Resistance of Staphylococcus aureus

Resistance of Staphylococcus aureus to UV-C light and combined UV-heat treatments at mild temperatures

Biopreservative methods to control the growth of foodborne pathogens on fresh-cut lettuce

Isolation of putative antagonists

Putative antagonists were isolated from whole vegetables, fresh-cut fruit and vegetables and sprouts. For whole products, the 3–4 outer leaves were discarded and the inner portion was cut up in the laboratory.

Twenty-five grams of each sample were diluted in 225 mL of saline peptone solution (SP, 8.5 g/L NaCl and 1.0 g/L peptone) and homogenized for 2 min at normal speed in a Stomacher (Model 400 Circulator, Seward). Serial dilutions of the suspension were made in SP and plated on the following different media: de Man, Rogosa and Sharpe medium (MRS, Biokar Diagnostics, Beauvais, France) for Lactic Acid Bacteria (LAB) isolation and Nutrient Agar (NA, Biokar Diagnostics) to isolate psychrotrophic microorganisms. Plates were incubated at 30 °C for 3 days and at 7 °C for 10 days, respectively. Based on different morphologies and color, colonies were selected and further isolated. Eighteen postharvest fungal antagonists: CPA-1 (Candida sake, Viñas et al., 1998), CPA-2 (Pantoea agglomerans, Nunes et al., 2001), CPA-3 (Pantoea ananatis, Torres et al., 2005), CPA-5 (Pseudomonas syringae, Nunes et al., 2007), CPA-7 (Pseudomonas graminis, Alegre et al., 2013b) and EL 8, PN5, PN6, 128-M, C-9P-21, F-13, F-10, PO, C-9 17, P-12, C-5 10, C-10 5, and RG4 strains (unpublished results); belonging to the Pathology Laboratory collection (IRTA, Lleida), was also tested.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ความต้านทานของหมอเทศข้างลาย Staphylococcus แสง UV-C และรักษาความร้อน UV รวมที่อ่อนอุณหภูมิBiopreservative วิธีการควบคุมการเจริญเติบโตของโรค foodborne บนผักกาดหอมตัดแยกตัว putativeตัว putative แยก จากทั้งผัก ผลไม้สดตัด และผักงอกได้ สำหรับผลิตภัณฑ์ทั้งหมด 3 – 4 ใบนอกถูกละทิ้ง และส่วนภายในถูกตัดขึ้นในห้องปฏิบัติการยี่สิบห้ากรัมของแต่ละอย่างมีข้อยกเว้นใน 225 mL saline peptone โซลูชัน (SP, 8.5 g/L NaCl และ 1.0 g/L peptone) และ homogenized เป็นกลุ่มใน 2 นาทีด้วยความเร็วปกติในแผงประดับหน้าอก (รุ่น 400 หมุนเวียน เวิร์ด) Dilutions อนุกรมของการระงับใน SP และชุบในสื่อต่าง ๆ ต่อไปนี้: เดอแมน Rogosa และ Sharpe ปานกลาง (นาง การวินิจ ฉัย Biokar โบ ฝรั่งเศส) แยกแบคทีเรียกรดแลกติก (LAB) และสาร Agar (นา การวินิจฉัย Biokar) เพื่อแยก psychrotrophic จุลินทรีย์ แผ่นถูก incubated ที่ 30 ° C ใน วันที่ 3 และ ที่ 7 ° C 10 วัน ตามลำดับ ตาม morphologies ต่าง ๆ และสี อาณานิคมถูกเลือก และเพิ่มเติม แยกต่างหาก เอททีนหลังการเก็บเกี่ยวของตัวเชื้อรา: CPA-1 (Candida สาเก Viñas และ al., 1998), CPA-2 (Pantoea agglomerans, Nunes และ al., 2001), CPA-3 (Pantoea ananatis ทอร์เรส et al., 2005), CPA-5 (Pseudomonas syringae, Nunes et al., 2007), CPA-7 (Pseudomonas graminis, al. และอเลเกร 2013b) และเอ 8, PN5, PN6, 128 M, C-P 9-21, F 13, F-10, PO, 17 C-9, P-12, 10 C-5, 5 C-10 และสายพันธุ์ RG4 (ประกาศผล); ห้องปฏิบัติการพยาธิวิทยาของคอลเลกชัน (การ IRTA, Lleida), ถูกยังพิสูจน์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ความต้านทานของเชื้อ Staphylococcus aureus แสง UV-C และรวมการรักษา UV ความร้อนที่อุณหภูมิอ่อนBiopreservative วิธีการในการควบคุมการเจริญเติบโตของเชื้อโรคที่เกิดจากอาหารในผักกาดหอมสดตัดแยกคู่อริสมมุติสมมุติคู่อริที่แยกได้จากพืชผักผลไม้ทั้งผลไม้สดตัดและผัก และกะหล่ำ สำหรับผลิตภัณฑ์ทั้ง 3-4 ใบถูกโยนทิ้งด้านนอกและด้านในส่วนที่ถูกตัดขึ้นในห้องปฏิบัติการ. ยี่สิบห้ากรัมของแต่ละตัวอย่างถูกเจือจางใน 225 มิลลิลิตรวิธีการแก้ปัญหาดินเค็มเปปโตน (SP 8.5 กรัม / ลิตรและโซเดียมคลอไรด์ 1.0 กรัม / L เปปโตน) และปั่นเป็นเวลา 2 นาทีที่ความเร็วปกติใน Stomacher (รุ่น 400 ปั่น, เอิร์ด) เจือจางอนุกรมของการระงับได้ทำใน SP และชุบบนสื่อที่แตกต่างกันดังต่อไปนี้: เดผู้ชาย, Rogosa กลางและชาร์ป (MRS, Biokar วินิจฉัย Beauvais, ฝรั่งเศส) สำหรับแบคทีเรียกรดแลกติก (LAB) แยกและสารอาหารวุ้น (NA, Biokar วินิจฉัย ) เพื่อแยกเชื้อจุลินทรีย์ psychrotrophic แผ่นถูกบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3 วันและ 7 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 วันตามลำดับ ขึ้นอยู่กับรูปร่างลักษณะที่แตกต่างกันและสีอาณานิคมได้รับการคัดเลือกและต่อไปที่แยก สิบแปดคู่อริเชื้อราหลังการเก็บเกี่ยว: CPA-1 (Candida ประโยชน์, Viñas et al, 1998.) CPA-2, CPA-3 (Pantoea agglomerans, นูเน et al, 2001.) (Pantoea ananatis, ตอร์เร et al, 2005). CPA-5 (Pseudomonas syringae, นูเน et al., 2007), CPA-7 (Pseudomonas graminis, อาเลเกร et al., 2013b) และ EL 8 PN5, PN6 128-M, C-9P-21, F-13 F-10, PO, C-9 17 P-12 C-5 10, C-10 ที่ 5 และสายพันธุ์ RG4 (ผลที่ไม่ถูกเผยแพร่); ที่อยู่ในคอลเลกชันห้องปฏิบัติการพยาธิวิทยา (IRTA, Lleida) นอกจากนี้ยังได้รับการทดสอบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ต้านทานของเชื้อ Staphylococcus aureus ในแสง UV และความร้อน รังสียูวี ซีร่วมกับการรักษาที่อุณหภูมิอ่อน

biopreservative วิธีการควบคุมการเจริญเติบโตของเชื้อโรคอาหารเป็นพิษในตัดสด ผักกาด

แยกซึ่งทำให้

ซึ่งปฏิปักษ์ที่แยกได้จาก ทั้ง ผัก ผลไม้สด และผัก ตัด และถั่วงอก สำหรับผลิตภัณฑ์ทั้งหมด3 – 4 ใบด้านนอกถูกโยนทิ้งและส่วนภายในถูกตัดขึ้นในห้องปฏิบัติการ

25 กรัมของแต่ละตัวอย่างถูกเจือจางใน 225 มิลลิลิตร สารละลายเกลือ extract ( SP , 8.5 กรัม / ลิตรโซเดียมคลอไรด์และ 1.0 กรัมต่อลิตร ตามลำดับ ) และบดสำหรับ 2 นาทีที่ความเร็วปกติในแผงประดับหน้าอก ( รุ่น 400 ปั่นซีเวิร์ด , ) อนุกรมวิธีการระงับได้ SP และชุบบนสื่อต่าง ๆดังต่อไปนี้เดอ ชาย rogosa ชาร์ป ( นาง biokar และขนาดกลาง , การวินิจฉัย , Beauvais , ฝรั่งเศส ) สำหรับแบคทีเรียกรดแล็กติก ( Lab ) การแยกและอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหาร ( นา biokar Diagnostics ) เพื่อแยกไซโครโทรปจุลินทรีย์ แผ่นอุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 3 วัน และ 7 ° C เป็นเวลา 10 วัน ตามลำดับ บนพื้นฐานของลักษณะที่แตกต่างกันและสี อาณานิคมในการคัดเลือกและแยกเพิ่มเติม18 หลังการเก็บเกี่ยว ( candida เชื้อราปฏิปักษ์ : cpa-1 ประโยชน์ 6 15 เป็น et al . , 1998 ) , cpa-2 ( pantoea agglomerans นูนส์ , et al . , 2001 ) , cpa-3 ( pantoea ananatis ทอร์เรส et al . , 2005 ) , cpa-5 ( Pseudomonas syringae นูนส์ , et al . , 2007 ) , cpa-7 graminis ( Pseudomonas , Alegre et al . , 2013b ) และ เอล pn5 pn6 8 , 128-m c-9p-21 f-13 , , , , f-10 โป c-9 รุ่น C - 17 , 10 , c-10 5และ rg4 สายพันธุ์ ( ประกาศผล ) ; เป็นของห้องปฏิบัติการพยาธิวิทยาคอลเลกชัน ( IRTA , เลย์ ) , ยังทดสอบ