Evaluation of botanicals as anthrac

Evaluation of botanicals as anthracnose control materials: Three indigenous plants (Annona squamosa, Azadirachta indica and Vernonia amygdalina) were selected and used in the study based on the fungicidal background previously reported in literature.

Preparation of plant extracts: Aqueous plant extract was prepared by sun-drying for 2 days and grinding separately 100 g of fresh leaves of each of the selected plants in a blender following Abd El-Khair and Haggag (2007) method. Resultant extract solution was filtered through two layers of cheesecloth and different concentrations prepared by diluting 1 part of the plant extract into 9 part of sterile distilled water.

Alcohol plant extract was prepared by air-drying and grinding 100 g of leaves of each plant to powder state and subjected to cold extraction with 95% alcohol for 8 days following Khan et al. (2004). The solution was filtered through two layers of cheese cloth and different concentration levels were prepared as describe above.

Anthracnose disease pathogen: Laboratory studies were conducted on lesions on mango leaves, panicles and fruits collected from orchards and home gardens surveyed in each location. The lesions were carefully excised and sterilized before incubation at room temperature for 5 days following Amusa et al. (2005) isolation procedures. Isolated colonies were sub-cultured onto fresh potato dextrose agar media to obtain pure cultures which were identified based on conidia and colony morphology as described by Dugan (2006) and Mordue (1971). Single spore isolates of Colletotrichum gloeosporioides were cultured on potato dextrose agar slants in Bijour bottles, stored in a refrigerator and were sub-cultured in Petri dishes and incubated at temperature ranging from 28-30°C for 7 days following Sangeetha and Rawal (2009) method before use.

Pathogenicity test: Six healthy freshly harvested green matured mango fruits were surface sterilized by swabbing with 70% alcohol and later with 1% NaOCl solution. The fruits were inoculated with spore suspension of Colletotrichum gloeosporioides prepared following the procedure of Sivakumar et al. (1997). Isolation and re-isolation of pathogens from fruits that showed symptoms of anthracnose after 5 days of incubation was carried out following Koch’s postulate for proof of pathogenicity as described by Schumann and D’Arcy (2006).

Effect of plant extracts on mycelial growth of anthracnose fungus: The effect of the plant extracts on the linear mycelial growth was evaluated using hole-plate diffusion method of Deans and Ritchie (1987). Petri dishes containing 15 mL of potato dextrose agar each were inoculated with 5 mm disc of fungal pathogen at the center surrounded by 3 wells of 1 cm each in diameter at a distance of 1 cm from the fungal pathogen. Each well was added with 100 μL of aqueous or alcohol extracted plant extracts. Three plates were used for each plant extract as replicates and sterile water was used for control. Inoculated plates were incubated at 25-30°C until mycelial growth of the fungal pathogen covered the surface of the agar medium in control treatment. The antifungal activity of each plant extract was measured by measuring the mycelial growth of the pathogen on PDA with measuring rule and the percentage of linear growth reduction of fungal pathogen in relation to the control was calculated using the following formula:

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ประเมินของ botanicals เป็น anthracnose ควบคุมวัสดุ: พืชพื้นเมืองสาม (Annona squamosa สะเดา และ Vernonia amygdalina) เลือก และใช้ในการยึดพื้น fungicidal รายงานก่อนหน้านี้ ในเอกสารประกอบการศึกษาการการเตรียมพืชสารสกัด: สารสกัดจากพืชอควีถูกเตรียม โดยแดดแห้ง 2 วัน และบดแยกอาหารสด 100 กรัมใบของแต่ละพืชเลือกในเบลนเดอร์ที่ Abd El ค็อยและ Haggag (2007) วิธีการดังต่อไปนี้ สารสกัดจากผลแก่โซลูชันถูกกรอง โดยชั้นสองของ cheesecloth และความเข้มข้นแตกต่างกันโดย diluting part 1 ของแยกเป็น 9 ส่วนของน้ำกลั่นที่ฆ่าเชื้อสารสกัดจากพืชแอลกอฮอล์โดย air-drying และบด 100 กรัมของใบพืชแต่ละสถานะผง และการสกัดเย็นด้วยแอลกอฮอล์ 95% 8 วันต่อคันและ al. (2004) โซลูชันที่ถูกกรองผ่านชีผ้าสองชั้น และระดับความเข้มข้นแตกต่างกันถูกเตรียมไว้ตามที่อธิบายข้างต้นการศึกษาโรค anthracnose: ห้องปฏิบัติการศึกษาได้ดำเนินการบนได้ใบมะม่วง panicles และผลไม้จากสวนผลไม้และสวนภายในบ้านที่สำรวจในแต่ละตำแหน่ง ได้ถูก excised อย่างระมัดระวัง และ sterilized ก่อนบ่มที่อุณหภูมิห้อง 5 วัน Amusa et al. (2005) แยกตามขั้นตอนต่อไปนี้ แยกอาณานิคมถูกย่อยอ่างบนมันฝรั่งสดขึ้น agar media รับวัฒนธรรมบริสุทธิ์ซึ่ง conidia ตามระบุและสัณฐานวิทยาของโคโลนีดังที่ Dugan (2006) และ Mordue (1971) แยกสปอร์เดี่ยวของ Colletotrichum gloeosporioides ได้อ่างบน slants agar ขึ้นมันฝรั่งในขวด Bijour เก็บไว้ในตู้เย็นถูกย่อยอ่างในจาน Petri และ incubated ที่อุณหภูมิตั้งแต่ 28-30 ° C 7 วันต่อซานจีทาและ Rawal วิธี (2009) ก่อนใช้ทดสอบ pathogenicity: 6 เขียวสดเก็บเกี่ยวสุขภาพ matured ผลไม้มะม่วงมีผิว sterilized โดย swabbing ด้วยแอลกอฮอล์ 70% และหลังจากที่ มี 1% NaOCl โซลูชัน ผลไม้ถูก inoculated กับสปอร์ทุเลา gloeosporioides Colletotrichum ที่เตรียมไว้ที่วิธีการของ Sivakumar et al. (1997) แยกและแยกโรคจากผลไม้ที่พบโรค anthracnose หลังจาก 5 วันหลังจากฟักตัว ใหม่ถูกดำเนินต่อของคอ postulate สำหรับหลักฐานของ pathogenicity ดังที่สคูมันและ D'Arcy (2006)สารสกัดจากผลของพืชใน mycelial การเจริญเติบโตของเชื้อรา anthracnose: ผลของสารสกัดจากพืชเจริญเติบโต mycelial เชิงเส้นถูกประเมินโดยใช้วิธีการแพร่จานหลุมคณบดีบริการและ Ritchie (1987) ประกอบด้วย 15 mL ของมันฝรั่งขึ้น agar แต่ละจาน petri ถูก inoculated กับดิสก์ 5 มม.ของการศึกษาเชื้อราที่ล้อมรอบ ด้วยบ่อ 3 ของ 1 ซม.แต่ละเส้นผ่าศูนย์กลาง 1 ซ.ม.จากการศึกษาเชื้อราใน แต่ละดีถูกเพิ่มกับ μL 100 ของอควี หรือสารสกัดจากพืชสกัดแอลกอฮอล์ แผ่นที่สามใช้สำหรับแยกแต่ละโรงงานเป็นเหมือนกับ และใส่น้ำใช้สำหรับการควบคุม มี incubated inoculated แผ่นที่ 25-30° C จนกระทั่งเติบโต mycelial การศึกษาเชื้อราปกคลุมพื้นผิวของสื่อ agar ในการควบคุมรักษา กิจกรรมต้านเชื้อราของสารสกัดจากพืชแต่ละถูกวัด โดยการวัดการเติบโต mycelial ของศึกษาบน PDA กับกฎการวัด และคำนวณเปอร์เซ็นต์ลดเส้นเจริญเติบโตของเชื้อราในการศึกษาเกี่ยวกับการควบคุมโดยใช้สูตรต่อไปนี้:

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การประเมินผลของพืชเป็นวัสดุการควบคุมแอนแทรกโน:. สามพืชพื้นเมือง (น้อยหน่า squamosa, สะเดาและ Vernonia amygdalina) ได้รับการคัดเลือกและใช้ในการศึกษาบนพื้นฐานของพื้นหลังเชื้อรารายงานก่อนหน้านี้ในวรรณคดีการเตรียมสารสกัดจากพืช: สารสกัดจากพืชน้ำถูกจัดทำขึ้นโดยดวงอาทิตย์ -drying เป็นเวลา 2 วันและบดแยก 100 กรัมของใบสดของแต่ละพืชที่เลือกในเครื่องปั่นต่อไปนี้อับเอล-Khair และ Haggag (2007) วิธีการ วิธีการแก้ปัญหาสารสกัดจากผลถูกกรองผ่านสองชั้นของผ้าและความเข้มข้นที่แตกต่างกันจัดทำขึ้นโดยเจือจาง 1 ส่วนหนึ่งของสารสกัดจากพืชเป็น 9 ส่วนหนึ่งของน้ำกลั่นปลอดเชื้อ. สารสกัดจากพืชเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ที่ได้รับการจัดทำขึ้นโดยอากาศแห้งและบด 100 กรัมของใบของพืชแต่ละชนิดผง ของรัฐและอยู่ภายใต้การสกัดเย็นที่มีเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ 95% เป็นเวลา 8 วันต่อข่าน et al, (2004) วิธีการแก้ปัญหาที่ได้รับการกรองผ่านสองชั้นของผ้าชีสและระดับความเข้มข้นที่แตกต่างกันเตรียมอธิบายข้างต้น. เชื้อโรคโรคแอนแทรกโน: การศึกษาในห้องปฏิบัติการได้รับการดำเนินการเกี่ยวกับแผลบนใบมะม่วงช่อดอกและผลไม้ที่เก็บมาจากสวนผลไม้และสวนหย่อมบ้านสำรวจในแต่ละสถานที่ แผลที่ถูกตัดอย่างระมัดระวังและการฆ่าเชื้อก่อนการบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 5 วันต่อไปนี้ Amusa et al, (2005) ขั้นตอนการแยก อาณานิคมถูกแยกย่อยเพาะเลี้ยงบนเดกซ์โทรสมันฝรั่งสดวุ้นสื่อที่จะได้รับเชื้อบริสุทธิ์ที่ถูกระบุขึ้นอยู่กับสปอร์และสัณฐานวิทยาอาณานิคมตามที่อธิบายไว้โดยบดู (2006) และ Mordue (1971) สปอร์เดี่ยวแยกของ Colletotrichum gloeosporioides เพาะเลี้ยงในอาหารเลี้ยงเชื้อ slants เดกซ์โทรสมันฝรั่งในขวด Bijour เก็บไว้ในตู้เย็นและย่อยเพาะเลี้ยงในอาหารเลี้ยงเชื้อและบ่มที่อุณหภูมิตั้งแต่ 28-30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 7 วันต่อไปนี้ Sangeetha และราวัล (2009) วิธีการก่อนการใช้งาน. การทดสอบการเกิดโรค: หกมีสุขภาพดีสีเขียวสดเก็บเกี่ยวผลมะม่วงสุกถูกพื้นผิวที่ผ่านการฆ่าเชื้อโดย swabbing กับเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ 70% และต่อมากับสารละลาย 1% NaOCl ผลไม้ที่ถูกเชื้อกับสปอร์แขวนลอยของ Colletotrichum gloeosporioides จัดทำตามขั้นตอนของ Sivakumar et al, (1997) การแยกและการกลับมาแยกเชื้อโรคจากผลไม้ที่แสดงให้เห็นอาการของแอนแทรกโนหลังวันที่ 5 ของการบ่มได้ดำเนินการดังต่อไปนี้สมมุติของ Koch สำหรับหลักฐานการเกิดโรคตามที่อธิบายไว้โดยแมนน์และ D'Arcy (2006). ผลของสารสกัดจากพืชต่อการเจริญเติบโตของเส้นใยของแอนแทรกโน เชื้อรา: ผลของสารสกัดจากพืชในการเจริญเติบโตของเส้นใยเชิงเส้นถูกประเมินโดยใช้วิธีการแพร่กระจายหลุมจานของคณบดีและ Ritchie (1987) จานเลี้ยงเชื้อที่มี 15 มล dextrose agar มันฝรั่งแต่ละเชื้อด้วยแผ่นดิสก์ 5 มมของเชื้อโรคเชื้อราที่ศูนย์ล้อมรอบด้วย 3 หลุม 1 ซมแต่ละเส้นผ่าศูนย์กลางที่ระยะ 1 ซม. จากเชื้อโรคเชื้อรา แต่ละคนดีถูกบันทึกด้วย 100 ไมโครลิตรของน้ำหรือเครื่องดื่มแอลกอฮอล์สกัดสารสกัดจากพืช สามแผ่นถูกนำมาใช้สำหรับแต่ละสารสกัดจากพืชเป็นซ้ำและน้ำผ่านการฆ่าเชื้อที่ใช้สำหรับการควบคุม แผ่น Inoculated ถูกบ่มที่ 25-30 องศาเซลเซียสจนเจริญของเส้นใยของเชื้อโรคเชื้อราที่ครอบคลุมพื้นผิวของกลางอาหารเลี้ยงเชื้อในการรักษาควบคุม กิจกรรมต้านเชื้อราของสารสกัดจากพืชแต่ละวัดโดยการวัดการเจริญเติบโตของเส้นใยของเชื้อโรคบน PDA กับกฎการวัดและร้อยละของการลดการเจริญเติบโตเชิงเส้นของเชื้อโรคเชื้อราที่เกี่ยวข้องกับการควบคุมที่คำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้:

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การประเมินผลการควบคุมโรคแอนแทรคโนสของ botanicals เป็นวัสดุ : สามพืชพื้นเมือง ( น้อยหน่าสะเดา และ vernonia , amygdalina ) ซึ่งใช้ในการศึกษาตามประวัติ fungicidal ก่อนหน้านี้รายงานในวรรณคดี

การเตรียมสารสกัดจากพืช :สารสกัดน้ำของพืชถูกเตรียมโดยตากแดด 2 วันและบดแยกจากใบสดของพืชเฉพาะในเครื่องปั่นตาม khair haggag ปลอดภัยและ 100 กรัม ( 2007 ) วิธี ซึ่งเป็นสารละลายสกัดกรองด้วยสองชั้นของผ้าและความเข้มข้นต่าง ๆเตรียมไว้ โดยเจือจาง 1 ส่วนสารสกัดจากพืชใน 9 ส่วนของการฆ่าเชื้อน้ำ

พืชสารสกัดแอลกอฮอล์เตรียมได้จากอากาศแห้งและบด 100 กรัมของใบของพืชแต่ละชนิดผงและรัฐภายใต้การสกัดเย็นด้วยแอลกอฮอล์ 95 % 8 วันต่อไปนี้ข่าน et al . ( 2004 ) โซลูชั่นที่ถูกกรองผ่านผ้า 2 ชั้นของชีสและระดับความเข้มข้นต่าง ๆเตรียมไว้ตามที่อธิบายข้างต้น โรคแอนแทรคโนสเชื้อโรค

:การศึกษาในห้องปฏิบัติการ มีวัตถุประสงค์ในแผลที่ใบมะม่วงต้นและผลไม้ที่เก็บจากสวนในบ้านสวนและการสำรวจในแต่ละสถานที่ แผลถูกตัดอย่างระมัดระวัง และฆ่าเชื้อก่อนการบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 5 วันต่อ amusa et al . ( 2005 ) ขั้นตอนการแยก .กาเวียน ถูกย่อยที่เพาะเลี้ยงบนอาหาร potato dextrose agar สื่อสดที่จะได้รับเชื้อบริสุทธิ์ ซึ่งมีการระบุตามชนิด และลักษณะของโคโลนีตามที่อธิบายไว้โดยดูแกน ( 2006 ) และ mordue ( 1971 ) เดียวสปอร์เชื้อ Colletotrichum gloeosporioides โดยเลี้ยงบนอาหาร Potato Dextrose Agar slants bijour ในขวด ,เก็บในตู้เย็น และเพาะเลี้ยงในจานเลี้ยงเชื้อ ถูกย่อย และ บ่มที่อุณหภูมิ 28-30 องศา C ตั้งแต่ 7 วัน ตาม sangeetha ราวัล ( 2009 ) และวิธีการทดสอบก่อนใช้

: 6 สุขภาพเกี่ยวสดสีเขียวสุกมะม่วงผลไม้ฟอกฆ่าเชื้อโดยซับมือด้วยแอลกอฮอล์ 70% และต่อมากับโซลูชั่นที่ไม่ระบุ 1 %ผลไม้ที่ปลูกเชื้อด้วยสปอร์แขวนลอยของ Colletotrichum gloeosporioides เตรียมตามขั้นตอน ( มารยาทของ et al . ( 1997 ) การแยกและการแยกเชื้อโรคจากผลไม้ที่พบอาการของโรคแอนแทรคโนสหลังจาก 5 วันของการบ่มทำการตามสมมุติฐานของคอคหลักฐานการตามที่อธิบายไว้โดย Schumann และกรรมการ

( 2006 )ผลของสารสกัดในการเจริญของเส้นใยเชื้อราแอนแทรคโนส : ผลของสารสกัดพืชที่เจริญเชิงประเมินโดยใช้วิธีของหลุมจานกระจาย คณบดี ริทชี่ ( 1987 )จานเลี้ยงเชื้อที่มี 15 มิลลิลิตรของอาหาร potato dextrose agar แต่ละปลูกเชื้อด้วย 5 มม. แผ่นดิสก์ของเชื้อรา เชื้อโรคที่ศูนย์ล้อมรอบ 3 หลุมของเส้นผ่าศูนย์กลาง 1 ซม. แต่ละในที่ระยะ 1 ซม. จากเชื้อโรคเชื้อรา แต่ละคนก็เพิ่ม 100 μลิตรของน้ำหรือแอลกอฮอล์ สารสกัดจากพืชสกัด สามจานที่ใช้สำหรับแต่ละสารสกัดจากพืชที่เป็นซ้ำและน้ำหมัน ใช้สำหรับควบคุมใส่แผ่นอุณหภูมิ 25-30 องศา C จนถึงการเจริญของเส้นใยเชื้อราสาเหตุโรคที่ครอบคลุมพื้นผิวของอาหารวุ้นในการรักษาควบคุมกิจกรรมของเชื้อราสารสกัดพืชแต่ละวัดด้วย วัดเจริญของเชื้อบนอาหาร PDA กับวัดปกครอง และร้อยละของการลดการเจริญเติบโตเชิงเส้นของเชื้อราเชื้อโรคในความสัมพันธ์กับการควบคุมได้จากการคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้ :