2. Materials and methods2.1. Feed w

2. Materials and methods
2.1. Feed water
The feed water was collected from a reservoir. Samples were
stored at 4 C in the laboratory and then equilibrated to room
temperature (22 ± 2 C) prior to all experimental tests.
2.2. Treatment processes
The BAF was constructed in a PVC chamber with an internal
diameter of 8 cm and an effective media height of 60 cm. Plastic
media (Kaldness) with length, diameter, density, and an internal
surface area of 3 mm, 5 mm, 0.42e0.46 g/cm3, and 305 m2/m3,
respectively, were used for the BAF. Prior to packing the BAF reactor,
the plastic media was inoculated with 3 L activated sludge, provided
with additional nutrient sources (N, P and C) to promote the
rapid growth of biofilm on the media. It was then gently washed
with tap water to remove excess biofilm and transferred to a BAF
reactor, and feed was commenced. The DOC removal was stable
after 40 days of BAF operation, indicating that the biofilm was well
established on the surface of the media.
Glass column reactors for SF and BAC were constructed with an
internal diameter of 4.5 cm and an effective bed height of 50 cm.
The surface area, total pore volume, and micropore volume of the
activated carbon used were 800 m2/g, 0.865 cm3/g, and 0.354 cm3/
g, respectively. After seeding with activated sludge, the DOC levels
of the BAC and SF effluents became constant after 35 and 60 days of
operation, respectively.
All the filters were backwashed for 20 min every week to avoid
physical clogging. They were operated in a downflow mode with an
empty bed contact time of 30 min.
Alum (Al2 (SO4)3$18H2O) and M. oleifera seeds were used as
coagulants. The seeds of M. oleifera were extracted from the dry
pods and it was then ground into a fine powder by using a blender,
and then sieving through 0.8 mm mesh. Afterwards, Milli-Q water
was added to the fine powder to make 1% suspension. The suspension
was stirred using a magnetic stirrer for 30 min to extract
the active components of seed (coagulant proteins) in water and
this was then filtered through 125 mm filter paper. The solutions
were shaken prior to use.
Both alum and M. oleifera coagulations were performed using a
jar test apparatus (Phipps and Bird, PB-900). The samples were
mixed for 5 min at 300 rpm and then mixed for the next 20 min at
40 rpm. After 1-hour settling by gravity the supernatant was tested
for water quality. Preliminary tests with the M. oleifera seeds coagulant
(dosage range 50e100 mg/L), showed the optimum condition
for DOC removal to be 70 mg/L. The optimum dose for alum was
determined to be 7 mg/L. These experiments were conducted
without pH adjustments as the pH of the feed water was low (6.58).
2.3. Analytical methods
DOC concentrationwas determined using a total organic carbon
analyser (TOC-5000A, Shimadzu). Potassium hydrogen phthalate
(1, 5, 10 and 25 mg C L1) was used for calibration of TOC analyser.
The UV absorbance at 254 nm (UV254) was determined using a
spectrophotometer (UV-16000, Shimadzu) and Milli-Q water was
used as a reference. A Hach spectrophotometer (model DR/4000)
was used for determining the colour at 455 nm. Before these analyses,
all samples were filtered through 0.45 mm filter.
Turbidity, dissolved oxygen (DO), and pH of the water samples
were measured using a turbidity meter (Eutech, TN100IR), a DO
meter (IC-MW-600), and a pH meter (Mettler Toledo), respectively.
The pH meter was calibrated with standard solutions of pH 4, 7 and
10. Formazin standards (20, 100 and 800 NTU) were used to calibrate
the turbidimeter.
The carbohydrate and protein concentrations of the water samples
were measured using the phenol-sulfuric (DuBois et al., 1956)
and the bicinchoninic acid (BCA) method, respectively. D-glucose
was used as the standard for carbohydrate, and QPBCA QuantiPro™
BCA Assay Kit (Sigma Aldrich) and bovine serum albumin (Sigma
Aldrich)was used as the standard for protein. 1 mL samplewas used
for both protein and carbohydrate analysis. The detection range of
this method for protein content was 0.5e30 mg/L.
The apparent molecular weight distributions of the samples
were determined using ultrafiltration. A series of ultrafiltration (UF)
membranes with molecular weight cut-off (MWCO) of 1000 Da
(YM1), 3000 Da (YM3), 10,000 Da (YM10), and 30,000 Da (YM30)
were used and then the DOC level of each fraction collected was
determined. All samples (2 L) were pre-filtered (0.45 mm).
The THM and HAA formation potentials were determined using a
gas chromatograph (GC-8A, Shimadzu, Japan) (Agilent 6890N) (APHA,
1998). THMs and HAAs were quantified using a fused silica capillary
column and a DB5 capillary column, respectively. The standard deviation
of the mean concentrations of seven replicate analyses was
calculated to determine the method detection limit for each of the
THMandHAAspecies.The detailedprocedure canbe foundelsewhere
(Tubic et al., 2011). The ammonia concentration was measured using
automated phenate method 4500-NH3 (APHA, 1998). Nitrate and nitrite
were determined using an ion chromatograph (HIC-6A, Shimadzu,
Japan). Total dissolved nitrogen (TDN) was analysed by a
coupled TOC-VCSH and nitrogen analyser (TNM-1, Shimadzu). The
DON values (DON ¼ TDN nitrate nitrite ammonia) were then
determined according to themethod described by Lee andWesterhoff
(2005). The concentration of NDMA precursors inwater samples was
determined using a gas chromatograph equipped with a mass spectrometer
detector (QP5050A, Shimadzu, Japan). The detailed procedure
can be found elsewhere (Mitch et al., 2003).
3. Results and discussion
3.1. Effect of treatment processes on water quality
The characteristics of the water samples

2. Materials and methods
2.1. Feed water
The feed water was collected from a reservoir. Samples were
stored at 4 C in the laboratory and then equilibrated to room
temperature (22 ± 2 C) prior to all experimental tests.
2.2. Treatment processes
The BAF was constructed in a PVC chamber with an internal
diameter of 8 cm and an effective media height of 60 cm. Plastic
media (Kaldness) with length, diameter, density, and an internal
surface area of 3 mm, 5 mm, 0.42e0.46 g/cm3, and 305 m2/m3,
respectively, were used for the BAF. Prior to packing the BAF reactor,
the plastic media was inoculated with 3 L activated sludge, provided
with additional nutrient sources (N, P and C) to promote the
rapid growth of biofilm on the media. It was then gently washed
with tap water to remove excess biofilm and transferred to a BAF
reactor, and feed was commenced. The DOC removal was stable
after 40 days of BAF operation, indicating that the biofilm was well
established on the surface of the media.
Glass column reactors for SF and BAC were constructed with an
internal diameter of 4.5 cm and an effective bed height of 50 cm.
The surface area, total pore volume, and micropore volume of the
activated carbon used were 800 m2/g, 0.865 cm3/g, and 0.354 cm3/
g, respectively. After seeding with activated sludge, the DOC levels
of the BAC and SF effluents became constant after 35 and 60 days of
operation, respectively.
All the filters were backwashed for 20 min every week to avoid
physical clogging. They were operated in a downflow mode with an
empty bed contact time of 30 min.
Alum (Al2 (SO4)3$18H2O) and M. oleifera seeds were used as
coagulants. The seeds of M. oleifera were extracted from the dry
pods and it was then ground into a fine powder by using a blender,
and then sieving through 0.8 mm mesh. Afterwards, Milli-Q water
was added to the fine powder to make 1% suspension. The suspension
was stirred using a magnetic stirrer for 30 min to extract
the active components of seed (coagulant proteins) in water and
this was then filtered through 125 mm filter paper. The solutions
were shaken prior to use.
Both alum and M. oleifera coagulations were performed using a
jar test apparatus (Phipps and Bird, PB-900). The samples were
mixed for 5 min at 300 rpm and then mixed for the next 20 min at
40 rpm. After 1-hour settling by gravity the supernatant was tested
for water quality. Preliminary tests with the M. oleifera seeds coagulant
(dosage range 50e100 mg/L), showed the optimum condition
for DOC removal to be 70 mg/L. The optimum dose for alum was
determined to be 7 mg/L. These experiments were conducted
without pH adjustments as the pH of the feed water was low (6.58).
2.3. Analytical methods
DOC concentrationwas determined using a total organic carbon
analyser (TOC-5000A, Shimadzu). Potassium hydrogen phthalate
(1, 5, 10 and 25 mg C L1) was used for calibration of TOC analyser.
The UV absorbance at 254 nm (UV254) was determined using a
spectrophotometer (UV-16000, Shimadzu) and Milli-Q water was
used as a reference. A Hach spectrophotometer (model DR/4000)
was used for determining the colour at 455 nm. Before these analyses,
all samples were filtered through 0.45 mm filter.
Turbidity, dissolved oxygen (DO), and pH of the water samples
were measured using a turbidity meter (Eutech, TN100IR), a DO
meter (IC-MW-600), and a pH meter (Mettler Toledo), respectively.
The pH meter was calibrated with standard solutions of pH 4, 7 and
10. Formazin standards (20, 100 and 800 NTU) were used to calibrate
the turbidimeter.
The carbohydrate and protein concentrations of the water samples
were measured using the phenol-sulfuric (DuBois et al., 1956)
and the bicinchoninic acid (BCA) method, respectively. D-glucose
was used as the standard for carbohydrate, and QPBCA QuantiPro™
BCA Assay Kit (Sigma Aldrich) and bovine serum albumin (Sigma
Aldrich)was used as the standard for protein. 1 mL samplewas used
for both protein and carbohydrate analysis. The detection range of
this method for protein content was 0.5e30 mg/L.
The apparent molecular weight distributions of the samples
were determined using ultrafiltration. A series of ultrafiltration (UF)
membranes with molecular weight cut-off (MWCO) of 1000 Da
(YM1), 3000 Da (YM3), 10,000 Da (YM10), and 30,000 Da (YM30)
were used and then the DOC level of each fraction collected was
determined. All samples (2 L) were pre-filtered (0.45 mm).
The THM and HAA formation potentials were determined using a
gas chromatograph (GC-8A, Shimadzu, Japan) (Agilent 6890N) (APHA,
1998). THMs and HAAs were quantified using a fused silica capillary
column and a DB5 capillary column, respectively. The standard deviation
of the mean concentrations of seven replicate analyses was
calculated to determine the method detection limit for each of the
THMandHAAspecies.The detailedprocedure canbe foundelsewhere
(Tubic et al., 2011). The ammonia concentration was measured using
automated phenate method 4500-NH3 (APHA, 1998). Nitrate and nitrite
were determined using an ion chromatograph (HIC-6A, Shimadzu,
Japan). Total dissolved nitrogen (TDN) was analysed by a
coupled TOC-VCSH and nitrogen analyser (TNM-1, Shimadzu). The
DON values (DON ¼ TDN  nitrate  nitrite  ammonia) were then
determined according to themethod described by Lee andWesterhoff
(2005). The concentration of NDMA precursors inwater samples was
determined using a gas chromatograph equipped with a mass spectrometer
detector (QP5050A, Shimadzu, Japan). The detailed procedure
can be found elsewhere (Mitch et al., 2003).
3. Results and discussion
3.1. Effect of treatment processes on water quality
The characteristics of the water samples

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุและวิธีการ2.1. อาหารน้ำอาหารสัตว์น้ำรวบรวมจากการอ่างเก็บน้ำ ตัวอย่างดีเก็บไว้ที่ 4 C ในห้องปฏิบัติการ และ equilibrated แล้ว ไปที่ห้องอุณหภูมิ (22 ± 2 C) ก่อนทดลองทดสอบทั้งหมด2.2 การรักษากระบวนการBAF ถูกสร้างขึ้นในห้องพีวีซีกับภายในเส้นผ่าศูนย์กลาง 8 ซม.และเป็นสื่อที่มีประสิทธิภาพสูงของ 60 cm. พลาสติกสื่อ (Kaldness) กับความยาว ขนาด ความหนาแน่น ภายในพื้นที่ผิวของ 3 มิลลิเมตร 5 มิลลิเมตร 0.42e0.46 g/cm3 และ 305 m2/m3ตามลำดับ ถูกใช้สำหรับ BAF ก่อนที่จะบรรจุเครื่องปฏิกรณ์ BAFสื่อพลาสติกถูก inoculated กับ L 3 เรียกตะกอน ให้มีการเพิ่มเติมแหล่งที่ธาตุอาหาร (N, P และ C) เพื่อส่งเสริมการเจริญเติบโตอย่างรวดเร็วของ biofilm ในสื่อ มันถูกแล้วค่อย ๆ ล้างน้ำประปาการเอาส่วนเกิน biofilm และโอนย้ายไป BAFเครื่องปฏิกรณ์ และอาหารเริ่มต้น เอาเอกสารมั่นคงหลังจาก 40 วันของการดำเนินงาน BAF บ่งชี้ว่า ใน biofilm ได้ดีก่อตั้งขึ้นบนพื้นผิวของสื่อเตาปฏิกรณ์คอลัมน์แก้วสำหรับ SF และบัคถูกสร้างขึ้นด้วยการเส้นผ่าศูนย์กลางภายใน 4.5 ซมและความสูงของ 50 ซม.เบดประสิทธิภาพการพื้นที่ผิว ปริมาตรรวมรูขุมขน และปริมาตร microporeคาร์บอนใช้ คำ 800 m2/g, 0.865 cm3 g, 0.354 cm3 /g ตามลำดับ หลังจากปลูกด้วยตะกอนเปิด ระดับอกบัคและ SF effluents ก็คงหลังวัน 35 และ 60การดำเนินการ ตามลำดับตัวกรองถูก backwashed สำหรับ 20 นาทีทุกสัปดาห์เพื่อ หลีกเลี่ยงclogging ทางกายภาพ พวกเขาได้ดำเนินการในโหมด downflow ด้วยการเตียงว่างติดต่อเวลา 30 นาทีสารส้ม (Al2 (SO4) 3$ 18H2O) และเมล็ด oleifera เมตรถูกใช้เป็นcoagulants เมล็ดของ oleifera เมตรถูกสกัดจากใบแห้งฝักและถูกแล้วพื้นดินผงที่ดีโดยการเบลนเดอร์แล้ว sieving ผ่านตาข่าย 0.8 มม. ภายหลัง Q น้ำมีเพิ่มการละอองต้องระงับ 1% การระงับไม่กวนใช้ช้อนคนเหล็กใน 30 นาทีเพื่อแยกใช้งานส่วนประกอบของเมล็ด (coagulant โปรตีน) ในน้ำ และนี้แล้วถูกกรองผ่าน 125 มม.กระดาษกรอง โซลูชั่นถูกเขย่าก่อนใช้สารส้มและม. oleifera coagulations ได้ดำเนินการโดยใช้การขวดเครื่องทดสอบ (Phipps และนก PB-900) ตัวอย่างดีผสมใน 5 นาทีที่ 300 rpm และผสมสำหรับถัดไป 20 นาทีที่แล้ว40 รอบต่อนาที หลังจาก 1 ชั่วโมงตกตะกอนโดยแรงโน้มถ่วง supernatant ที่ทดสอบสำหรับคุณภาพน้ำ การทดสอบเบื้องต้นกับ coagulant เมล็ด oleifera เมตร(ขนาดช่วง 50e100 mg/L), พบเงื่อนไขเหมาะสมสำหรับเอกสารให้ 70 มิลลิกรัม/L. เป็นยาที่เหมาะสมสำหรับสารส้มกำหนด 7 มิลลิกรัม/L. ได้ดำเนินการทดลองเหล่านี้การปรับค่า pH เป็น pH น้ำอาหารต่ำ (6.58)2.3 การวิเคราะห์วิธีConcentrationwas เอกสารที่กำหนดโดยใช้คาร์บอนอินทรีย์รวมanalyser (TOC-5000A, Shimadzu) โพแทสเซียมไฮโดรเจนพทาเลท(1, 5, 10 และ 25 มก. C L 1) ใช้สำหรับปรับเทียบของ TOC analyserAbsorbance UV ที่ 254 nm (UV254) ถูกกำหนดโดยใช้การเครื่องทดสอบกรดด่าง (UV-16000, Shimadzu) และน้ำ Qใช้เป็นข้อมูลอ้างอิง การ Hach เครื่องทดสอบกรดด่าง (รุ่น DR/4000)ใช้สำหรับกำหนดสีที่ 455 nm ก่อนการวิเคราะห์เหล่านี้ตัวอย่างทั้งหมดมีกรองผ่านตัวกรอง 0.45 มม.ความขุ่นของน้ำ ปริมาณออกซิเจนละลาย (DO), และ pH ของตัวอย่างน้ำถูกวัดโดยใช้เครื่องความขุ่นวัด (Eutech, TN100IR), การทำเมตร (IC MW 600), และ pH เมตร (Mettler Toledo), ตามลำดับมีการปรับเทียบเครื่องวัดค่า pH ด้วยโซลูชั่นมาตรฐานของค่า pH 4, 7 และ10. Formazin มาตรฐาน (20, 100 และ 800 NTU) ใช้ในการปรับเทียบturbidimeterคาร์โบไฮเดรตและโปรตีนความเข้มข้นของตัวอย่างน้ำถูกวัดโดยใช้การวางกำมะถัน (DuBois et al., 1956)และ วิธีกรด (BCA) bicinchoninic ตามลำดับ D-กลูโคสใช้เป็นมาตรฐานสำหรับคาร์โบไฮเดรต และ QPBCA QuantiPro ™BCA Assay Kit (ซิก Aldrich) และวัว serum albumin (ซิกมาAldrich) ถูกใช้เป็นมาตรฐานสำหรับโปรตีน ใช้ samplewas 1 mLสำหรับการวิเคราะห์โปรตีนและคาร์โบไฮเดรต ช่วงการตรวจสอบของวิธีนี้สำหรับโปรตีน 0.5e30 มิลลิกรัม/L.การกระจายน้ำหนักโมเลกุลชัดเจนอย่างนี้ได้กำหนดใช้ ultrafiltration ชุด ultrafiltration (UF)เยื่อหุ้มกับตัดน้ำหนักโมเลกุล (MWCO) ของดา 1000(YM1), 3000 ดา (YM3), 10000 ดา (YM10), และ 30000 ดา (YM30)ใช้แล้ว ระดับอกของทุกฝ่ายที่รวบรวมได้กำหนด ตัวอย่างทั้งหมด (2 ลิตร) ได้กรองก่อน (0.45 mm)ศักยภาพผู้แต่ง THM และห้าถูกกำหนดโดยใช้การก๊าซ chromatograph (GC-8A, Shimadzu ญี่ปุ่น) (Agilent 6890N) (อาภาปี 1998) . THMs และทางถูก quantified ใช้แรง fused ซิลิก้าคอลัมน์และคอลัมน์เส้นเลือดฝอย DB5 ตามลำดับ ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานของความเข้มข้นเฉลี่ยของเจ็ด replicate วิเคราะห์ถูกคำนวณเพื่อกำหนดวิธีการตรวจสอบวงเงินสำหรับแต่ละTHMandHAAspecies.The detailedprocedure canbe foundelsewhere(Tubi c et al., 2011) ความเข้มข้นของแอมโมเนียถูกวัดโดยใช้อัตโนมัติ phenate วิธี 4500-NH3 (อาภา 1998) ไนเตรตและไนไตรต์ได้กำหนดใช้ chromatograph การไอออน (ชไอ 6A, Shimadzuญี่ปุ่น) ไนโตรเจนละลายทั้งหมด (TDN) ถูก analysed โดยการควบคู่ TOC-VCSH และไนโตรเจน analyser (TNM-1, Shimadzu) ที่ค่าดอน (DON ¼ TDN ไนเตรตไนไตรต์แอมโมเนีย) ถูกแล้วกำหนดตาม themethod โดย andWesterhoff ลี(2005) มีความเข้มข้นของตัวอย่าง inwater precursors NDMAกำหนดใช้ chromatograph ก๊าซที่มีสเปกโตรมิเตอร์โดยรวมเครื่องตรวจจับ (QP5050A, Shimadzu ญี่ปุ่น) ขั้นตอนรายละเอียดสามารถพบอื่น ๆ (Mitch และ al., 2003)3. ผลลัพธ์ และสนทนา3.1. ประมวลผลผลของการรักษาคุณภาพน้ำลักษณะของตัวอย่างน้ำ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุและวิธีการ
2.1
ฟีดน้ำน้ำป้อนที่ถูกเก็บมาจากอ่างเก็บน้ำ ตัวอย่างถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสในห้องปฏิบัติการและ equilibrated แล้วไปที่ห้องอุณหภูมิ(22 ± 2 องศาเซลเซียส) ก่อนที่จะมีการทดสอบการทดลองทั้งหมด. 2.2 กระบวนการบำบัดBAF ถูกสร้างขึ้นในห้องพีวีซีที่มีภายในเส้นผ่าศูนย์กลาง8 ซม. และความสูงของสื่อที่มีประสิทธิภาพของ 60 ซม พลาสติกสื่อ (Kaldness) ที่มีความยาวขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางความหนาแน่นและภายในพื้นที่ผิวของ3 มม 5 มม 0.42e0.46 g / cm3 และ 305 m2 / m3, ตามลำดับถูกนำมาใช้ในการพา ก่อนที่จะมีการบรรจุเครื่องปฏิกรณ์ BAF, สื่อพลาสติกได้รับเชื้อ 3 L ตะกอนให้กับแหล่งสารอาหารเพิ่มเติม(N, P และ C) เพื่อส่งเสริมการเติบโตอย่างรวดเร็วของไบโอฟิล์มในสื่อ มันถูกแล้วล้างเบา ๆด้วยน้ำประปาเพื่อลบส่วนเกินไบโอฟิล์มและโอนไปยัง BAF เครื่องปฏิกรณ์และเริ่มฟีด กำจัด DOC มีเสถียรภาพหลังจาก40 วันของการดำเนินงาน BAF แสดงให้เห็นว่าไบโอฟิล์มเป็นที่จัดตั้งขึ้นบนพื้นผิวของสื่อ. the แก้วเครื่องปฏิกรณ์คอลัมน์เอสเอฟและบัคถูกสร้างขึ้นที่มีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางภายใน 4.5 ซม. และความสูงของเตียงที่มีประสิทธิภาพของ 50 ซม . พื้นที่ผิวปริมาณรูพรุนรวมและปริมาณ micropore ของถ่านที่ใช้เป็น800 m2 / g 0.865 cm3 / g และ 0.354 cm3 / กรัมตามลำดับ หลังจากที่มีการเพาะตะกอนระดับ DOC ของบัคและเอสเอฟกลายเป็นน้ำทิ้งอย่างต่อเนื่องหลังจากที่ 35 และ 60 วันของการดำเนินการตามลำดับ. กรองทั้งหมดถูก backwashed 20 นาทีทุกสัปดาห์เพื่อหลีกเลี่ยงการอุดตันทางกายภาพ พวกเขาเข้ารับการผ่าตัดในโหมด downflow กับเวลาติดต่อเตียงว่างของ30 นาที. สารส้ม (Al2 (SO4) 3 $ 18H2O) และเอ็มเมล็ด oleifera ถูกนำมาใช้เป็นcoagulants เมล็ดของเอ็ม oleifera ถูกสกัดจากแห้งฝักและมันก็แล้วบดเป็นผงละเอียดโดยใช้เครื่องปั่นแล้วsieving ผ่าน 0.8 มมตาข่าย หลังจากนั้นน้ำ Milli-Q ถูกเพิ่มลงในผงละเอียดเพื่อให้ระงับ 1% ระงับถูกกวนกวนโดยใช้แม่เหล็กเป็นเวลา 30 นาทีเพื่อแยกชิ้นส่วนที่ใช้งานของเมล็ดพันธุ์(ตกตะกอนโปรตีน) ในน้ำและนี้ถูกกรองแล้วผ่าน125 มิลลิเมตรกระดาษกรอง โซลูชั่นถูกเขย่าก่อนที่จะใช้. ทั้งสารส้มและเอ็ม oleifera coagulations ถูกดำเนินการโดยใช้เครื่องทดสอบขวด(ฟิบส์และนก PB-900) กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการผสมเป็นเวลา 5 นาทีที่ 300 รอบต่อนาทีแล้วผสมต่อไปอีก 20 นาทีที่ 40 รอบต่อนาที หลังจาก 1 ชั่วโมงปักหลักโดยแรงโน้มถ่วงใสได้รับการทดสอบสำหรับคุณภาพน้ำ การทดสอบเบื้องต้นกับเอ็มตกตะกอน oleifera เมล็ด(ปริมาณช่วง 50e100 มิลลิกรัม / ลิตร) แสดงให้เห็นว่าสภาวะที่เหมาะสมสำหรับการกำจัดDOC จะเป็น 70 มิลลิกรัม / ลิตร ปริมาณที่เหมาะสมสำหรับการสารส้มถูกกำหนดให้มี 7 มิลลิกรัม / ลิตร การทดลองนี้ได้ดำเนินการโดยไม่ต้องปรับค่า pH ค่า pH ของน้ำป้อนที่อยู่ในระดับต่ำ (6.58). 2.3 วิธีการวิเคราะห์DOC concentrationwas กำหนดโดยใช้สารอินทรีย์คาร์บอนรวมวิเคราะห์(TOC-5000A, Shimadzu) phthalate โพแทสเซียมไฮโดรเจน(1, 5, 10 และ 25 มิลลิกรัม CL? 1) ถูกนำมาใช้สำหรับการสอบเทียบของการวิเคราะห์ TOC. การดูดกลืนรังสียูวีที่ 254 นาโนเมตร (UV254) ถูกกำหนดโดยใช้spectrophotometer (UV-16000, Shimadzu) และน้ำ Milli-Q ถูกนำมาใช้เป็นข้อมูลอ้างอิง spectrophotometer Hach (รุ่น DR / 4000) ถูกนำมาใช้ในการกำหนดสีที่ 455 นาโนเมตร ก่อนที่จะวิเคราะห์เหล่านี้ตัวอย่างทั้งหมดถูกกรองผ่าน 0.45 มมกรอง. ความขุ่น, ออกซิเจนละลายน้ำ (DO) และค่า pH ของตัวอย่างน้ำที่ถูกวัดโดยใช้เครื่องวัดความขุ่น(Eutech, TN100IR) ซึ่งเป็น DO เมตร (IC-MW-600) และเครื่องวัดค่าความเป็นกรด (Mettler Toledo) ตามลำดับ. เมตรพีเอชได้รับการสอบเทียบกับการแก้ปัญหามาตรฐานของค่า pH 4, 7 และ10 มาตรฐาน Formazin (20 100 และ 800 NTU) ถูกนำมาใช้ในการสอบเทียบเครื่องวัดความขุ่นได้. คาร์โบไฮเดรตและความเข้มข้นของโปรตีนของตัวอย่างน้ำถูกวัดโดยใช้ฟีนอลซัลฟูริก (บัว et al., 1956) และกรด bicinchoninic (BCA) วิธีการ ตามลำดับ D-กลูโคสถูกใช้เป็นมาตรฐานสำหรับการคาร์โบไฮเดรตและ QPBCA QuantiPro ™ BCA Assay Kit (ซิกม่าดิช) และซีรั่มอัลบูมิวัว (ซิกม่าดิช) ถูกนำมาใช้เป็นมาตรฐานสำหรับโปรตีน 1 มิลลิลิตร samplewas ใช้สำหรับทั้งโปรตีนคาร์โบไฮเดรตและการวิเคราะห์ ช่วงการตรวจสอบของวิธีการสำหรับปริมาณโปรตีนนี้คือ 0.5e30 มิลลิกรัม / ลิตร. การกระจายน้ำหนักโมเลกุลที่ชัดเจนของกลุ่มตัวอย่างได้รับการพิจารณาโดยใช้กรอง ชุดกรอง (UF) เยื่อมีน้ำหนักโมเลกุลตัด (MWCO) 1000 ดา(YM1) 3000 ดา (YM3) 10,000 ดา (YM10) และ 30,000 ดา (YM30) ถูกนำมาใช้แล้วระดับ DOC ของ แต่ละส่วนที่เก็บรวบรวมได้กำหนด ตัวอย่างทั้งหมด (2 ลิตร) ได้ก่อนการกรอง (0.45 มม.) THM และ HAA ก่อศักยภาพได้รับการพิจารณาโดยใช้ก๊าซChromatograph (GC-8A, Shimadzu ญี่ปุ่น) (Agilent 6890N) (APHA, 1998) THMs และฮาสได้รับการวัดโดยใช้ฝอยผสมซิลิกาคอลัมน์และคอลัมน์ของเส้นเลือดฝอยDB5 ตามลำดับ ค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานของค่าเฉลี่ยความเข้มข้นของเจ็ดซ้ำวิเคราะห์ได้รับการคำนวณในการกำหนดขีดจำกัด ของการตรวจสอบวิธีการสำหรับแต่ละdetailedprocedure THMandHAAspecies.The แบบฝึกหัด foundelsewhere (Tubi? ค et al., 2011) ความเข้มข้นของแอมโมเนียที่ได้รับการวัดโดยใช้วิธีการ phenate อัตโนมัติ 4500-NH3 (APHA, 1998) ไนเตรทและไนไตรท์ได้รับการพิจารณาโดยใช้ chromatograph ไอออน (HIC-6A, Shimadzu, ญี่ปุ่น) ไนโตรเจนที่ละลายได้ทั้งหมด (TDN) ได้รับการวิเคราะห์โดยคู่TOC-VCSH และวิเคราะห์ไนโตรเจน (TNM-1 Shimadzu) ค่า DON (DON ¼ TDN? ไนเตรทไนไตรท์? แอมโมเนีย?) จากนั้นก็กำหนดตามthemethod อธิบายโดยลี andWesterhoff (2005) ความเข้มข้นของสารตั้งต้น NDMA inwater ตัวอย่างคือการพิจารณาโดยใช้ก๊าซChromatograph พร้อมกับสเปกโตรมิเตอร์มวลตรวจจับ(QP5050A, Shimadzu, ญี่ปุ่น) ขั้นตอนรายละเอียดที่สามารถพบได้ที่อื่น ๆ (มิทช์ et al., 2003). 3 และการอภิปรายผล3.1 ผลของกระบวนการบำบัดคุณภาพน้ำลักษณะของตัวอย่างน้ำ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . ป้อนน้ำป้อนน้ำ
เก็บจากอ่างเก็บน้ำ จำนวน
เก็บไว้ที่ 4 C ในห้องปฏิบัติการแล้ว equilibrated อุณหภูมิห้อง
( 22 ± 2 C ) ก่อนการทดลองทั้งหมด .
2.2 . กระบวนการบำบัด
บัฟถูกสร้างขึ้นในห้อง พีวีซี มีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางภายใน
8 เซนติเมตร และมีสื่อที่ความสูง 60 เซนติเมตร พลาสติกมีเดีย
( kaldness ) ที่มีความยาวขนาด ความหนาแน่นและพื้นที่ผิวภายใน
3 มม. 5 มม. 0.42e0.46 กรัมต่อลิตรและ 305 m2 / m3
ตามลำดับที่ใช้สำหรับบัฟ . ก่อนที่จะบรรจุบัฟปฏิกรณ์
สื่อพลาสติกที่ใส่ 3 ชั้นสลัดจ์ เพิ่มแหล่งอาหารให้
( N , P และ C ) เพื่อส่งเสริม
การเจริญเติบโตอย่างรวดเร็วของฟิล์มบนสื่อ จากนั้นค่อยๆ ล้าง
ด้วยน้ำก๊อกเอาฟิล์มส่วนเกินและย้ายไปที่บัฟ
เครื่องปฏิกรณ์ และอาหารก็เริ่ม . หมอเอา stable
หลังจาก 40 วันของการดำเนินการบัฟ แสดงว่าฟิล์มได้ดี
ก่อตั้งขึ้นบนพื้นผิวของสื่อ
คอลัมน์แก้วและถังปฏิกรณ์ SF บั๊กถูกสร้างด้วย
เส้นผ่าศูนย์กลางภายใน 4.5 ซม. และความสูงของเตียงที่มีประสิทธิภาพ 50 ซม.
พื้นที่ผิวปริมาตรรูพรุนทั้งหมดmicropore และปริมาณของคาร์บอนที่ใช้คือ 800 m2
/ G , 0.938 cm3 / กรัม และ 0.354 cm3 /
กรัม ตามลำดับ น้ำหนักกับกากตะกอนน้ำเสีย หมอระดับ
ของบั๊กและ SF ผ่านกลายเป็นคงที่หลังอายุ 35 และ 60 วัน

งานตามลำดับตัวกรองทั้งหมดถูก backwashed 20 นาทีทุกสัปดาห์เพื่อหลีกเลี่ยงการอุดตัน
ทางกายภาพ . พวกเขาดำเนินการในโหมดไหลลงกับ
เตียงว่างติดต่อนาน 30 นาที สารส้ม ( al2 ( ปา )
3 $ 18h2o ) และ ม. ดเมล็ดใช้เป็น
ตกตะกอน เมล็ดพันธุ์แห่งม. ดถูกสกัดจากฝักแห้ง
และมันบดเป็นผงละเอียดโดยใช้เครื่องปั่น
แล้วการร่อนผ่านตะแกรง 0.8 มิลลิเมตร หลังจากนั้น milli-q น้ำ
เติมผงละเอียดให้ 1% ระงับ การระงับ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.