอุย ictalurus punctatus ฟาร์มใน
Hale County , อลาบาม่า เอาตัวอย่างน้ำผิวดิน ใส่ในขวดพลาสติก และ 2-l
จัดขึ้นบนน้ำแข็งในหีบฉนวนสำหรับการขนส่งไปยังห้องปฏิบัติการ เวลาสูงสุดระหว่าง
คอลเลกชันและการเริ่มต้นการวิเคราะห์ 6 H ,แต่การวิเคราะห์ส่วนใหญ่จะเริ่มภายใน 2 หรือ 3 H
หลังจากคอลเลกชัน โซลูชั่นมาตรฐานหลักสำหรับ factor ถูกเตรียมจาก 1 : 1 ผสม
กลูโคสและกรดกลูตามิค ( clesceri et al . , 1998 ) /////// factor วิเคราะห์มาตรฐานสอดคล้องกับมาตรา 5210b ของ
วิธีการมาตรฐานสำหรับการวิเคราะห์น้ำและน้ำเสีย ( clesceri et al . , 1998 )
อุณหภูมิน้ำคือปรับ 20
1 8C โดยวางตัวอย่างในห้องอาบน้ำ แต่ละตัวอย่างถูกปฏิบัติ
กับกรดหรือสารละลายโซดาไฟมี pH ระหว่าง 6.5 และ 7.5 .
จำนวนตื่นเต้นที่จะทำให้สมดุลออกซิเจนที่ละลายในน้ำความเข้มข้นระหว่าง 8.5 และ
9 มิลลิกรัมต่อลิตร ทั้งนี้ขึ้นอยู่กับความขุ่นเฉยๆของ 50 – 200 ml จากแต่ละตัวอย่างมีการโอนซ้ำอาหารเจือจางตรง 400 ml กับ BOD ในน้ำ
เจือจางน้ำที่เตรียมจากแห้ง ใช้สารอาหาร ( BOD สารอาหารกันชนหมอน HACH
เคมีบริษัท เลิฟ , CO , USA ) เป็น 2-ml ส่วนลงตัวของเมล็ดเชื้อแบคทีเรีย
( polyseed1 , บริษัท , bethleham polybac , PA , USA ) ได้รับการแนะนำในแต่ละขวด
ก่อนทำการเจือจาง เป็นสารยับยั้งไนตริฟิเคชันไม่ได้ใช้ ขวดบีโอดี
( 305
1 มิลลิลิตร ) บรรจุแต่ละขวด และค่าออกซิเจนละลายน้ำ ( DO ) ความเข้มข้น
วัดทันทีกับของโพลาโรกราฟฟี่ เครื่องวัดกับ probe ขวดบีโอดีและ
กลกวนบูต ( บริษัท อุปกรณ์สปริงสีเหลืองสีเหลืองสปริง , โอ้ , USA ) .
หลังจากลบโพรบไม่กี่หยดตัวอย่างถูกเพิ่มเพื่อแทนที่น้ำยึดมั่น
สอบสวนเพื่อให้ขวดอาจจะ stoppered โดยไม่สร้างฟองอากาศภายใน ดี
รอบกันชนเต็มไปด้วยตัวอย่าง และหมวกพลาสติกวางอยู่เหนือกันชนและ
อย่างดีเพื่อป้องกันการระเหย สามช่องว่างและเจือจางน้ำจากเมล็ดสามการควบคุม
ถูกจัดเตรียมไว้กันหนี ตัวอย่าง ว่างและเมล็ดพันธุ์ควบคุมถูกบ่มใน
มืดที่ 20
0.5 8C หลังจาก 5 วัน ทำสมาธิในแต่ละขวดวัดด้วย
BOD ขวดด้วย การคํานวณ factor กับสมการต่อไปนี้ : @@@@@@@@@@@ ที่ D1 เริ่มต้นทำ ความเข้มข้นของสารละลายตัวอย่าง mg / l ; D2 , ความเข้มข้นของตัวอย่างหลังจาก
5 วัน , mg / l ; B1 , เริ่มต้นทำสมาธิควบคุมเมล็ด mg / l ; B2
ทำสมาธิ