Materials and methodsPlant material

Materials and methods
Plant material and growth conditions
The explants were obtained from 20- to 30-year-old mature tree of S. persica growing near to the University campus. The explants were washed under running tap water for 20 min to remove any adherent particles. Thoroughly washed explants were then immersed in 1 % (v/v) Teepol, a liquid detergent for 2–3 min, and thereafter surface sterilized in ethanol for 30 s. The explants were immersed
in 0.1 % (w/v) aqueous solution of HgCl2 for 10 min, rinsed with distilled water and then suitable size nodal explants (~1 cm) were inoculated on to the medium. Mu- rashige and Skoog (1962) (MS) medium contained 3 % sucrose, 0.8 % agar with different combinations and con- centrations of plant growth regulators. The pH was adjus- ted to 5.8 and autoclaved at 121 C for 20 min. Organic supplements like coconut milk (10 %) and all vitamins (twofold) were used for the improvement of callus growth and friability. The callus was then separated from the initial explants and subcultured every 30–35 days. The callus was maintained on MS medium with combinations of 2,4,5-T and BAP, 0.5 mg/l each, 3 % (w/v) sucrose, double vita- mins and 0.8 % (w/v) agar. For salt stress experiment, different NaCl concentrations (0, 50, 100 and 200 mM) were added in MS medium and 40 ml medium was poured in 100-ml wide-mouth conical flasks. The callus (2.0 g) was inoculated in each flask and these cultures were incubated at 25 ± 0.2 C under a 16 h d-1 photoperiod with 50 lmol m-2 s-1 irradiance. Fresh weight (FW) and dry weight (DW) were determined after 30-day growth.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัสดุและวิธีการสภาพวัสดุและเจริญเติบโตของพืชExplants ได้รับจากต้นไม้ผู้ใหญ่ 20 ไป 30-ปีของ S. persica เติบโตใกล้มหาวิทยาลัยมหาวิทยาลัย Explants ถูกล้างภายใต้การทำน้ำประปาสำหรับ 20 นาทีเอาอนุภาคใด ๆ นฤมล Explants หินอย่างละเอียดได้จากนั้นแช่อยู่ใน 1% (v/v) Teepol น้ำยาซักฟอกสำหรับ 2 – 3 นาที และหลังจากนั้นผิว sterilized ในเอทานอลสำหรับ 30 s Explants ใบขึ้นไปใน 0.1% (w/v) ละลายของ HgCl2 ใน 10 นาที rinsed ด้วยน้ำกลั่นแล้ว explants ดังขนาดที่เหมาะสม (~ 1 cm) ได้ inoculated ระบบสื่อ หมู่-rashige และ Skoog (1962) (MS) กลางอยู่ 3% ซูโครส agar 0.8% กับชุดคอน centrations ของหน่วยงานกำกับดูแลการเจริญเติบโตของพืช PH เป็นเท็ด adjus ไป 5.8 และ autoclaved ที่ 121 C ประมาณ 20 นาทีสำหรับเกษตรอินทรีย์ผลิตภัณฑ์เสริมอาหารเช่นกะทิ (10%) และใช้สำหรับการพัฒนาของแคลลัสการเจริญเติบโตและ friability วิตามินทั้งหมด (สองเท่า) แคลลัสถูกแยกออกจาก explants เริ่มต้นแล้ว และ subcultured ทุก ๆ 30 – 35 วัน แคลลัสมีอยู่ในกลางของ MS กับ 2,4,5 T และ BAP, 0.5 mg/l แต่ละ ซูโครส 3% (w/v) คู่วีตานาที และ agar 0.8% (w/v) สำหรับการทดสอบความเครียดเกลือ เพิ่มความเข้มข้น NaCl แตกต่างกัน (0, 50, 100 และ 200 มิลลิเมตร) ใน MS และกลาง 40 ml ถูก poured ใน flasks ทรงกรวยกว้างปาก 100 ml แคลลัส (2.0 g) ถูก inoculated ในแต่ละ flask และวัฒนธรรมเหล่านี้ถูก incubated ที่ 25 ± 0.2 C ภายใต้ช่วงแสง d 1 16 h มี irradiance s 1 m 2 lmol 50 น้ำหนักสด (FW) และน้ำหนักแห้ง (DW) ถูกกำหนดหลังจาก 30 วันการเจริญเติบโต

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัสดุและวิธีการ
วัสดุอาคารและสภาวะการเจริญเติบโต
ชิ้นส่วนที่ได้รับจาก 20 ไปที่ต้นไม้ 30 ปีเป็นผู้ใหญ่ของเอส persica เติบโตใกล้กับมหาวิทยาลัย ชิ้นถูกล้างภายใต้การใช้น้ำประปาเป็นเวลา 20 นาทีเพื่อขจัดอนุภาคสาวกใด ๆ ชิ้นล้างให้สะอาดแล้วแช่ใน 1% (v / v) Teepol, น้ำยาซักผ้าสำหรับ 2-3 นาทีและหลังจากนั้นพื้นผิวผ่านการฆ่าเชื้อในเอทานอลเป็นเวลา 30 วินาที ชิ้นส่วนที่ถูกแช่อยู่
ใน 0.1% (w / v) สารละลายของ HgCl2 เป็นเวลา 10 นาทีล้างด้วยน้ำกลั่นและขนาดที่เหมาะสมแล้วชิ้นสำคัญ (~ 1 ซม) ได้รับเชื้อไปยังสื่อ rashige MU- และ Skoog (1962) (MS) กลางมี 3% ซูโครสวุ้น 0.8% กับชุดที่แตกต่างกันและ centrations งของสารควบคุมการเจริญเติบโตของพืช ค่าความเป็นกรดเป็น adjus- ted 5.8 และนึ่งฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 121 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 20 นาที อาหารเสริมอินทรีย์เช่นกะทิ (10%) และวิตามินทั้งหมด (สองเท่า) ถูกนำมาใช้ในการปรับปรุงการเจริญเติบโตของแคลลัสและกร่อน แคลลัสที่ได้รับการแยกออกจากกันแล้วจากชิ้นส่วนเริ่มต้นและต่อเชื้อทุก 30-35 วัน แคลลัสที่ได้รับการเก็บรักษาไว้ในสูตร MS ที่มีการรวมกันของ 2,4,5-T และ BAP 0.5 mg / l แต่ละ, 3% (w / v) น้ำตาลซูโครสสอง Vita- นาทีและ 0.8% (w / v) วุ้น เกลือทดลองความเครียดความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์ที่แตกต่างกัน (0, 50, 100 และ 200 มิลลิเมตร) ถูกเพิ่มเข้ามาใน MS ขนาดกลางและขนาด 40 มลถูกเทในมล 100 รูปกรวยกว้างปากชั้นถาม แคลลัส (2.0 กรัม) เป็นเชื้อในแต่ละ fl ถามและวัฒนธรรมเหล่านี้ถูกบ่มที่ 25 ± 0.2 องศาเซลเซียสต่ำกว่า 16 ชั่วโมง D-1 ช่วงแสง 50 lmol M-2 s-1 รังสี น้ำหนักสด (FW) และน้ำหนักแห้ง (DW) ได้รับการพิจารณาหลังจากที่การเจริญเติบโต 30 วัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัสดุและวิธีการและเงื่อนไขการเจริญเติบโต

วัสดุพืชเนื้อเยื่อที่ได้จาก 20 - 30 ปี ต้นไม้ของ S . การทดสอบความเป็นผู้ใหญ่เพิ่มขึ้นใกล้มหาวิทยาลัยวิทยาเขต เนื้อเยื่อที่ถูกล้างภายใต้น้ำไหล 20 นาทีเพื่อลบใด ๆที่ติด อนุภาค ล้างให้สะอาดแล้วแช่อาหารใน 1% ( v / v ) ทีโพล , ผงซักฟอกแบบเหลว 2 – 3 นาทีและหลังจากนั้นฟอกฆ่าเชื้อในเอทานอล 30 S . เนื้อเยื่อที่ถูกแช่
ใน 0.1% ( w / v ) สารละลายของ hgcl2 10 นาทีล้างด้วยน้ำกลั่น และขนาดที่เหมาะสมสร้างเนื้อเยื่อ ( ~ 1 ซม. ) ปลูกเชื้อบนตัวกลาง มู - rashige and Skoog ( 1962 ) ( MS ) medium ซึ่งประกอบด้วยซูโครส 3 เปอร์เซ็นต์ 0.8% วุ้นกับชุดค่าผสมที่แตกต่างกันและ con - centrations สารควบคุมการเจริญเติบโตของพืชการปรับ pH 5.8 - เท็ด และเพื่อสังเคราะห์ที่ 121  C 20 นาที ผลิตภัณฑ์เสริมอาหารอินทรีย์เช่นกะทิ ( 10% ) และวิตามิน ( สองเท่า ) ใช้เพื่อปรับปรุงการเจริญเติบโตของแคลลัสและจอมปลอม . อาหารก็แยกจากเนื้อเยื่อที่เริ่มต้นและ subcultured ทุกๆ 30 - 35 วัน แคลลัสบนอาหารสูตร MS ที่ถูกรักษาด้วยการรวมกันของ 2,4,5-t และ BAP 0.5 มิลลิกรัมต่อลิตรละ3% ( w / v ) ซูโครส , Double Vita - นาทีและ 0.8 % ( w / v ) วุ้น สำหรับการทดสอบความเครียดเกลือ ความเข้มข้นของเกลือที่แตกต่างกัน ( 0 , 50 , 100 และ 200 mm ) เพิ่มในอาหาร MS และ 40 ml ) เท 100 ml flรูปกรวยกว้าง ปากถาม อาหาร ( 2.0 G ) เป็นเชื้อในแต่ละflถามและวัฒนธรรมเหล่านี้อุณหภูมิ 25 ± 0.2  C ภายใต้ 16 H 1 ต่อ 50 lmol ด้วย irradiance ที่สุด .น้ำหนักสดและน้ำหนักแห้ง ( FW ) ( DW ) ซึ่งหลังจาก 30 วัน
การเจริญเติบโต .