Antimicrobial activity (agar diffus

Antimicrobial activity (agar diffusion assay)
Microorganisms were prepared as described elsewhere (Alzoreky
and Nakahara, 2003). Each pathogen was activated by
transferring a loopful from (BHI) slants into nutrient broth (10 ml)
followed by incubation at 37 ◦C for 18 h. The optical density of each
active culture was adjusted to 0.1 at 625nm using fresh broth to
give a standard inoculum of ca. 106 colony forming units (cfu) per
ml. Bacterial counts were confirmed by plating out on nutrient
agar (NA) plates (Oxoid, UK) incubated at 37 ◦C for 48 h. The agar
diffusion assay (Patil and Gaikwad, 2010) was adopted for evaluating
the antimicrobial activity of test materials. One hundred
ml of a sterilized NA tempered at 50 ◦C (water bath) was aseptically
inoculated with active cultures. The seeded agar media (ca.
105 cfu/ml) were immediately mixed and poured into Petri plates
(Ø 90 mm). Wells (6mm diameter) were punched in media using
a sterilized stainless steel borer. Each well was aseptically filled
with 100l (5.3 mg) extracts from fresh or dried spathe. The plates
were left atroomtemperature for 30 minto allow diffusion of materials
in media. Chloramphenicol (50g/ml) and blanks (solvents)
were also used under the same conditions. Plates were incubated at
37 ◦C for 12–48 h, until visible growth of test microorganisms was
evident in control plates. Inhibition zones in millimeter (including
well diameter) around wells were recorded. The test was assayed
in triplicates.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

กิจกรรมต้านจุลชีพ (วุ้นกระจาย assay)จุลินทรีย์วจัดดังที่อื่น ๆ (Alzorekyและนาคาฮา ระ 2003) เชื้อโรคแต่ละเรียกใช้โดยloopful เป็นการถ่ายโอนจาก slants (BHI) เป็นสารอาหารซุป (10 ml)ตาม ด้วยการบ่มที่ 37 ◦C สำหรับ 18 h ความหนาแน่นออปติคัลของแต่ละวัฒนธรรมที่ใช้งานอยู่ถูกปรับปรุงเป็น 0.1 ที่ 625nm เงินสดและการใช้ให้ inoculum ในมาตรฐานของ ca. 106 สร้างอาณานิคมหน่วย (cfu) ต่อml. แบคทีเรียนับได้รับการยืนยัน โดยชุบออกสารอาหารแผ่นวุ้น (NA) (Oxoid, UK) ได้รับการกกที่ 37 ◦C สำหรับ 48 ชั่วโมง อาหารทดสอบการกระจาย (Patil และ Gaikwad, 2010) ถูกนำมาใช้สำหรับการประเมินกิจกรรมการต้านจุลชีพของวัสดุทดสอบ หนึ่งร้อยml ของ NA ผ่านการฆ่าเชื้อที่อารมณ์ที่ 50 ◦C (อาบน้ำ) คือ asepticallyinoculated กับงานวัฒนธรรม สื่อเงินวุ้น (ca105 cfu/ml) ทันทีผสม และเทลงในจานเพาะ(Ø 90 มม) ถูกเจาะหลุม (เส้นผ่านศูนย์กลาง 6 มิลลิเมตร) ในการใช้สื่อเป็นสแตนเลสผ่านการฆ่าเชื้อโรค แต่ละอย่างดี aseptically เต็มไปด้วยสารสกัดจาก l 100 (5.3 mg) จากมานสด หรือแห้ง แผ่นได้อนุญาตให้ atroomtemperature ซ้ายสำหรับ 30 วเดนท์แพร่วัสดุในสื่อ คคัส (50 กรัม/มิลลิลิตร) และช่องว่าง (สารละลาย)นอกจากนี้ยังใช้ภายใต้เงื่อนไขเดียวกัน แผ่นได้รับการกกที่◦C 37 สำหรับ 12 – 48 ชม. จนมองเห็นได้เจริญเติบโตของจุลินทรีย์ทดสอบเห็นได้ชัดแผ่นควบคุม มิลลิเมตร (รวมเขตการยับยั้งเส้นผ่าศูนย์กลางดี) รอบหลุมบันทึก การทดสอบถูก assayedใน triplicates

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ฤทธิ์ต้านจุลชีพ (agar แพร่ทดสอบ)
จุลินทรีย์ได้จัดทำขึ้นตามที่อธิบายไว้ในที่อื่น ๆ (Alzoreky
และ Nakahara, 2003) เชื้อโรคแต่ละชนิดถูกเปิดใช้งานโดย
การถ่ายโอนจาก loopful (BHI) slants ลงไปในน้ำซุปสารอาหาร (10 มล.)
ตามด้วยการบ่มที่อุณหภูมิ 37 ◦Cสำหรับ 18 ชั่วโมง ความหนาแน่นของแสงของแต่ละ
วัฒนธรรมมีการปรับการใช้งาน 0.1 ที่ 625nm ใช้น้ำซุปใหม่เพื่อ
ให้เชื้อมาตรฐานของรัฐแคลิฟอร์เนีย 106 หน่วยอดีตอาณานิคม (CFU) ต่อ
มิลลิลิตร ปริมาณแบคทีเรียได้รับการยืนยันโดยการชุบสารอาหารออกใน
วุ้น (NA) แผ่น (Oxoid สหราชอาณาจักร) บ่มที่ 37 ◦Cเป็นเวลา 48 ชั่วโมง วุ้น
ทดสอบการแพร่กระจาย (Patil และ Gaikwad 2010) ถูกนำมาใช้ในการประเมินผล
กิจกรรมการต้านจุลชีพของวัสดุทดสอบ หนึ่งร้อย
มิลลิลิตรของการฆ่าเชื้อ NA อารมณ์ที่ 50 ◦C (อ่างน้ำ) คือการปลอดเชื้อ
เชื้อด้วยวัฒนธรรมที่ใช้งาน สื่อวุ้นเมล็ด (แคลิฟอร์เนีย
105 CFU / ml) ถูกผสมทันทีและเทลงในจาน Petri
(O 90 มิลลิเมตร) เวลส์ (เส้นผ่าศูนย์กลาง 6mm) ได้รับการเจาะในสื่อใช้
หนอนเจาะสแตนเลสผ่านการฆ่าเชื้อ แต่ละคนเดียวก็เต็มไปปลอดเชื้อ
ที่มี 100 ลิตร (5.3 มก.) สารสกัดจากกาบมะพร้าวสดหรือแห้ง แผ่น
ถูกทิ้ง atroomtemperature 30 Minto อนุญาตให้มีการแพร่กระจายของวัสดุ
ในสื่อ chloramphenicol (50? g / ml) และช่องว่าง (ตัวทำละลาย)
นอกจากนี้ยังถูกนำมาใช้ภายใต้เงื่อนไขเดียวกัน แผ่นถูกบ่มที่
37 ◦Cสำหรับ 12-48 ชั่วโมงจนสามารถมองเห็นการเจริญเติบโตของเชื้อจุลินทรีย์ทดสอบเป็น
ที่เห็นได้ชัดในแผ่นควบคุม โซนการยับยั้งในมิลลิเมตร (รวมทั้ง
ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางกัน) รอบหลุมที่ถูกบันทึกไว้ การทดสอบได้รับการวิเคราะห์
ใน triplicates

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ฤทธิ์ต้านจุลชีพ ( วุ้น diffusion assay )จุลินทรีย์ที่ถูกเตรียมไว้ตามที่อธิบายไว้ในที่อื่น ( alzorekyและ นาคาฮาร่า , 2003 ) เชื้อนี้ถูกเปิดใช้งานโดยแต่ละการโอน loopful จาก ( BHI ) slants ไปต้มซุปสารอาหาร ( 10 ml )ตามด้วยบ่มที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 18 ชั่วโมง◦ความหนาแน่นของเลนส์แต่ละวัฒนธรรมงานปรับ 625nm 0.1 ที่ใช้น้ำซุปจืดให้เชื้อมาตรฐานประมาณ 106 โคโลนีสร้างหน่วย ( CFU ) ต่อมิลลิลิตรจุลินทรีย์ที่ได้รับการยืนยันโดยการชุบจากสารอาหารวุ้น ( na ) แผ่น ( oxoid , UK ) บ่มที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมง ◦วุ้นการทดสอบการแพร่กระจาย ( ปาติล และ gaikwad 2010 ) ถูกใช้เพื่อประเมินกิจกรรมการต้านจุลชีพของวัสดุทดสอบ หนึ่งร้อยสามารถฆ่าเชื้อ นา นิสัยที่ 50 ◦ C ( น้ำร้อน ) คือ asepticallyแต่กับวัฒนธรรมที่ใช้งานอยู่ ส่วนเมล็ดอาหารวุ้น ( CA105 CFU / มิลลิลิตรผสมและเทลงในจานเพาะเลี้ยงทันที( Ø 90 มม. ) เวลส์ ( เส้นผ่าศูนย์กลาง 6mm ) ชกในสื่อโดยใช้ฆ่าเชื้อสแตนเลสเจาะ . แต่ละคนก็เต็ม asepticallyกับ 100L ( 5.3 มก. ) สารสกัดจาก สด หรือแห้ง กาบ . ใส่แผ่นเหลือ atroomtemperature 30 มินโตะช่วยการแพร่กระจายของวัสดุในสื่อ คลอแรมเฟนิคอล ( 50 กรัม / มิลลิลิตร ) และช่องว่าง ( ตัวทำละลาย )ถูกใช้ภายใต้เงื่อนไขเดียวกัน อุณหภูมิแผ่น37 ◦ C 12 - 48 ชั่วโมง จนมองเห็นการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ทดสอบคือเห็นได้ชัดในทะเบียนคุม โซนในการยับยั้งมิลลิเมตร ( รวมทั้งคือเส้นผ่าศูนย์กลาง ) รอบบ่อถูกบันทึกไว้ การทดสอบซีรั่ม3 ซ้ำ .