2.6 Antagonistic efficacy of the se

2.6 Antagonistic efficacy of the selected strain of
R. mucilaginosa
The antagonistic efficacy of the selected strain of R. mucilaginosa (RKZ1-5) to P. expansum was evaluated on pears. The procedure was similar to that described in Section 2.4. Six wounds were made on each pear with a sterile cork-borer. R. mucilaginosa suspension (50 μl) in sterile distilled water at 1×105, 1×106, 1×107, 1×108, or 1×109 cells/ml were pipetted into each wound, respectively. The same volume of sterile distilled water was pipetted into wounds to be used as controls. After 3 h, 30 μl of pathogen spores at 1×104 cells/ml were inoculated into the wounds.
The pear samples were incubated as described in Section 2.4. The biocontrol activity was assessed 6 d after treatment. Each yeast treatment consisted of three replicates, each consisting of 12 fruits. The experiment was conducted twice.
2.7 Antagonistic action of different preparations of R. mucilaginosa to P. expansum on pears
The pear fruits were wounded using the proce- dure described in Section 2.4. Based on the results of the experiments (Section 2.6), the most effective cell concentration of R. mucilaginosa antagonistic to P. expansum was 1×108 cells/ml and this was used in further tests based on the following preparations: (1) 1×108 cells/ml unwashed cell culture mixture (i.e. the yeast cells in the nutrient yeast broth medium); (2) 1×108 cells/ml washed cell suspension (prepared as described in Section 2.4); (3) cell-free culture fil- trate (made by filtering the supernatant of the centri- fuged yeast culture medium through 0.22 μm sterile Millipore filtration); (4) autoclaved cell culture (the R. mucilaginosa culture was sterilized by moist heat sterilization at 121 °C for 20 min); (5) Sterile distilled water was used as a control. After air-drying, the treated pear samples were stored as described in Section 2.4. Decay incidence and lesion diameter were recorded after 6 d. Each yeast treatment con- sisted of three replicates, each consisting of 12 fruits. The whole experiment was conducted twice.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.6 เป็นปรปักษ์ประสิทธิภาพของสายพันธุ์ที่เลือกของR. mucilaginosaประสิทธิภาพของสายพันธุ์ที่เลือกของ R. mucilaginosa (RKZ1-5) กับ P. expansum ปรปักษ์ถูกประเมินบนลูกแพร์ ขั้นตอนก็คล้ายกับที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4 แผลหกขึ้นในแต่ละลูกแพร์กับมอดไม้ก๊อกที่เป็นหมัน ได้ระงับ R. mucilaginosa (50 μl) ในน้ำกลั่นปลอดเชื้อที่ 1 × 105, 1 × 106, 1 × 107, 1 × 108 หรือ 1 × 109 เซลล์/มล. pipetted ในแต่ละแผล ตามลำดับ น้ำกลั่นปลอดเชื้อระดับเดียวกันคือ pipetted เข้าไปในบาดแผลเพื่อใช้เป็นตัวควบคุม หลังจาก 3 ชม. μl 30 ของเชื้อราที่ 1 × 104 เซลล์/มล.ที่ inoculated เข้าไปในบาดแผลตัวอย่างลูกแพร์ได้รับการกกตามที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4 กิจกรรม biocontrol ถูก d 6 ราคาประเมินหลังการรักษา รักษายีสต์แต่ละประกอบ ด้วยสามเหมือนกับ ซึ่งผลไม้ 12 มีดำเนินการทดสอบสองครั้ง2.7 การดำเนินการเตรียมการต่าง ๆ ของ R. mucilaginosa การ P. expansum บนลูกแพร์ปรปักษ์ผลไม้ลูกแพร์บาดใช้ dure ขั้นตอนที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4 จากผลการทดลอง (ส่วน 2.6), ความเข้มข้นเซลล์มีประสิทธิภาพสูงสุดของปรปักษ์กับ P. expansum R. mucilaginosa เป็น 1 × 108 เซลล์/มล. และนี้ถูกใช้ในการทดสอบเพิ่มเติมตามการเตรียมการต่อไปนี้: (1) 1 × 108 เซลล์/มล.ผดเซลล์ผสมวัฒนธรรม (เช่นยีสต์เซลล์ในอาหารยีสต์ซุปกลาง); (2) 1 × 108 เซลล์/มล.ล้างระงับเซลล์ (เตรียมตามที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4); (3) เซลล์ไร้วัฒนธรรม (ทำ โดยการกรอง supernatant ของ centri - fuged ยีสต์วัฒนธรรมสื่อผ่าน 0.22 ไมครอนกรองมิลลิพอร์หมัน); trate แฟ้ (4) ผลิตเซลล์วัฒนธรรม (วัฒนธรรม R. mucilaginosa ถูกฆ่าเชื้อ ด้วยความร้อนชื้นฆ่าเชื้อที่ 121 ° C เป็นเวลา 20 นาที); (5) น้ำกลั่นปลอดเชื้อถูกใช้เป็นตัวควบคุม หลัง air-drying ตัวอย่างลูกแพร์บำบัดถูกเก็บไว้ตามที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4 เกิดผุและเส้นผ่านศูนย์กลางรอยโรคที่มีบันทึกหลังจาก 6 d แต่ละยีสต์รักษาคอน-sisted ของเหมือนกับสาม ซึ่งผลไม้ 12 มีดำเนินการทดลองทั้งสอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.6 การรับรู้ความสามารถปฏิปักษ์ของสายพันธุ์ที่เลือกของ
อาร์ mucilaginosa
ประสิทธิภาพปฏิปักษ์ของสายพันธุ์ที่เลือกของอาร์ mucilaginosa (RKZ1-5) พี expansum ได้รับการประเมินในลูกแพร์ ขั้นตอนที่มีความคล้ายคลึงกับที่อธิบายไว้ในมาตรา 2.4 หกบาดแผลถูกสร้างขึ้นมาในแต่ละลูกแพร์กับหมันก๊อกหนอนเจาะ อาร์ mucilaginosa ระงับ (50 ไมโครลิตร) ในน้ำกลั่นที่ผ่านการฆ่าเชื้อ 1 × 105, 1 × 106, 1 × 107 × 108 1 หรือ 1 × 109 เซลล์ / มิลลิลิตรปิเปตในแต่ละแผลตามลำดับ ปริมาณเดียวกันของน้ำกลั่นปลอดเชื้อได้รับการปิเปตเข้าไปในแผลที่จะใช้เป็นตัวควบคุม หลังจาก 3 ชั่วโมง 30 ไมโครลิตรสปอร์ของเชื้อที่ 1 × 104 เซลล์ / มล. ถูกเชื้อเข้าสู่บาดแผล.
ตัวอย่างลูกแพร์ถูกบ่มที่อธิบายไว้ในมาตรา 2.4 กิจกรรมการควบคุมทางชีวภาพได้รับการประเมิน 6 D หลังการรักษา การรักษายีสต์แต่ละประกอบด้วยสามซ้ำแต่ละประกอบด้วย 12 ผลไม้ ทำการทดลองครั้งที่สอง.
2.7 การดำเนินการปฏิปักษ์ของการเตรียมการที่แตกต่างกันของอาร์พี mucilaginosa expansum ในลูกแพร์
ผลไม้ลูกแพร์คนได้รับบาดเจ็บโดยใช้ dure ขั้นตอนต่างๆที่อธิบายไว้ในมาตรา 2.4 ขึ้นอยู่กับผลของการทดลอง (ส่วนที่ 2.6) ความเข้มข้นของเซลล์ที่มีประสิทธิภาพสูงสุดของอาร์ mucilaginosa ปฏิปักษ์พี expansum เป็น 1 × 108 เซลล์ / มล. และนี่คือที่ที่ใช้ในการทดสอบต่อไปขึ้นอยู่กับการเตรียมการดังต่อไปนี้ (1) 1 × 108 เซลล์ / มิลลิลิตรผสมเพาะเลี้ยงเซลล์ไม่เคยอาบน้ำ (เช่นเซลล์ยีสต์ในอาหารน้ำซุปสารอาหารยีสต์); (2) 1 × 108 เซลล์ / มล. ล้างเซลล์แขวนลอย (จัดทำขึ้นตามที่อธิบายไว้ในมาตรา 2.4); (3) การเพาะเลี้ยงเซลล์ฟรี fil- trate (ทำโดยการกรองสารละลายของอาหารเลี้ยงเชื้อยีสต์ centri- fuged ผ่าน 0.22 ไมครอนกรองร์คหมัน); (4) การเพาะเลี้ยงเซลล์มวล (วัฒนธรรม mucilaginosa อาร์ได้รับการฆ่าเชื้อด้วยความร้อนชื้นฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 121 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 20 นาที); (5) น้ำกลั่นปราศจากเชื้อถูกนำมาใช้เป็นตัวควบคุม หลังจากที่อากาศแห้ง, ลูกแพร์ตัวอย่างได้รับการรักษาที่ถูกเก็บไว้ที่อธิบายไว้ในมาตรา 2.4 การสลายตัวของอัตราการเกิดแผลและมีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางที่ถูกบันทึกไว้หลัง 6 D การรักษาแต่ละยีสต์ง sisted สามซ้ำแต่ละประกอบด้วย 12 ผลไม้ การทดลองทั้งได้ดำเนินการเป็นครั้งที่สอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.6 ความสามารถปฏิปักษ์ของสายพันธุ์ของmucilaginosa Rประสิทธิภาพ ปฏิปักษ์ของสายพันธุ์ของ mucilaginosa ( rkz1-5 ) หน้า expansum ถูกประเมินในลูกแพร์ ขั้นตอนที่คล้ายกับที่อธิบายไว้ในมาตราที่ 2.4 . 6 แผล ทำให้ในแต่ละลูกแพร์กับหนอนจุกปลอดเชื้อ อาร์ mucilaginosa ระงับ ( 50 μ L ) ในการฆ่าเชื้อน้ำที่ 1 × 105 1 × 1 × 106 , 107 , 1 × 108 , หรือ 1 × 109 เซลล์ / มิลลิลิตร ) pipetted ในแต่ละแผล ตามลำดับ ปริมาณเดียวกันของการฆ่าเชื้อน้ำกลั่น pipetted ใส่บาดแผลเพื่อใช้เป็นตัวควบคุม หลังจาก 3 ชั่วโมง , 30 μลิตรเชื้อสปอร์ 1 × 104 เซลล์ / มล. ปลูกเชื้อเข้าสู่แผลลูกแพร์จำนวนเชื้อตามที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4 . โดยไบโอคอนโทรลกิจกรรมประเมิน 6 D หลังจากการรักษา แต่ละการรักษายีสต์จำนวน 3 ซ้ำละ 12 ผลไม้ โดยทำการทดลอง 2 ครั้ง2.7 การกระทำปฏิปักษ์ของต่าง ๆการเตรียมของ mucilaginosa P . expansum ในลูกแพร์ลูกแพร์ผลไม้ได้รับบาดเจ็บการ proce - ระหว่างที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4 . จากผลการทดลอง ( มาตรา 6 ) ที่มีปริมาณเซลล์ R . mucilaginosa ปฏิปักษ์หน้า expansum 1 × 108 เซลล์ / มิลลิลิตร และใช้ต่อการทดสอบขึ้นอยู่กับการเตรียมดังต่อไปนี้ : ( 1 ) 1 × 108 เซลล์ / มิลลิลิตรผสม ( เช่น เซลล์ที่ผ่านการเพาะเซลล์ยีสต์ใน ยีสต์น้ำสารอาหารปานกลาง ) ; ( 2 ) 1 × 108 เซลล์ / มล. ล้างเซลล์แขวนลอย ( เตรียมที่อธิบายไว้ในมาตรา 5 ) ; ( 3 ) การสังเคราะห์วัฒนธรรมใน - trate ( ทำโดยการกรองสูงของ centri - fuged ยีสต์กลางวัฒนธรรมผ่านการกรอง 0.22 มิลลิเมตรμเป็นหมัน ) ; ( 4 ) สังเคราะห์เซลล์วัฒนธรรม ( วัฒนธรรม อาร์ mucilaginosa ถูกฆ่าเชื้อโดยความร้อนฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 121 องศาชุ่มชื้น C เป็นเวลา 20 นาที ) ; ( 5 ) การฆ่าเชื้อน้ำที่ใช้เป็นซี ontrol . หลังจากอากาศแห้งการรักษาลูกแพร์จำนวนเก็บไว้ตามที่อธิบายไว้ในส่วน 2.4 . การเกิดแผลผุและเส้นผ่าศูนย์กลางที่ถูกบันทึกไว้หลังจาก 6 D . แต่ละยีสต์รักษาคอน - sisted สามนาทีละ 12 ผลไม้ การทดลองทั้งหมดมีวัตถุประสงค์สอง