Explant source and preparation. The

Explant source and preparation. The experimental material was in vitro generated calluses of Musa sapientum cv. Anupam, which was induced from leaf and stem segments (0.8-1.0cm) cultured onto MS (Murashige and Skoog, 1962) medium containing 2,4-D (3.0 mg/l) and NAA (0.5 mg/l). In vitro grown microcallus were sub-cultured in Murashige-Skoog (MS) medium (Murashige, T. and F. Skoog, 1962) containing different concentrations (see detail in Results section) of organic supplements including biotin (w/v), peptone (w/v ), casein hydrolysate (w/v), yeast extract (w/v), coconut water (v/v), activated charcoal (w/v), sucrose (3%) and agar (7%). Twenty replicates were inoculated for each treatment. The pH of all media was adjusted to 5.8 before autoclaving and media was sterilized by autoclaving for 20 min at 121ºC and 1.05 kg/cm2. Culture of explants. Cultures were maintained at 26 ± 2ºC with a photoperiod of 16/8 h under an illumination of 20 ìmol m-2s-1 provided by cool white fluorescence lamps. Data recording and analysis. Weekly visual observation of culture was made and data of callus growth were recorded as callus index number (CIN); its structure, morphology, color and texture was determined for 4 weeks and tabulated for detailed study. The callus index number refers to the product value of length (cm) and width (cm) of callus which indicates the area (cm2) of the callus and is expressed as Mean ± SEM.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Explant แหล่งและการเตรียมการ วัสดุที่ใช้ทดลองมีตาปลาที่สร้างขึ้นในหลอดทดลองของ Musa sapientum พันธุ์ Anupam ซึ่งเป็นที่เกิดจากใบและลำต้นส่วน (0.8-1.0 ซม.) ล้างบน MS (Murashige และ Skoog, 1962) ขนาดกลางที่ประกอบด้วย 2, 4-D (3.0 mg/l) และราดหน้า (0.5 mg/l) Microcallus ปลูกในหลอดทดลองถูกย่อยล้างใน Murashige Skoog (MS) (Murashige, T. และ F. Skoog, 1962) ประกอบด้วยแตกต่างความเข้มข้น (ดูรายละเอียดในส่วนผลลัพธ์) อาหารเสริมอินทรีย์รวมทั้งน้ำมะพร้าว (v/v) การฉีดด้วยเคซีน (w/v) peptone (w/v) สารสกัดจากยีสต์ (w/v) ไบโอติน (w/v) เรียกใช้ถ่าน (w/v), ซูโครส (3%) และวุ้น (7%) เหมือนกับยี่สิบถูก inoculated สำหรับการรักษาแต่ละ ค่า pH ของสื่อทั้งหมดถูกปรับปรุงไป 5.8 ก่อนสปอร์ และสื่อถูกฆ่าเชื้อ ด้วยสปอร์สำหรับ 20 นาที 121ºC และ 1.05 kg/cm2 วัฒนธรรมของเฌล วัฒนธรรมที่ได้รับการดูแลที่มีช่วงแสง 16/8 ชม.ภายใต้การส่องสว่างของ 20 ìmol m-2s-1 โดยโคมไฟเรืองแสงสีขาวเย็น 26 ± 2ºC การบันทึกข้อมูลและการวิเคราะห์ ทำการสังเกตสัปดาห์ภาพวัฒนธรรม และมีบันทึกข้อมูลของแคลลัสการเจริญเติบโตเป็นแคลลัสเลขดัชนี (CIN); มีโครงสร้าง สัณฐานวิทยา สีสวย และถูกกำหนดสำหรับ 4 สัปดาห์ และสรุปการศึกษารายละเอียด หมายเลขดัชนีของแคลลัสหมายถึงมูลค่าผลิตภัณฑ์ของความยาว (เซนติเมตร) และกว้าง (ซม) ของแคลลัสซึ่งพื้นที่ (cm2) ของแคลลัสการบ่งชี้ และแสดงเป็นค่าเฉลี่ย± sem

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

แหล่งที่มาของชิ้นส่วนและการเตรียมการ วัสดุที่ใช้ทดลองในหลอดทดลองสร้างแคลลัสของ Musa sapientum CV Anupam ซึ่งถูกชักนำจากใบและลำต้นส่วน (0.8-1.0cm) เพาะเลี้ยงบน MS (Murashige และ Skoog, 1962) ขนาดกลางที่มี 2,4-D (3.0 mg / l) และ NAA (0.5 mg / l) ในหลอดทดลองไมโครเติบโตเป็นย่อยที่เลี้ยงใน Murashige-Skoog (MS) กลาง (Murashige ตันและเอฟ Skoog, 1962) ที่มีความเข้มข้นแตกต่างกัน (ดูรายละเอียดในส่วนของผลการค้นหา) ของผลิตภัณฑ์เสริมอาหารอินทรีย์รวมทั้งไบโอติน (w / v), เปปโตน (w / v) ไฮโดรไลเซเคซีน (w / v), สารสกัดจากยีสต์ (w / v), น้ำมะพร้าว (v / v), ผงถ่าน (w / v), น้ำตาลซูโครส (3%) และวุ้น (7%) ยี่สิบซ้ำถูกเชื้อสำหรับการรักษาแต่ละครั้ง ค่า pH ของสื่อทั้งหมดที่ได้รับการปรับให้ 5.8 ก่อนที่จะนึ่งฆ่าเชื้อและสื่อได้รับการฆ่าเชื้อโดยการนึ่งฆ่าเชื้อเป็นเวลา 20 นาทีที่121ºCและ 1.05 กก. / cm2 วัฒนธรรมของชิ้นส่วน วัฒนธรรมที่ถูกเก็บรักษาไว้ที่ 26 ±2ºCกับแสงของ 16/8 ชั่วโมงภายใต้การส่อง 20 ìmol M-2s-1 ที่ให้บริการโดยโคมไฟเรืองแสงสีขาวนวล การบันทึกข้อมูลและการวิเคราะห์ สังเกตภาพประจำสัปดาห์ของว​​ัฒนธรรมที่ถูกสร้างขึ้นและข้อมูลการเจริญเติบโตของแคลลัสที่ถูกบันทึกไว้เป็นหมายเลขดัชนีแคลลัส (CIN); โครงสร้างสัณฐานสีและพื้นผิวที่ถูกกำหนดเป็นเวลา 4 สัปดาห์และ tabulated สำหรับการศึกษารายละเอียด หมายเลขดัชนีแคลลัสหมายถึงมูลค่าผลิตภัณฑ์ของความยาว (ซม.) และความกว้าง (ซม.) ของแคลลัสซึ่งบ่งชี้ว่าพื้นที่ (cm2) ของแคลลัสและจะแสดงเป็นค่าเฉลี่ย± SEM

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

มาต่อและการเตรียมความพร้อม วัสดุทดลองในหลอดทดลองสร้างแคลลัสของมูซา sapientum พันธุ์ พาม ซึ่งถูกชักจูงจากส่วนใบและลำต้น ( 0.8-1.0cm ที่เพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร MS ( Murashige and Skoog , 1962 ) ที่เติม 2 , 4-D ( 3.0 มิลลิกรัมต่อลิตร ) และ NAA 0.5 mg / l ) การปลูกเลี้ยงในอาหารที่ถูกย่อย microcallus Skoog ( MS ) กลาง ( อาหาร , T . F . และ Skoog , 1962 ) ที่มีความเข้มข้นต่างกัน ( ดูรายละเอียดในส่วนผลของอาหารเสริมอินทรีย์ ได้แก่ ไบโอติน ( w / v ) เปปโตน ( w / v ) , เคซีน ไฮโดรไลเสท ( w / v ) ( w , สารสกัดจากยีสต์ / V ) , น้ํามะพร้าว ( v / v ) ถ่าน ( w / v ) ซูโครส ( 3% ) และวุ้น ( 7% ) ยี่สิบนาที เป็นหัวเชื้อสำหรับการรักษาแต่ละ pH ของสื่อทั้งหมดมีการปรับดีขึ้นก่อนอัตราส่วนโฟกัสและสื่อถูกฆ่าเชื้อโดยอัตราส่วนโฟกัสสำหรับ 20 นาทีที่อุณหภูมิ 121 องศาเซลเซียส และº 1.05 kg / cm2 วัฒนธรรมของอาหาร . วัฒนธรรมที่ถูกเก็บรักษาไว้ที่ 26 ± 2 º C ที่มีต่อ 16 / 8 ชั่วโมง ในรัศมี 20 ìโมล m-2s-1 โดยเย็นโคมไฟเรืองแสงสีขาว การบันทึกข้อมูลและการวิเคราะห์ สังเกตภาพรายสัปดาห์ของวัฒนธรรมถูกสร้างและข้อมูลการเจริญเติบโตของแคลลัสที่ถูกบันทึกไว้เป็นเลขดัชนี แคลลัส ( ? ) ; โครงสร้าง รูปร่าง , สีและพื้นผิวที่ถูกกำหนดเป็นเวลา 4 สัปดาห์ และวิจัยเพื่อศึกษารายละเอียด อาหารดัชนีอ้างอิงกับมูลค่าผลิตภัณฑ์ของความยาว ( ซม. ) ความกว้าง ( ซม. ) ของแคลลัสซึ่งบ่งชี้ว่าพื้นที่ ( cm2 ) ของแคลลัสและแสดงเป็นค่าเฉลี่ย± SEM