2.3. Plant sampling and analysisPla

2.3. Plant sampling and analysis
Plant biomass assessments were performed 8 times, on the morning following the dry weather water sampling missions. Concurrently, root and shoot tissue samples were collected in 11 locations over the FTW, except during the nine first months of growth when plants were still establishing. Six plants from the same batch as those originally planted in December 2010 on the FTW were analysed as a baseline. Biomass measurement and pollutant accumulation estimate are described elsewhere (Borne et al., 2013a and Borne et al., 2013b). Iron or manganese plaques can form on the surface of the root of wetland plants due to the action of bacteria and oxygen released through the roots (Emerson et al., 1999 and Liu and Zhu, 2005). These plaques are known to bind metals, like Cu or Zn, which are in their surrounding (Ye et al., 1998 and Ye et al., 2001). This pathway was investigated by extracting root plaques using a DCB (dithionite–citrate–bicarbonate) solution according to Lei et al. (2010). Cu, Zn, Fe and Mn in root extract were subsequently analysed as per method 200.8 (USEPA, 1994a) by an International Accreditation New Zealand (IANZ) certified laboratory. Blank and field sample duplicates were analysed and the relative percent difference (RPD) ranged from −18 to 11% with a median of −10% which is within ±20% recommended by USEPA (1994b). After DCB extraction, the roots and shoots were oven-dried at 60 °C overnight, weighed and sent to Landcare Research (IANZ accredited laboratory, Palmerston North, NZ) for Cu and Zn analysis (by nitric acid and hydrogen peroxide digestion (Kovács et al., 1996) and subsequent Atomic Absorption Spectrometry (AAS) analysis according to 3111 B (APHA, 2005)).

Scanning electron microscopy (SEM) with electron dispersive spectrometry (EDS) was performed 3 times (beginning, middle and end of the monitoring period) on 6 subsamples of roots which were cut in 1 mm sections with a stainless steel razor blade, freeze-dried and coated with carbon (Batty et al., 2002). The term “root” used in this paper refers to the plant tissues growing below the FTW mat. Roots growing within the mat matrix were not analysed or measured.

2.4. Sediment sampling and analysis
Sediments samples were collected in the Control and FTW ponds 6 times over a 2-year period. Prior to sediment collection a combined Platinum-Ag/AgCl ring electrode linked to a laboratory redox meter (826, Metrohm) (Hinchey and Schaffner, 2005 and Rodríguez et al., 2010) was inserted into the sediment to a depth of ∼2 cm (detailed methodology is provided in supplementary data). 208 mV were added to the reading to calculate the redox potential relative to hydrogen electrode (Eh). Subsequently, grab sediment samples (2–3 cm of the top layer) were collected in polypropylene (PP) containers and kept in a cooler on ice until arrival at the environmental laboratory of the University of Auckland where samples were stored at 4 °C. Limited access from the side banks into each pond meant that only two and four samples were collected during the first and second missions, respectively, for the Control pond, and six samples were collected during the first mission in the FTW pond. Access was subsequently resolved, so eight or nine samples were collected in each pond during the remaining missions. Zn and Cu concentrations were determined as per Jumbe and Nandini (2009) which provides a total digestion of the samples including the residual form generally associated with silicate lattices. Weight lost on ignition (LOI) which corresponds to the content of organic matter of the sample was determined by ashing 2–4 g of sample at 500 °C for 12 h (Chagué-Goff, 2005 and Wang et al., 2010). A three step extraction which enables quantification of Cu and Zn as 1) exchangeable/carbonate form, 2) fraction bound to hydroxides, and 3) bound to organic compounds and sulphides, was performed based on “procedure A” of Ianni et al. (2001). The residual (detrital) fraction was calculated as the difference between the total metal content and the sum of the metals released by the sequential extraction. In contrast to Ianni et al. (2001), the sediments used were not dried before the extraction to avoid changes in chemical speciation which might occur during the drying process (Chagué-Goff, 2005). The equivalent of about 1 g of dried sediment was used for the initial extraction. The extracts from the sequential extraction and the total digestion procedures were analysed for Cu and Zn by flame or graphite (depending on concentration range) AAS (Varian SpectrAA-50/55). One method blank and one field sample duplicate were analysed for Cu and Zn for each total digestion and sequential extraction step (RPD ranged from −19.8 to 19.4% with a median of 1.4%). Detailed methodology is provided in supplementary data.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3 การประเมินผลการเก็บตัวอย่างพืชชีวมวลและการวิเคราะห์
พืชได้ดำเนินการ 8 ครั้งในเช้าวันต่อไปนี้ภารกิจการเก็บตัวอย่างน้ำสภาพอากาศที่แห้ง พร้อมรากและยิงตัวอย่างเนื้อเยื่อถูกเก็บไว้ในสถานที่กว่า 11 FTW ยกเว้นในช่วงเก้าเดือนแรกของการเจริญเติบโตเมื่อพืชก็ยังคงสร้างหกพืชจากชุดเดียวกันกับที่นำมาปลูกครั้งแรกในธันวาคม 2010 ใน FTW วิเคราะห์เป็นพื้นฐาน การวัดมวลชีวภาพและสารมลพิษประมาณการการสะสมจะมีคำอธิบายอื่น ๆ (ระเหยไดเอตอัล. 2013a และระเหยไดเอตอัล. 2013b)โล่เหล็กหรือแมงกานีสสามารถสร้างบนพื้นผิวของรากของพืชในพื้นที่ชุ่มน้ำอันเนื่องมาจากการกระทำของแบคทีเรียและออกซิเจนปล่อยผ่านราก (เมอร์สันและอัล. ปี 1999 และ liu และ zhu, 2005) โล่เหล่านี้เป็นที่รู้จักกันที่จะผูกโลหะเช่นลูกบาศ์กหรือสังกะสีซึ่งอยู่ในพวกเขาโดยรอบ (เจ้าและคณะ. 1998 และท่านและคณะ. 2001)เส้นทางนี้ได้รับการตรวจสอบโดยการสกัดรากใช้โล่ dcb (dithionite-ซิเตรทไบคาร์บอเนต) การแก้ปัญหาตามที่พวงมาลัยและอัล (2010) ลูกบาศ์ก, สังกะสี, fe ลและสารสกัดจากรากวิเคราะห์ต่อมาตามวิธี 200.8 (USEPA, 1994a) โดยการรับรอง zealand (ianz) ได้รับการรับรองห้องปฏิบัติการระหว่างประเทศใหม่ที่ว่างเปล่าและสนามที่ซ้ำกันตัวอย่างการวิเคราะห์ความแตกต่างและร้อยละญาติ (rpd) ตั้งแต่ -18 ถึง 11% โดยมีค่าเฉลี่ยของ -10% ซึ่งอยู่ภายใน± 20% ที่แนะนำโดย USEPA (1994b) หลังจากการสกัด dcb, รากและยอดอ่อนพบว่าเตาอบแห้งที่ 60 ° c ค้างคืนชั่งน้ำหนักและส่งไปยังการวิจัย landcare (ianz ห้องปฏิบัติการได้รับการรับรองเหนือปาล์มเมอร์nz) สําหรับลูกบาศ์กและการวิเคราะห์ธาตุสังกะสี (โดยกรดไนตริกและไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์การย่อยอาหาร (Kovács et al,., 1996) และต่อมา spectrometry การดูดซึมอะตอม (AAS) การวิเคราะห์ตาม 3111 b (APHA, 2005)).

สแกนกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน (SEM ) ที่มีอิเล็กตรอนกระจาย spectrometry (สหพันธ์) ได้ดำเนินการครั้งที่ 3 (จุดเริ่มต้นกลางและจุดสิ้นสุดของระยะเวลาการตรวจสอบ) ในวันที่ 6 subsamples ของรากที่ถูกตัดใน 1 มม. ส่วนที่มีใบมีดโกนสแตนเลส, แช่แข็งแห้งและเคลือบด้วยคาร์บอน (เอตอัลบ้า., 2002) คำว่า "ราก" ที่ใช้ในบทความนี้หมายถึงเนื้อเยื่อพืชที่กำลังเติบโตด้านล่างเสื่อ FTW รากเจริญเติบโตภายในเมทริกซ์เสื่อไม่ได้ถูกนำมาวิเคราะห์หรือวัด.

2.4 การเก็บตัวอย่างตะกอนดินและการวิเคราะห์
ตัวอย่างตะกอนที่ถูกเก็บไว้ในการควบคุมและ FTW บ่อ 6 ครั้งในช่วงระยะเวลา 2 ปี ก่อนที่จะมีการเก็บรวบรวมตะกอนขั้วแหวนรวม platinum-ag/agcl เชื่อมโยงไปยังห้องปฏิบัติการเมตรรีดอกซ์ (826, metrohm) (Hinchey และ Schaffner 2005 และRodríguezและคณะ. 2010) ได้รับการแทรกลงในดินตะกอนที่ระดับความลึกของ ~ 2 ซม. (วิธีการรายละเอียดที่ระบุไว้ในข้อมูลเสริม)208 ฟังเพลงถูกเพิ่มเข้าไปในการอ่านในการคำนวณญาติที่มีศักยภาพรีดอกซ์ไฮโดรเจนอิเล็กโทรด (เอ๊ะ) ต่อมาคว้าตัวอย่างตะกอน (2-3 ซม. ของชั้นบน) ถูกเก็บไว้ในโพรพิลีน (PP) ภาชนะบรรจุและเก็บไว้ในที่เย็นบนน้ำแข็งจนมาถึงที่ห้องปฏิบัติการสิ่งแวดล้อมของมหาวิทยาลัยโอ๊คแลนด์ที่กลุ่มตัวอย่างถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสการ จำกัด การเข้าถึงจากธนาคารด้านในแต่ละบ่อมีความหมายที่ถูกเก็บรวบรวมเพียงสองและสี่ตัวอย่างในระหว่างการปฏิบัติภารกิจครั้งแรกและครั้งที่สองตามลำดับสำหรับบ่อควบคุมและถูกเก็บหกตัวอย่างในระหว่างการปฏิบัติภารกิจครั้งแรกในบ่อ FTW การเข้าถึงได้รับการแก้ไขในภายหลังจึงแปดหรือเก้าตัวอย่างถูกเก็บไว้ในแต่ละบ่อในระหว่างการปฏิบัติภารกิจที่เหลือสังกะสีและลูกบาศ์กความเข้มข้นได้รับการพิจารณาตาม Jumbe และ Nandini (2009) ซึ่งมีการย่อยอาหารกลุ่มตัวอย่างทั้งหมดรวมทั้งรูปแบบที่เหลือเกี่ยวข้องกับการโปรยซิลิเกต น้ำหนักหายไปในการเผาไหม้ (ลอย) ซึ่งสอดคล้องกับเนื้อหาของสารอินทรีย์ของกลุ่มตัวอย่างที่ถูกกำหนดโดย ashing 2-4 กรัมของตัวอย่างที่ 500 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 12 ชั่วโมง (Chague-goff 2005 และวังและคณะ. 2010)สามขั้นตอนการสกัดที่ช่วยให้ปริมาณของลูกบาศ์กและสังกะสีเป็น 1) รูปแบบการแลกเปลี่ยน / คาร์บอเนต 2) ส่วนผูกพันกับไฮดรอกไซและ 3) ผูกพันกับสารประกอบอินทรีย์และ sulphides ถูกดำเนินการบนพื้นฐานของ "ขั้นตอน" ของ Ianni ตอัล (2001)ที่เหลือ (ซากของพืชเล็ก) ส่วนที่คำนวณได้เป็นความแตกต่างระหว่างปริมาณโลหะรวมและผลรวมของโลหะที่ออกโดยการสกัดลำดับ ในทางตรงกันข้ามกับ Ianni ตอัล (2001), ตะกอนใช้ไม่แห้งก่อนที่จะสกัดเพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลงใน speciation สารเคมีที่อาจเกิดขึ้นในระหว่างขั้นตอนการอบแห้ง (Chague-goff, 2005)เทียบเท่าประมาณ 1 กรัมของตะกอนแห้งที่ใช้สำหรับการสกัดเริ่มต้น สารสกัดที่ได้จากการสกัดลำดับและขั้นตอนการย่อยอาหารทั้งหมดที่ได้รับการวิเคราะห์หาลูกบาศ์กและสังกะสีด้วยเปลวไฟหรือกราไฟท์ (ขึ้นอยู่กับช่วงความเข้มข้น) AAS (varian spectraa-50/55)วิธีการหนึ่งที่ว่างเปล่าและตัวอย่างหนึ่งเขตข้อมูลที่ซ้ำกันถูกนำมาวิเคราะห์เพื่อลูกบาศ์กและสังกะสีสำหรับแต่ละการย่อยอาหารรวมและขั้นตอนการสกัดลำดับ (rpd ตั้งแต่ -19.8 ถึง 19.4% โดยมีค่าเฉลี่ย 1.4%) วิธีการรายละเอียดที่ระบุไว้ในข้อมูลเสริม

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 การสุ่มตัวอย่างและการวิเคราะห์พืช
พืชชีวมวลประเมินดำเนินครั้งที่ 8 ในตอนเช้าต่อภารกิจการสุ่มตัวอย่างน้ำอากาศแห้ง พร้อม ตัวอย่างเนื้อเยื่อของรากและยิงถูกเก็บรวบรวมในตำแหน่ง 11 ผ่าน FTW ยกเว้นในช่วง 9 เดือนแรกของการเจริญเติบโตเมื่อพืชถูกยังสร้าง พืช 6 จากชุดเดียวกันที่ปลูกครั้งแรก ในเดือน 2553 ธันวาคมใน FTW ถูก analysed เป็นพื้นฐานการ วัดชีวมวลและการประเมินมลพิษสะสมไว้อื่น (Borne et al., 2013a และ Borne et al., 2013b) Plaques เหล็กหรือแมงกานีสสามารถสร้างบนพื้นผิวของรากของพืชในพื้นที่ชุ่มน้ำเนื่องจากการกระทำของแบคทีเรียและออกซิเจนปล่อยผ่านราก (อีเมอร์สันและ al., 1999 และหลิว และ ซู 2005) Plaques เหล่านี้ทราบว่าผูกโลหะ เช่น Cu หรือ Zn ซึ่งมีในตน (Ye et al., 1998 และ Ye et al., 2001) ทางเดินนี้ถูกสอบสวน โดยแยก plaques รากใช้โซลูชัน DCB (dithionite–citrate–bicarbonate) ตาม Lei et al. (2010) Cu, Zn, Fe และ Mn ในสารสกัดรากได้มา analysed ตามวิธี 200.8 (USEPA, 1994a) โดยนิวซีแลนด์นานาชาติรับรอง (IANZ) ได้รับการรับรองห้องปฏิบัติการ ฟิลด์ และว่างเปล่าตัวอย่างซ้ำถูก analysed และอยู่ในความแตกต่างร้อยละญาติ (RPD) ช่วงจาก −18% 11 กับมัธยฐาน% −10 ซึ่งอยู่ภายใน ±20% แนะนำ USEPA (1994b) หลังจากที่สกัด DCB รากและยอดมีเตาอบแห้งที่ 60 ° C ค้างคืน น้ำหนัก และส่งไปที่ Landcare วิจัย (IANZ ได้รับการรับรองห้องปฏิบัติ พาลเมอร์สตันเหนือ นิวซีแลนด์) สำหรับการวิเคราะห์ Cu และ Zn (โดยย่อยอาหารกรดไนตริกและไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (Kovács et al., 1996) และต่อมาอะตอมดูดซึม Spectrometry (AAS) วิเคราะห์ตาม 3111 B (อาภา 2005))

สแกน (SEM) microscopy อิเล็กตรอนกับอิเล็กตรอน dispersive spectrometry (EDS) ถูกทำ 3 ครั้ง (เริ่มต้น กลางและสิ้นสุดของรอบระยะเวลาตรวจสอบ) บน subsamples 6 ของรากที่ถูกตัดในส่วน 1 มม.กับมีดโกนใบมีดเหล็กกล้าไร้สนิม อบแห้ง และเคลือบ ด้วยคาร์บอน (Batty et al., 2002) คำว่า "ราก" ใช้ในเอกสารนี้หมายถึงเนื้อเยื่อพืชที่เติบโตใต้เสื่อ FTW รากที่เจริญเติบโตภายในเมตริกซ์ลื่นถูก analysed หรือวัดไม่

2.4 เก็บตัวอย่างตะกอนและวิเคราะห์
ตัวอย่างตะกอนถูกเก็บรวบรวมในบ่อควบคุมและ FTW 6 ครั้งช่วงระยะเวลา 2 ปี ก่อนเก็บตะกอน อิเล็กโทรดแหวนแพลทินัม-Ag/AgCl รวมกับเครื่องวัดปฏิบัติ redox (826, Metrohm) (Hinchey และ Schaffner, 2005 และ Rodríguez et al., 2010) ถูกแทรกลงในตะกอนได้ลึกถึง ∼2 ซม. (วิธีการโดยละเอียดให้ข้อมูลเสริม) 208 mV ถูกเพิ่มไปยังการอ่านการคำนวณ redox อาจสัมพันธ์กับไฮโดรเจนอิเล็กโทรด (Eh) ในเวลาต่อมา หยิบตะกอนตัวอย่าง (กิตซม.ของชั้นบนสุด) ถูกรวบรวมไว้ในบรรจุภัณฑ์โพรพิลีน (PP) และเก็บในที่เย็นในน้ำแข็งจนมาถึงที่ห้องปฏิบัติการสิ่งแวดล้อมของมหาวิทยาลัยของโอ๊คที่มีเก็บตัวอย่างที่ 4 องศาเซลเซียส จำกัดการเข้าถึงจากฝั่งด้านในบ่อแต่ละหมายถึง ที่ สอง และสี่เท่าตัวอย่างถูกเก็บรวบรวมในระหว่างภารกิจแรก และสอง ตามลำดับ การควบคุมบ่อ และตัวอย่างที่ 6 ได้เก็บรวบรวมระหว่างภารกิจแรกในบ่อ FTW เข้ามาแก้ไข ดังตัวอย่างแปด หรือเก้าถูกเก็บรวบรวมในแต่ละบ่อในระหว่างภารกิจที่เหลือ ความเข้มข้นของ Zn และ Cu ได้กำหนดตาม Jumbe และนันดินี (2009) ซึ่งช่วยให้การย่อยอาหารทั้งหมดของตัวอย่างรวมทั้งแบบฟอร์มส่วนที่เหลือโดยทั่วไปจะเกี่ยวข้องกับ lattices ซิลิเคท น้ำหนักที่หายไปในการจุดระเบิด (LOI) ซึ่งสอดคล้องกับเนื้อหาของอินทรีย์ของตัวอย่างที่ถูกกำหนด โดย ashing 2–4 g ของตัวอย่างที่ 500 ° C สำหรับ 12 h (Chagué-กอฟฟ์ 2005 และวัง et al., 2010) แยกขั้นตอนที่สามซึ่งนับของ Zn และ Cu เป็นแบบฟอร์ม 1) กำนัล/คาร์บอเนต 2) เศษกับ hydroxides และ 3) กับสารอินทรีย์และ sulphides ทำ ตาม "วิธี A" ของ Ianni et al. (2001) มีคำนวณเศษส่วน (detrital) ส่วนที่เหลือเป็นความแตกต่างระหว่างเนื้อหาโลหะทั้งหมดและผลรวมของโลหะออก โดยแยกตามลำดับ ตรงข้าม Ianni et al. (2001), ตะกอนที่ใช้ได้ไม่แห้งก่อนแยกเพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลงทางเคมีการเกิดสปีชีส์ใหม่ที่อาจเกิดขึ้นในระหว่างกระบวนการอบแห้ง (Chagué-กอฟฟ์ 2005) เทียบเท่ากับประมาณ 1 กรัมของตะกอนแห้งใช้การสกัดครั้งแรก สารสกัดจากสกัดตามลำดับและขั้นตอนการย่อยอาหารทั้งหมดถูก analysed Cu และ Zn โดยเปลวไฟหรือแกรไฟต์ (ขึ้นอยู่กับช่วงความเข้มข้น) AAS (แล้วแต่กำหนด SpectrAA-50/55) วิธีการหนึ่งที่ว่างเปล่าและหนึ่งเขตข้อมูลตัวอย่างซ้ำถูก analysed Cu และ Zn สำหรับแต่ละย่อยอาหารรวมและแยกตามลำดับขั้นตอน (อยู่ในช่วงจาก −19.8 19.4% กับค่ามัธยฐานของ 1.4% RPD) วิธีการโดยละเอียดให้ข้อมูลเสริม

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3 . การประเมินผลการสุ่มตัวอย่างโรงงานผลิตชีวมวลและการวิเคราะห์
โรงงานผลิตนั้นดำเนินการ 8 ครั้งในช่วงเช้าที่ปฏิบัติ ภารกิจ ต่อไปนี้การสุ่มตัวอย่างน้ำ สภาพ อากาศแห้ง ในเวลาเดียวกันตัวอย่างเนื้อเยื่อยิงและรากจะถูกรวบรวมใน 11 ตำแหน่งกว่า ftw ยกเว้นในระหว่าง 9 เดือนแรกของการเติบโตเมื่อพันธุ์ไม้เป็นการจัดตั้งยังหกพันธุ์ไม้ต่างๆจากชุดข้อมูลเดียวกันกับที่ปลูกไว้เดิมในเดือนธันวาคม 2010 บน ftw ได้วิเคราะห์เป็นค่ามาตรฐาน การประเมินการสะสมก่อมลพิษหลักๆลงและการวัดพลังงานชีวมวลได้อธิบายไว้ในที่อื่นๆ(ทน et al . 2013 และทน et al . 2013 B )ป้ายแมงกานีส,หรือเตารีดสามารถที่จะสร้างอยู่บนพื้นผิวของรากของพันธุ์ไม้พื้นที่ชุ่มน้ำเนื่องจากการดำเนินการการให้ออกซิเจนและแบคทีเรียออกมาผ่านทางราก( Emerson et al .ปี 1999 และนายหลิวและระบบ 2005 ) ป้ายเหล่านี้เป็นที่รู้จักกันดีในเรื่องเป็นโลหะมัดเหมือนกับชุดควบคุมหรือ zn ซึ่งอยู่ในพื้นที่โดยรอบของพวกเขา(ท่านทั้งหลาย et al . 1998 และท่านทั้งหลาย et al . 2001 )ปัญหานี้ได้รับการสอบสวนโดยการแยกโล่ประกาศเกียรติคุณโดยใช้หลัก dcb ( dithionite - citrate - โซดาไบคาร์บอเนต)โซลูชันที่ตามเปลือกหอย et al . ( 2010 ) ชุดควบคุม zn แซนตาเฟและเป็นหลักแยกเป็น ภายหลัง วิเคราะห์ตามวิธีการ 200.8 (คำแนะนำของ USEPA Microbiological 1994 )โดยการรับรองจากสถาบัน British Dental Health ประเทศนิวซีแลนด์( ianz )ห้องปฏิบัติการที่ได้รับการรับรองซ้ำตัวอย่างและฟิลด์ว่างได้วิเคราะห์ถึงความแตกต่างและมีความสัมพันธ์กันร้อยละ( rpd )ว่า Fixed Ranged Discount Promotion จาก - 18 ถึง 11% ด้วยค่ากลางของ 10% ที่อยู่ ภายใน ,± 20% ที่แนะนำโดยคำแนะนำของ USEPA Microbiological ( 1994 B ) หลังจากการขุดราก dcb และยิงประตูที่มีเตาอบแห้งใน C 60 °พักค้างคืนชั่งน้ำหนักและส่งไปยัง landcare (ได้รับการรับรองห้องปฏิบัติการ ianz ลอร์ดพาม - เอิซทันทางด้านทิศเหนือนิวซีแลนด์)สำหรับชุดควบคุมและการวิเคราะห์ zn (โดยดินประสิวกรดไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์และระบบย่อยอาหาร( kovács et al ., 1996 )และต่อมาปรมาณูดูดซับ spectrometry ( AAS )การวิเคราะห์ตาม 3111 B ( apha , 2005 )).

อิเลคตรอนการสแกนการตรวจวิเคราะห์สารเคมี(ความหมายอย่างไรต่อ)พร้อมด้วยอิเล็กตรอน Energy Dispersive spectrometry ( eds )ได้ดำเนินการ 3 ครั้ง(ตอนต้น,สิ้นสุดและส่วนกลางของช่วงเวลาการตรวจสอบ)ในวันที่ 6 subsamples รากของซึ่งก็ถูกตัดใน 1 ส่วนม.ม.พร้อมด้วยใบมีดโกนหนวดเหล็กสแตนเลสสตีลที่แช่แข็ง - แห้งและเคลือบด้วยผงถ่านกัมมันต์(บ้า et al . 2002 ) คำว่า"ราก"นำมาใช้ในเอกสารนี้หมายถึงเนื้อเยื่อพืชที่กำลังเติบโตขึ้นด้านล่าง ftw แผ่นรอง รากเหง้าการเติบโตอยู่ ภายใน Matrix Storage แผ่นรองที่ไม่ได้วิเคราะห์หรือวัด.

2.4 การสุ่มตัวอย่างตะกอนและการวิเคราะห์
ตามมาตรฐานตัวอย่างตะกอนได้จากการเก็บข้อมูลในการควบคุม ftw สระน้ำและที่ 6 ครั้งในช่วงระยะเวลา 2 ปี ก่อนที่จะตะกอนคอลเลคชั่นที่ผสมผสานเข้า platinum-ag / agcl วงแหวนเชื่อมกับห้องปฏิบัติการ redox เมตร( 826 , metrohm )( hinchey และ schaffner , 2005 และอีกทั้งยังมอบหมาย et al ., 2010 )ได้มีการเสียบเข้าไปในตะกอนในการที่ความลึกของ∼ 2 ซม.(รายละเอียดวิธีการจัดให้บริการอยู่ในเสริมข้อมูล)208 MV ถูกเพิ่มลงในการอ่านหนังสือที่จะคำนวณ ศักยภาพ redox ที่เชื่อมสัมพันธ์กับไฮโดรเจน(เอ๊ะ) ต่อมาตัวอย่างตะกอนจับ(ซม. 2-3 2-3 2-3 ของชั้นด้านบน)ได้จากการเก็บข้อมูลในโพลิโพรพิลีน( PP )ตู้คอนเทนเนอร์และได้รับการดูแลรักษาให้อยู่ในอุปกรณ์ทำความเย็นที่บนน้ำแข็งจนกว่ามาถึงที่ห้องปฏิบัติการด้านสิ่งแวดล้อมของมหาวิทยาลัย Auckland สถานที่ซึ่งมีตัวอย่างเก็บไว้ที่ 4 ° Cการเข้าถึงที่จำกัดจากด้านข้างธนาคารเข้าไปในบ่อแต่ละครั้งก็หมายความว่าเฉพาะสองและสี่ตัวอย่างก็เก็บรวบรวมได้ในระหว่างปฏิบัติ ภารกิจ ครั้งแรกและครั้งที่สองตามลำดับสำหรับบ่อการควบคุมและหกตัวอย่างได้เก็บรวบรวมได้ในระหว่าง ภารกิจ แรกที่อยู่ในสระ ftw ที่ การเข้าใช้งานได้รับการแก้ไขแล้ว ภายหลัง ดังนั้นแปดหรือเก้าตัวอย่างได้จากการเก็บข้อมูลในบ่อแต่ละคนในระหว่างปฏิบัติ ภารกิจ ที่เหลืออยู่zn ชุดควบคุมความเข้มข้นและมีกำหนดให้เป็นต่อ jumbe และ nandini ( 2009 )ซึ่งจัดให้บริการระบบย่อยอาหารทั้งหมดของตัวอย่างที่รวมถึงรูปแบบส่วนที่เหลือนั้นโดยทั่วไปที่เกี่ยวข้องกับระแนง silicate น้ำหนักหายไปบนสวิตช์สตาร์ท( Loi )ซึ่งตรงกับเนื้อหาของเรื่องเกษตรอินทรีย์ของตัวอย่างที่ได้ถูกกำหนดโดย G ashing 2-4 2-4 2-4 ของตัวอย่างที่ 500 ° C สำหรับ 12 ชั่วโมง( chagué-goff 2005 และวัง et al . 2010 )สามขั้นตอนการขุดเจาะที่ช่วยให้จึงจำเป็นต้องมีของชุดควบคุมและ zn เป็น 1 )/คาร์บอเนตสามารถถอดเปลี่ยนได้ 2 )ส่วนหน้าที่ที่จะละลายอะลูมิเนียมไฮดรอกไซด์และ 3 )ต้อง sulphides และสารประกอบอินทรีย์ได้ดำเนินการบนพื้นฐานของ"ขั้นตอนที่"ของ ianni et al . ( 2001 )ส่วนที่เหลือ( detrital )ส่วนที่จะคำนวณความแตกต่างระหว่างเนื้อหาเป็นโลหะรวมและจำนวนเงินของโลหะที่ออกมาโดยการขุดแบบต่อเนื่องเป็นลำดับ ในทางตรงกันข้ามกับ ianni et al . ( 2001 )ตะกอนที่ใช้ไม่ได้แห้งก่อนการขุดเจาะเพื่อป้องกันไม่ให้การเปลี่ยนแปลงใน speciation สารเคมีที่อาจจะเกิดขึ้นในระหว่างขั้นตอนการเป่าผมแห้งที่( chagué-goff 2005 )เทียบเท่ากับที่ประมาณ 1 G ของตะกอนทำให้แห้งก็นำมาใช้สำหรับการขุดครั้งแรก คัดลอกจากการขุดแบบต่อเนื่องเป็นลำดับและขั้นตอนระบบย่อยอาหารทั้งหมดที่ยังนำมาวิเคราะห์หาสำหรับชุดควบคุมและ zn โดยเปลวไฟหรือตะกั่วดำ(ขึ้นอยู่กับช่วงการระดม) AAS ( varian spectraa -50/55 )วิธีการหนึ่งและหนึ่งฟิลด์ที่ซ้ำกันเป็นตัวอย่างสำหรับการไปยัง Cu และวิเคราะห์ zn สำหรับแต่ละระบบย่อยอาหารและแบบต่อเนื่องเป็นลำดับรวมการขุดขั้นตอนที่( Fixed Ranged Discount Promotion rpd จาก - 19.8 ถึง 19.4% ด้วยที่อยู่ตรงกลางของ 1.4% ) วิธีการโดยละเอียดจะจัดให้บริการในข้อมูลเพิ่มเติม