MeasurementsIn both experiments the

Measurements
In both experiments the broilers were weighed before
the start of the different treatments. In experiment 1 the
broilers were weighed again just before euthanasia by
electrocution. The period between the first weighing and
the second weighing of the birds was 16 h and 40 min.
In experiment 2 the second weighing was immediately
after the end of the treatments, and the period between
the first and second weighing was 13 h and 20 min.
Blood sampling started immediately after the end of
the treatments. Birds were taken out of the pen or crates,
depending on the treatment, and blood was collected by
puncturing the vena ulnaris. About 4 mL of blood was
taken and stored on ice in tubes containing sodium
fluoride.
Analysis of Plasma Samples
Blood samples were kept on ice until plasma was separated
by centrifugation for 10 min at 1,500 rpm. Plasma
samples were stored at –20°C until assayed. CORT, T3, T4,
glucose, lactate, uric acid, TG, and NEFA concentrations
were determined. Plasma CORT, T3, and T4 concentrations
were measured using a sensitive and highly specific
radioimmunoassay kit5 with a sensitivity of 0.39 ng/mL
and cross-reactions with aldosterone (0.20%), cortisol
(0.40%), and deoxycorticosterone (3.30%). Samples were
added in duplicate to check intraassay variability. Plasma
CORT, T3, and T4 concentrations had intraassay variabilities
of 3.9, 4.5, and 5.4% respectively. Plasma metabolite
concentrations of glucose, lactate, uric acid, TG, and
NEFA were determined using a commercial kit validated
for chicken plasma6 modified for use in the Monarch
Chemistry System.7 All measurements for each variable
were run in the same assay to avoid interassay variability.
Statistical Analyses
The statistical analyses were performed in the SAS-PC
System (SAS Institute, 2000). PROC FREQ and PROC
MEANS were used for descriptive analyses. The assumption
of normality of the outcomes was assessed applying
stem-and-leaf plots and normal probability plots. The distribution
of the plasmaCORTconcentrations was skewed,
and therefore a logarithmic transformation was applied.
Broiler was taken as the statistical unit, but pen was
included as a random effect in the model to account for
dependency between birds in the same pen (SAS Institute,
5IDS, Inc., Boldon, UK.
6Procedure 826-UV, Sigma Diagnostics, Steinheim, Germany.
7Monarch Chemistry System, Instrumentation. Laboratories, Zaventem,
Belgium.
2000). Therefore standard errors and probabilities were
calculated using the type III MS for pen as an error term.
Experiment, treatment, and the interaction term experiment
× treatment were analyzed using a generalized linear
model performed by PROC GLM on plasma concentrations
and BW. The experiment effect was highly significant
(P = 0.0002), and therefore the results are
presented separately for both experiments. Significant differences
between treatments were separated using least
squares means procedures of the SAS software (SAS Institute,
2000). All statements of significance were based on
a probability level of 0.05.
RESULTS
Plasma Concentrations and Hormones
In experiment 1, no significant differences in CORT
were found; however, in experiment 2 average plasma
CORT concentrations of broilers that were transported
(TR 3 and 4) were significantly higher than those of broilers
exposed to other treatments (Figure 1A). For plasma
T3 concentration both experiments gave similar results.
Treatments with long feed withdrawal times (TR 2 and
3) induced decreased T3 values. For TR 4, experiment 2
gave significantly lower values as compared with TR 5.
Both treatments had a similar feed withdrawal period,
but TR 4 birds were also transported (Figure 1B). In experiment
1 significantly higher plasma T4 levels were found
for TR 2 and 3, which included feed withdrawal (Figure
1C). For Tr2, experiment 2 gave increased T4 levels compared
with TR 1, 3, and 4. Plasma T4 levels in TR 5 were
significantly higher than in TR 4.
Plasma Concentrations and Metabolites
Plasma uric acid concentrations in experiment 1 were
significantly decreased for broilers on feed withdrawal
in TR 2. Broilers that were on feed withdrawn and transported
(TR 3) had higher uric acid values than TR 2 birds.
In experiment 2, TR 3 and 4 had significantly higher
concentrations than treatments that did not include transport
(TR 1, 2, and 5; Figure 2A). In both experiments the
concentrations of TG found in TR 2, 3, 4, and 5 were
significantly lower than the concentration of TG in TR 1.
Feed withdrawal during the whole experiment (TR 2)
resulted in the greatest decrease (Figure 2B).
Plasma NEFA concentrations in experiment 1 were significantly
higher for TR 2, 3, and 4 birds than for fed
birds (TR 1). In experiment 2 roughly similar results were
obtained. TR 2, 3, and 4 showed significantly higher
plasma NEFA concentrations than TR 1 and 5. Feed withdrawal
and transport (TR 3) induced the highest values
(Figure 2C). Plasma glucose concentrations found in experiments
1 and 2 for birds on feed withdrawal in TR 2
and TR 3 were significantly decreased. TR 4 gave significantly
higher glucose values than TR 5 (Figure 2D). In
both experiments, birds of TR 2 and 3 had the lowest
lactate concentrations (Figure 2E)

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัดในการทดลองทั้งสอง ออกจะได้ชั่งน้ำหนักก่อนเริ่มต้นการรักษาแตกต่างกัน ในการทดสอบ 1 การไก่เนื้อมีน้ำหนักอีก เพียงก่อนการุณยฆาตโดยประหาร ในระยะแรกชั่งน้ำหนัก และชั่งสองของนกถูก 16 h 40 นาทีในการทดลอง 2 ชั่งสองได้ทันทีหลังจากสิ้นสุดการรักษา และระยะระหว่างแรก และที่สองน้ำหนักขึ้น 13 h 20 นาทีสุ่มตัวอย่างเลือดที่เริ่มต้นทันทีหลังจากสิ้นสุดการรักษา นกที่ถ่ายจากปากกาหรือลังขึ้นอยู่กับการรักษา และเลือดถูกรวบรวมโดยpuncturing นเซอร์ vena มีประมาณ 4 มิลลิลิตรของเลือดถ่าย และจัดเก็บไว้ในน้ำแข็งในท่อที่ประกอบด้วยโซเดียมฟลูออไรด์วิเคราะห์ตัวอย่างพลาสม่าเลือดตัวอย่างที่ถูกเก็บไว้บนน้ำแข็งจนกว่าพลาสม่าถูกคั่นโดย centrifugation ใน 10 นาทีที่ 1500 รอบต่อนาที พลาสม่าตัวอย่างถูกเก็บไว้ที่ –20 ° C จนกว่า assayed CORT, T3, T4กลูโคส lactate กรดยูริก TG และ NEFA ความเข้มข้นได้กำหนด พลาสม่าความเข้มข้น CORT, T3 และ T4วัดโดยใช้ความลับ และการkit5 radioimmunoassay มีความไวของ 0.39 ng/mLcross-reactions กับ aldosterone (0.20%), cortisol และ(0.40%), และ deoxycorticosterone (3.30%) ตัวอย่างดีเพิ่มสำเนาเพื่อตรวจสอบความแปรผัน intraassay พลาสม่าความเข้มข้น CORT, T3 และ T4 มี intraassay variabilities3.9, 4.5 และ 5.4% ตามลำดับ Metabolite พลาสม่าความเข้มข้นของน้ำตาลกลูโคส lactate กรดยูริก TG และNEFA ได้กำหนดใช้ตรวจสอบชุดเชิงพาณิชย์สำหรับไก่ plasma6 ที่ปรับเปลี่ยนสำหรับใช้ในทุกข์เคมีวัด System.7 ทั้งหมดสำหรับแต่ละตัวแปรถูกเรียกใช้ในการทดสอบเดียวกันเพื่อหลีกเลี่ยงความแปรผัน interassayวิเคราะห์ทางสถิติได้ดำเนินการวิเคราะห์ทางสถิติ SAS-PCระบบ (สถาบัน SAS, 2000) FREQ กระบวนการและกระบวนการหมายความว่าถูกใช้สำหรับวิเคราะห์อธิบาย อัสสัมของ normality ของผลได้ประเมินการใช้ก้าน และใบลงจุด และลงจุดน่าเป็นปกติ การกระจายของ plasmaCORTconcentrations ถูกเบ้และดังนั้นจึง ใช้การแปลงแบบลอการิทึมไก่เนื้อถูกนำมาเป็นหน่วยสถิติ แต่ถูกปากการวมเป็นผลสุ่มในรูปแบบการพึ่งพาระหว่างนกปากกาเหมือนกัน (สถาบัน SAS5IDS, Inc., Boldon, UKSteinheim 826-UV ซิกวินิจฉัย 6Procedure เยอรมนี7Monarch เคมีระบบ เครื่องมือวัด ห้องปฏิบัติการ Zaventemเบลเยียม2000) ดังนั้นมาตรฐานข้อผิดพลาดและกิจกรรมคำนวณใช้ชนิด III MS สำหรับปากกาเป็นระยะมีข้อผิดพลาดการทดลอง การรักษา และทดลองคำโต้ตอบการรักษาได้วิเคราะห์โดยใช้การเมจแบบทั่วไปเส้นรูปแบบที่ดำเนินการ โดย PROC GLM ในความเข้มข้นของพลาสมาและ BW ผลการทดลองสำคัญมาก(P = 0.0002), และดังนั้นจึง มีผลนำเสนอแยกต่างหากสำหรับการทดลองทั้งสอง ความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่างรักษาถูกแบ่งใช้อย่างน้อยสี่เหลี่ยมหมายถึง กระบวนการซอฟต์แวร์ SAS (SAS สถาบัน2000) ถูกใช้งบทั้งหมดของความสำคัญระดับความน่าเป็น 0.05ผลลัพธ์ความเข้มข้นของพลาสมาและฮอร์โมนในการทดสอบ 1 ไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญใน CORTพบ อย่างไรก็ตาม ในทดลองเฉลี่ยพลาสมา 2ความเข้มข้นของ CORT ของไก่เนื้อที่อพยพ(TR 3 และ 4) ได้อย่างมีนัยสำคัญสูงกว่าผู้ออกสัมผัสกับการรักษาอื่น ๆ (รูปที่ 1A) ในพลาสมาความเข้มข้นของ T3 ทดลองทั้งสองให้ผลคล้ายกันรักษาเวลาถอนยาวอาหาร (TR 2 และ3) ทำให้เกิดค่า T3 ลดลง TR 4 ทดลอง 2ให้ค่าต่ำมากเมื่อเทียบกับ TR 5รักษาทั้งสองมีความคล้ายอาหารระยะเวลาถอนแต่นก TR 4 ก็ยังขนย้าย (รูปที่ 1B) ในการทดลองพบ 1 ระดับพลาสมา T4 สูงกว่าอย่างมีนัยสำคัญTR 2 และ 3 ซึ่งรวมถอนตัวดึงข้อมูล (รูป1 C) สำหรับ Tr2 ทดลอง 2 ให้ราคาระดับ T4 เพิ่มขึ้นเมื่อเทียบมี TR 1, 3 และ 4 ระดับ T4 พลาสมาใน TR 5 ได้อย่างมีนัยสำคัญสูงกว่าใน TR 4ความเข้มข้นของพลาสมาและ Metabolitesมีความเข้มข้นของกรดยูริกพลาสม่าในการทดลอง 1ลดลงอย่างมีนัยสำคัญสำหรับออกบนถอนตัวดึงข้อมูลใน TR 2 ออกที่มาดึงถอน และขนส่ง(TR 3) มีค่ากรดยูริกสูงกว่านก TR 2ทดลองที่ 2, TR 3 และ 4 มีสูงมากความเข้มข้นกว่าการไม่มีขน(TR 1, 2 และ 5 รูปที่ 2A) ในการทดลองทั้งสองแบบความเข้มข้นของ TG พบใน TR 2, 3, 4 และ 5อย่างมีนัยสำคัญต่ำกว่าความเข้มข้นของ TG ใน TR 1ดึงถอนในระหว่างการทดลองทั้งหมด (TR 2)ส่งผลให้ลดลงมากที่สุด (รูปที่ 2B)ความเข้มข้นของ NEFA พลาสม่าในการทดสอบที่ 1 ถูกมากสูงสำหรับ TR 2, 3 และ 4 นกกว่าสำหรับเลี้ยงนก (TR 1) ในการทดลอง ได้ผลคล้ายกันประมาณ 2ได้รับการ TR 2, 3 และ 4 แสดงให้เห็นอย่างมีนัยสำคัญพลาสม่า NEFA ความเข้มข้นกว่า TR 1 และ 5 ดึงถอนและขนส่ง (TR 3) ทำให้เกิดค่าสูงสุด(รูปที่ 2C) ความเข้มข้นของน้ำตาลในพลาสมาที่พบในการทดลอง1 และ 2 สำหรับนกบนถอนตัวดึงข้อมูลใน TR 2และ TR 3 ได้ลดลงอย่างมีนัยสำคัญ TR 4 ให้มากค่ากลูโคสสูงกว่า TR 5 (รูปที่ 2D) ในทั้งการทดลอง นก TR 2 และ 3 ได้ต่ำที่สุดlactate ความเข้มข้น (รูปที่ 2E)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัด
ในการทดลองทั้งไก่เนื้อได้รับการชั่งน้ำหนักก่อนที่จะ
เริ่มต้นของการรักษาที่แตกต่างกัน ในการทดลองที่ 1
ไก่เนื้อได้รับการชั่งน้ำหนักอีกครั้งก่อนที่จะนาเซียโดย
ไฟฟ้า ช่วงเวลาระหว่างการชั่งน้ำหนักครั้งแรกและ
ชั่งน้ำหนักที่สองของนกเป็น 16 ชั่วโมงและ 40 นาที.
ในการทดลองที่ 2 ที่สองคือการชั่งน้ำหนักได้ทันที
หลังจากการสิ้นสุดของการรักษาและช่วงเวลาระหว่าง
การชั่งน้ำหนักครั้งแรกและครั้งที่สองคือ 13 ชั่วโมงและ 20 นาที .
การเก็บตัวอย่างเลือดเริ่มต้นได้ทันทีหลังจากการสิ้นสุดของ
การรักษา นกที่ถูกนำออกมาจากปากกาหรือลัง,
ขึ้นอยู่กับการรักษาและเลือดที่เก็บรวบรวมโดย
เจาะ ulnaris vena ประมาณ 4 มิลลิลิตรของเลือด
ที่นำมาและเก็บไว้ในน้ำแข็งหลอดที่มีโซเดียม
ฟลูออไร.
การวิเคราะห์ตัวอย่างพลาสมา
ตัวอย่างเลือดถูกเก็บไว้บนน้ำแข็งจนพลาสม่าถูกแยกออก
โดยการหมุนเหวี่ยงเป็นเวลา 10 นาทีที่ 1,500 รอบต่อนาที พลาสม่า
ตัวอย่างที่ถูกเก็บไว้ที่ -20 ° C จน assayed CORT, T3, T4,
กลูโคส, แลคเตท, กรดยูริค, TG, และความเข้มข้นของ NEFA
ได้รับการพิจารณา พลาสม่า CORT, T3, T4 และความเข้มข้น
ที่ถูกวัดโดยใช้ความไวและความจำเพาะสูง
KIT5 radioimmunoassay มีความไวของการศึกษา 0.39 / mL
และปฏิกิริยาข้ามกับ aldosterone (0.20%), คอร์ติซอ
(0.40%) และ deoxycorticosterone (3.30%) ตัวอย่างที่ถูก
เพิ่มเข้ามาในที่ซ้ำกันในการตรวจสอบความแปรปรวน intraassay พลาสม่า
CORT, T3, T4 และความเข้มข้นมี intraassay variabilities
3.9, 4.5, และ 5.4% ตามลำดับ พลาสม่า metabolite
ความเข้มข้นของน้ำตาลกลูโคส, แลคเตท, กรดยูริค, TG และ
NEFA ได้รับการพิจารณาโดยใช้ชุดตรวจสอบในเชิงพาณิชย์
สำหรับไก่ plasma6 ดัดแปลงเพื่อใช้ในพระมหากษัตริย์
เคมี System.7 วัดทั้งหมดสำหรับแต่ละตัวแปร
ที่ถูกเรียกใช้ในการทดสอบเดียวกันเพื่อหลีกเลี่ยงความแปรปรวน interassay .
การวิเคราะห์ทางสถิติ
การวิเคราะห์ทางสถิติได้ดำเนินการในการ SAS-PC
ระบบ (SAS Institute, 2000) FREQ PROC และ PROC
หมายถึงถูกนำมาใช้สำหรับการวิเคราะห์เชิงพรรณนา สมมติฐาน
ของปกติของผลการประเมินการใช้
ที่ดินลำต้นและใบและแปลงความน่าจะเป็นปกติ การกระจาย
ของ plasmaCORTconcentrations ถูกเบ้,
และดังนั้นจึงเปลี่ยนแปลงลอการิทึมถูกนำไปใช้.
ไก่เนื้อถูกนำมาเป็นหน่วยสถิติ แต่ปากกาถูก
รวมเป็นผลสุ่มในรูปแบบบัญชีสำหรับ
การพึ่งพาระหว่างนกในคอกเดียวกัน (SAS Institute,
5IDS อิงค์ Boldon สหราชอาณาจักร.
6Procedure 826-UV ซิกวินิจฉัย Steinheim เยอรมนี.
7Monarch ระบบเคมี Instrumentation. ห้องปฏิบัติการ, ซาเวนเทม
ส์.
2000) ดังนั้นข้อผิดพลาดมาตรฐานและความน่าจะได้รับการ
คำนวณโดยใช้ชนิด III MS สำหรับปากกาเป็นคำข้อผิดพลาด.
ทดลองการรักษาและระยะปฏิสัมพันธ์ทดลอง
×การรักษาได้รับการวิเคราะห์โดยใช้เชิงเส้นทั่วไป
รูปแบบการดำเนินการโดย PROC GLM ในความเข้มข้นในพลาสมา
และ BW ผลการทดลองอย่างมีนัยสำคัญสูง
(p = 0.0002) และดังนั้นผลที่จะ
นำเสนอแยกต่างหากสำหรับการทดลองทั้งสอง แตกต่างที่สำคัญ
ระหว่างการรักษาที่ถูกแยกออกโดยใช้น้อย
สี่เหลี่ยมหมายถึงขั้นตอนของซอฟต์แวร์ SAS (SAS Institute,
2000) งบทั้งหมดที่มีความสำคัญขึ้นอยู่กับ
. ระดับความน่าจะเป็น 0.05
ผล
ความเข้มข้นในพลาสมาและฮอร์โมน
การทดลองที่ 1 ไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญใน CORT
ที่พบ; อย่างไรก็ตามในการทดลองที่ 2 พลาสม่าเฉลี่ย
ความเข้มข้นของ CORT ของไก่ที่ได้รับการเคลื่อนย้าย
(TR 3 และ 4) อย่างมีนัยสำคัญสูงกว่าไก่เนื้อ
สัมผัสกับการรักษาอื่น ๆ (รูปที่ 1A) สำหรับพลาสม่า
เข้มข้น T3 ทดลองทั้งสองได้ให้ผลที่คล้ายกัน.
การรักษากับเวลาถอนฟีดยาว (TR ที่ 2 และ
3) การชักนำให้เกิดการลดลงค่า T3 สำหรับ TR 4 การทดลองที่ 2
ให้ค่าลดลงอย่างมีนัยสำคัญเมื่อเทียบกับ TR 5.
การรักษาทั้งสองมีช่วงเวลาการถอนตัวฟีดที่คล้ายกัน
แต่ TR 4 นกยังถูกส่ง (รูปที่ 1B) ในการทดลอง
ที่ 1 ระดับ T4 พลาสม่าที่ได้รับสูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญพบ
สำหรับ TR 2 และ 3 ซึ่งรวมถึงการถอนตัวฟีด (รูปที่
1C) สำหรับ Tr2, การทดลองที่ 2 ให้เพิ่มระดับ T4 เมื่อเทียบ
กับ TR 1, 3, และ 4 ระดับพลาสม่าใน T4 TR 5 ได้
อย่างมีนัยสำคัญสูงกว่าใน TR 4.
พลาสม่าเข้มข้นและสาร
พลาสม่าเข้มข้นของกรดยูริคในการทดลองที่ 1 ได้รับการ
ลดลงอย่างมีนัยสำคัญสำหรับไก่เนื้อใน ถอนฟีด
ใน TR 2. ไก่ที่อยู่บนฟีดถอนตัวออกและการขนส่ง
(TR 3) มีค่ากรดยูริคสูงกว่า TR 2 นก.
ในการทดลองที่ 2, TR 3 และ 4 มีสูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ
ความเข้มข้นกว่าการรักษาที่ไม่ได้รวมการขนส่ง
(TR 1 , 2, 5 และรูปที่ 2A) ในการทดลองทั้ง
ความเข้มข้นของ TG พบใน TR 2, 3, 4, 5 และมี
นัยสำคัญต่ำกว่าความเข้มข้นของ TG ใน TR 1.
ฟีดถอนตัวในระหว่างการทดลองทั้งหมด (TR 2)
มีผลในการลดลงมากที่สุด (รูปที่ 2B)
ความเข้มข้นของพลาสม่า NEFA ในการทดลองที่ 1 อย่างมีนัยสำคัญ
ที่สูงขึ้นสำหรับ TR 2, 3, 4 และนกกว่าสำหรับเลี้ยง
นก (TR 1) ในการทดลองที่ 2 ผลที่คล้ายกันประมาณถูก
ได้ TR 2, 3, และ 4 แสดงให้เห็นอย่างมีนัยสำคัญสูงกว่า
ความเข้มข้นในพลาสมา NEFA กว่า TR 1 และ 5. ถอนฟี
และการขนส่ง (TR 3) เหนี่ยวนำค่าที่สูงที่สุด
(รูปที่ 2C) ความเข้มข้นของน้ำตาลในเลือดที่พบในการทดลอง
ที่ 1 และ 2 สำหรับนกเกี่ยวกับการถอนเงินอาหารใน TR 2
และ 3 TR ลดลงอย่างมีนัยสำคัญ TR 4 ให้อย่างมีนัยสำคัญ
ที่สูงขึ้นกว่าค่ากลูโคส TR 5 (รูปแบบ 2 มิติ) ใน
การทดลองทั้งสองนก TR ที่ 2 และ 3 มีต่ำสุด
เข้มข้นของแลคเตท (รูป 2E)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในการทดลองทั้งสองวัด
ไก่ถูกชั่งน้ำหนักก่อน
เริ่มต้นของการรักษาที่แตกต่างกัน ในการทดลองที่ 1
ไก่มีน้ำหนักอีกครั้งก่อนการุณยฆาตโดย
ไฟดูด ระยะเวลาระหว่างแรกและสองชั่ง ชั่ง
ของนกคือ 16 ชั่วโมงและ 40 นาที ในการทดลองที่ 2 สอง

ชั่งได้ทันทีหลังจากสิ้นสุดการรักษา และระยะเวลาระหว่าง
เป็นครั้งแรกและครั้งที่สองชั่ง อายุ 13 ชั่วโมงและ 20 นาที
ตัวอย่างเลือดเริ่มทันทีหลังจากสิ้นสุด
การบําบัด นกถูกนำออกมาจากปากกาหรือลัง
ขึ้นอยู่กับการรักษา และเลือดที่ถูกรวบรวมโดย
เจาะ VENA ulnaris . เกี่ยวกับ 4 มิลลิลิตรของเลือด
ถ่ายและเก็บไว้บนน้ำแข็งในหลอดที่มีโซเดียมฟลูออไรด์
.

การวิเคราะห์ตัวอย่างพลาสมาตัวอย่างเลือดถูกเก็บไว้ในที่เย็น จนกว่าระดับน้ำแยก
โดยการเหวี่ยงแยก 10 นาทีที่ 1 , 500 รอบต่อนาที ตัวอย่างพลาสมาที่อุณหภูมิ 20 องศา
) C จนซีรั่ม . คอร์ท , T3 , T4 ,
กลูโคสและกรดยูริค , , , การบินไทย และ nefa ความเข้มข้น
ตัวอย่าง พลาสมา คอร์ท , T3 และ T4
( วัดโดยใช้ความไวและเฉพาะเจาะจง
สูง radioimmunoassay kit5 กับความไวของ 0.39 ng / ml
และข้ามปฏิกิริยากับอัลโดสเตอโรน ( 0.20 % ) , คอร์ติซอล
( 0.40% ) และอาถรรพเวท ( 30 % ) จำนวน
เพิ่มในซ้ำเพื่อตรวจสอบ intraassay ความผันแปร พลาสมา
คอร์ท , T3 และ T4 ความเข้มข้นได้ intraassay ผัน
3.9 , 4.5 , และ 5.4 ตามลำดับ พลาสมาไลท์
ความเข้มข้นของกลูโคส กรดแลคติกกรดยูริค , TG และ
nefa ถูกกำหนดโดยใช้ชุดตรวจสอบ
พาณิชย์ไก่ plasma6 ดัดแปลงเพื่อใช้ในระบบเคมีพระมหากษัตริย์
7 วัดทั้งหมดสำหรับแต่ละตัวแปร
ถูกรันในแบคทีเรียเดียวกันเพื่อหลีกเลี่ยงความ interassay
.
การวิเคราะห์ทางสถิติการวิเคราะห์ทางสถิติในการวิจัยในระบบ sas-pc
( SAS Institute , 2000 ) ความถี่ และ proc proc
หมายถึง นำมาวิเคราะห์เชิงพรรณนา อัสสัมชัญ
ของการแจกแจงแบบปกติของผลประเมินการใช้
ลำต้นและใบแปลงแปลงและความน่าจะเป็นแบบปกติ การกระจายของ plasmacortconcentrations

เป็นเบ้และดังนั้นการเปลี่ยนแปลง , ลอการิทึมประยุกต์ .
ไก่ถ่ายเป็นหน่วยสถิติ แต่ปากกามัน
รวมเป็น Random Effect ในรูปแบบบัญชี
พึ่งพาระหว่างนกในกรงเดียวกัน ( SAS Institute , 5ids
. ,
boldon , สหราชอาณาจักร . 6procedure 826-uv , Sigma การวินิจฉัยsteinheim เยอรมนี ระบบ , เครื่องมือเคมี
7monarch . ห้องปฏิบัติการ , Zaventem เบลเยียม
, .
2 ) ดังนั้นข้อผิดพลาดมาตรฐานและความน่าจะเป็นเป็น
คำนวณโดยใช้ MS Type III สำหรับปากกาเป็นข้อผิดพลาด . .
การทดลอง , การรักษา , และการปฏิสัมพันธ์ในระยะทดลอง
×รักษาวิเคราะห์โดยใช้ตัวแบบเชิงเส้นโดย proc glm

และความเข้มข้น และน้ำหนักตัวการทดลองผลกระทบสูงอย่างมีนัยสำคัญ
( p = 0.0002 ) และดังนั้นผลลัพธ์
เสนอแยกทั้ง 2 การทดลอง ความแตกต่างระหว่างการรักษาแยกกัน

ใช้อย่างน้อยสี่เหลี่ยม หมายถึง กระบวนการของซอฟต์แวร์ SAS ( SAS Institute ,
2 ) งบทั้งหมดที่ใช้ในการกำหนดความเป็นไปได้อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติที่ระดับ 0.05 ผล


และพลาสมาปริมาณฮอร์โมนในการทดลองที่ 1 ไม่มีความแตกต่างในคอร์ท
พบ อย่างไรก็ตาม ในการทดลองที่ 2 ค่าเฉลี่ยความเข้มข้นของพลาสมา
CORT ตัวที่ถูกขนส่ง
( TR 3 และ 4 ) มีค่าสูงกว่าไก่
สัมผัสกับการรักษาอื่น ๆ ( รูปที่ 1A ) สำหรับความเข้มข้นของพลาสมา T3
การทดลองทั้งสองให้ผลที่คล้ายกัน การรักษากับเวลาถอนดึงยาว

( TR 2 และ3 ) การลดลง T3 ค่า เพื่อการศึกษา 4 การทดลองที่ 2
ให้ต่ำกว่าค่าเมื่อเทียบกับ TR 5 .
ทั้งสองชนิดมีคล้ายกันดึงถอนระยะเวลา
แต่ TR 4 นกมีขน ( รูปที่ 1A ) ในการทดลองสูงกว่าระดับพลาสมา T4
1 พบ
สำหรับ TR 2 และ 3 ซึ่งรวมถึงการถอนตัว ( รูป
1C ) สำหรับ tr2 ทดลองให้เพิ่มขึ้นเมื่อเทียบกับระดับ T4
2กับ Tr 1 , 3 และ 4 พลาสมาในระดับ T4 TR 5
สูงกว่าใน TR 4

พลาสมาพลาสมาและสารกรดยูริกในการทดลองที่ 1 มีปริมาณลดลงในอาหารไก่กระทง

ในการถอนเงิน TR 2 ไก่ที่กำลังเลี้ยงถอนและขนย้าย
( TR ) มีระดับกรดยูริกค่ามากกว่า TR 2 นก .
2 2ที 3 และ 4 มีความเข้มข้น
กว่าการรักษาที่ไม่รวมขนส่ง
( Tr 1 , 2 และ 5 ; รูปที่ 2A ) ในการทดลองทั้งสอง
ความเข้มข้นของ TG ที่พบใน TR 2 , 3 , 4 , และ 5
น้อยกว่าความเข้มข้นของ TG ใน TR 1 .
ถอนอาหารในระหว่างการทดลองทั้งหมด ( TR ) 2
( ลดลง มากที่สุด ( รูปที่ 2B
)ความเข้มข้นในพลาสมา nefa ทดลองที่ 1 อย่างมีนัยสำคัญสูงกว่าสำหรับ TR
2 , 3 , และ 4 นกกว่าเฟด
นก ( Tr 1 ) ในการทดลองที่ 2 ผลที่คล้ายกันเกะกะ
) TR 2 , 3 และ 4 มีความเข้มข้นกว่าพลาสมาสูงกว่า
nefa TR 1 และ 5 ดึงถอน
และการขนส่ง ( TR ) เกิดคุณค่าสูงสุด
( รูปที่ 2 ) พลาสมากลูโคสความเข้มข้นที่พบในการทดลอง
1 และ 2 นก อาหารสัตว์ และถอนใน TR TR 2
3 ลดลงอย่างมีนัยสำคัญ . TR 4 ให้ระดับกลูโคสสูงคุณค่ากว่า TR 5
( รูปที่ 2 ) ในการทดลองทั้งสองนก
, TR 2 และ 3 ได้ค่าความเข้มข้นของแลคเตท ( รูปที่ 2 )