- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
Motile F-actin patches in root hair
Motile F-actin patches in root hair tips
Both the tip localization as well as the highly dynamic
motility of the GFP-FYVE- and YFP-RabF2a-labeled
endosomes suggested a role of the actin cytoskeleton in
the subcellular distribution of these endosomal compartments within growing root hair cells. Because an
intact actin cytoskeleton is also required for expansion
of root hair cells (Balusˇka et al., 2000; Balusˇka and
Volkmann, 2002;Gilliland et al., 2002;Jiang et al., 1997;
Miller et al., 1999; Ringli et al., 2002; Sˇamaj et al., 2002;
Vantard and Blanchoin, 2002), we wanted to understand
the potential link between actin-based motility and
subcellular distribution of the GFP-FYVE- and Ara6/
YFP-RabF2a-labeled endosomes and cell expansion in
root hair cells. Interestingly, this motility did not appear
to be completely random, based on the observed
presence of these compartments at the tips of root
hairs. In vivo analysis of root hairs, transformed with
the GFP-FABD2 construct visualizing F-actin (actinbinding domain 2 of fimbrin, Voigt et al., 2005),
revealed mobile F-actin patches (Fig. 5a and c). The
rate of tip growth and cell morphology did not show any
obvious differences to wild-type root hairs (data not
shown).
The F-actin patches resembled closely the abovedescribed endosomes with respect to speed, locations
and directions of movements. Generally, in the tips
of growing root hairs ofM. truncatulaas well as of
A. thaliana, we could detect actin patches and very
dynamic short actin filaments (Fig. 5a and c). However,
non-growing root hairs showed prominent actin bundles, which protruded up to the extreme tip (Fig. 5b
and d), while enlarged actin patches were still present
but less motile (Movies 8 and 9).
Treatment of root hairs with 1mM jasplakinolide
resulted in the formation of thick actin structures
composed of presumably aberrantly bundled F-actin,
which were formed at or near the root hair tip
(Fig. 5e–h). In movies, it is obvious that these structures
ARTICLE IN PRESS
Fig. 1.Transient co-expression of endosomal markers Ara6-GFP (a) with DsRed-FYVE (b) in onion epidermal bulb scale
cells. Simultaneous two-channel confocal imaging revealed
that these two fusion proteins co-localize in several smaller
compartments while a few larger FYVE-labeled compartments
are not positive for Ara6 (c). Transient co-expression of eYFPRabF2a (d) and DsRed-FYVE (e) in epidermal bulb scale cells
showed a complete co-localization of both markers (f). To
confirm the endosomal nature of the FYVE-labeled compartments, we applied endocytic tracer FM4-64 on transgenicM.
truncatula roots expressing the double GFP-FYVE construct.
After 5 min of exposure to FM4-64, FYVE-labeled endosomes
(g) were enriched also with FM4-64 (h), as evidenced also by
the two-channel image (i). Yellow arrowheads indicate colocalization between Ara6 and FYVE (a–c), as well as between
FM4-64 and FYVE (i). Bars¼10mm.
Fig. 2.In stably transformed roots ofM. truncatula, FYVElabeled endosomes were abundant in all cells. The most
prominent early endosomes were scored in secretory cells of
the root cap (a) while they were less abundant in dividing
cortical cells of the root meristem localizing preferentially
around centrally positioned nuclei marked with stars (b). In
stably transformed roots of A. thaliana(c,d), FYVE-labeled
endosomes were abundant in all cells, closely resembling the
situation in the much larger roots ofM. truncatula. Some cells
are outlined using white lines, positions of some nuclei are
indicated with stars. Bars: a–c ¼50mm; d¼25mm.
B. Voigt et al. / European Journal of Cell Biology 84 (2005) 609–621 612
they were present along the root hairs including the
vesicle-rich and organelle-depleted tip zone of root hairs
(Fig. 3c). When root hair growth ceased, GFP-FYVE
accumulated on larger structures and small endosomes
were never detected at the root hair tip (Fig. 3d).
Occasionally, fully grown root hairs showed only a few
large endosomal aggregates without any preferential
localization (Fig. 3e; Movies 3 and 4).
To confirm that this pattern is not restricted to legume
roots, we examined the distribution of GFP-FYVE
compartments in stably transformedA. thaliana. Similarly like in Medicago, Arabidopsisroot hairs showed
small FYVE-labeled endosomes within outgrowing
bulges (not shown) and these accumulated abundantly
within the first 30mm of growing root hair apices
(Fig. 4a; Movie 5). Growing hairs exhibited abundant
endosomes from the tip up to 30mm downward the root
hair shank, but retracted from the tips in mature hairs,
once growth had ceased (Fig. 4b). However, unlike the
situation in Medicago, FYVE-labeled endosomes did
not form enlarged structures in mature root hairs of
Arabidopsis. Rather, endosomes became just a little bit
are polarly organized and move towards the hair tip.
Finally, they stopped their movements completely and
associated tightly with the very tips of jasplakinolidetreated root hairs (Movies 10 and 11).
Both the tip localization as well as the highly dynamic
motility of the GFP-FYVE- and YFP-RabF2a-labeled
endosomes suggested a role of the actin cytoskeleton in
the subcellular distribution of these endosomal compartments within growing root hair cells. Because an
intact actin cytoskeleton is also required for expansion
of root hair cells (Balusˇka et al., 2000; Balusˇka and
Volkmann, 2002;Gilliland et al., 2002;Jiang et al., 1997;
Miller et al., 1999; Ringli et al., 2002; Sˇamaj et al., 2002;
Vantard and Blanchoin, 2002), we wanted to understand
the potential link between actin-based motility and
subcellular distribution of the GFP-FYVE- and Ara6/
YFP-RabF2a-labeled endosomes and cell expansion in
root hair cells. Interestingly, this motility did not appear
to be completely random, based on the observed
presence of these compartments at the tips of root
hairs. In vivo analysis of root hairs, transformed with
the GFP-FABD2 construct visualizing F-actin (actinbinding domain 2 of fimbrin, Voigt et al., 2005),
revealed mobile F-actin patches (Fig. 5a and c). The
rate of tip growth and cell morphology did not show any
obvious differences to wild-type root hairs (data not
shown).
The F-actin patches resembled closely the abovedescribed endosomes with respect to speed, locations
and directions of movements. Generally, in the tips
of growing root hairs ofM. truncatulaas well as of
A. thaliana, we could detect actin patches and very
dynamic short actin filaments (Fig. 5a and c). However,
non-growing root hairs showed prominent actin bundles, which protruded up to the extreme tip (Fig. 5b
and d), while enlarged actin patches were still present
but less motile (Movies 8 and 9).
Treatment of root hairs with 1mM jasplakinolide
resulted in the formation of thick actin structures
composed of presumably aberrantly bundled F-actin,
which were formed at or near the root hair tip
(Fig. 5e–h). In movies, it is obvious that these structures
ARTICLE IN PRESS
Fig. 1.Transient co-expression of endosomal markers Ara6-GFP (a) with DsRed-FYVE (b) in onion epidermal bulb scale
cells. Simultaneous two-channel confocal imaging revealed
that these two fusion proteins co-localize in several smaller
compartments while a few larger FYVE-labeled compartments
are not positive for Ara6 (c). Transient co-expression of eYFPRabF2a (d) and DsRed-FYVE (e) in epidermal bulb scale cells
showed a complete co-localization of both markers (f). To
confirm the endosomal nature of the FYVE-labeled compartments, we applied endocytic tracer FM4-64 on transgenicM.
truncatula roots expressing the double GFP-FYVE construct.
After 5 min of exposure to FM4-64, FYVE-labeled endosomes
(g) were enriched also with FM4-64 (h), as evidenced also by
the two-channel image (i). Yellow arrowheads indicate colocalization between Ara6 and FYVE (a–c), as well as between
FM4-64 and FYVE (i). Bars¼10mm.
Fig. 2.In stably transformed roots ofM. truncatula, FYVElabeled endosomes were abundant in all cells. The most
prominent early endosomes were scored in secretory cells of
the root cap (a) while they were less abundant in dividing
cortical cells of the root meristem localizing preferentially
around centrally positioned nuclei marked with stars (b). In
stably transformed roots of A. thaliana(c,d), FYVE-labeled
endosomes were abundant in all cells, closely resembling the
situation in the much larger roots ofM. truncatula. Some cells
are outlined using white lines, positions of some nuclei are
indicated with stars. Bars: a–c ¼50mm; d¼25mm.
B. Voigt et al. / European Journal of Cell Biology 84 (2005) 609–621 612
they were present along the root hairs including the
vesicle-rich and organelle-depleted tip zone of root hairs
(Fig. 3c). When root hair growth ceased, GFP-FYVE
accumulated on larger structures and small endosomes
were never detected at the root hair tip (Fig. 3d).
Occasionally, fully grown root hairs showed only a few
large endosomal aggregates without any preferential
localization (Fig. 3e; Movies 3 and 4).
To confirm that this pattern is not restricted to legume
roots, we examined the distribution of GFP-FYVE
compartments in stably transformedA. thaliana. Similarly like in Medicago, Arabidopsisroot hairs showed
small FYVE-labeled endosomes within outgrowing
bulges (not shown) and these accumulated abundantly
within the first 30mm of growing root hair apices
(Fig. 4a; Movie 5). Growing hairs exhibited abundant
endosomes from the tip up to 30mm downward the root
hair shank, but retracted from the tips in mature hairs,
once growth had ceased (Fig. 4b). However, unlike the
situation in Medicago, FYVE-labeled endosomes did
not form enlarged structures in mature root hairs of
Arabidopsis. Rather, endosomes became just a little bit
are polarly organized and move towards the hair tip.
Finally, they stopped their movements completely and
associated tightly with the very tips of jasplakinolidetreated root hairs (Movies 10 and 11).
0/5000
แพทช์ระดับ motile แอกติน F ในคำแนะนำรากผมทั้งแปลคำแนะนำเป็นแบบไดนามิกสูงmotility ของ GFP FYVE - และ YFP-RabF2a-ป้ายendosomes แนะนำบทบาทของ cytoskeleton แอกตินในแจก subcellular ของช่อง endosomal เหล่านี้ภายในเซลล์รากผมเจริญเติบโต เนื่องจากการcytoskeleton แอกตินเหมือนเดิมยังจำเป็นสำหรับการขยายตัวเซลล์รากผม (Balusˇka et al., 2000 Balusˇka และVolkmann, 2002Gilliland และ al., 2002เจียงและ al., 1997มิลเลอร์ et al., 1999 Ringli และ al., 2002 Sˇamaj และ al., 2002Vantard และ Blanchoin, 2002), เราอยากเข้าใจเชื่อมโยงระหว่าง motility แอกตินตามศักยภาพ และGFP การกระจาย subcellular-FYVE และ Ara6 /YFP-RabF2a-ชื่อ endosomes และเซลล์ขยายตัวในเซลล์รากผม เป็นเรื่องน่าสนใจ motility นี้ไม่ปรากฏจะสุ่มสมบูรณ์ ขึ้นอยู่กับการสังเกตของเหล่านี้ช่องที่เคล็ดลับของรากเส้นขน ในสัตว์ทดลองวิเคราะห์เส้นขนราก แตกต่างGFP FABD2 สร้างแสดงผล F-แอกติน (actinbinding โดเมน 2 ของ fimbrin, Voigt et al., 2005),เปิดเผยโปรแกรมแอกติน F เคลื่อน (Fig. ของ 5a และ c) ที่อัตราของสัณฐานวิทยาการเจริญเติบโตและเซลล์แนะนำไม่ได้แสดงใด ๆความแตกต่างชัดเจนกับเส้นขนรากชนิดป่า (ข้อมูลไม่แสดง)ปรับปรุง F-แอกตินคล้ายกับอย่างใกล้ชิด endosomes abovedescribed กับความเร็ว ตำแหน่งและทิศทางของการเคลื่อนไหว ในทั่วไป เคล็ดลับของ ofM เส้นขนรากเจริญเติบโต truncatulaas ดีเป็นของA. thaliana เราสามารถตรวจพบซอฟต์แวร์แอกตินและfilaments ไดนามิกสั้นแอกติน (Fig. ของ 5a และ c) อย่างไรก็ตามเส้นขนรากไม่เจริญเติบโตพบว่ารวมกลุ่มแอกตินโดดเด่น ที่ protruded ถึงคำแนะนำมาก (Fig. 5bและ d), ในขณะที่ซอฟต์แวร์แอกตินขนาดใหญ่ยังคงมีอยู่แต่น้อย motile (ภาพยนตร์ 8 และ 9)รักษารากเส้นขนด้วย jasplakinolide 1 มม.ส่งผลให้เกิดการก่อตัวของโครงสร้างหนาแอกตินประกอบด้วย aberrantly ทับชุด F-แอกตินซึ่งได้ก่อตั้งขึ้นที่ หรือ ใกล้ปลายรากผม(Fig. 5e คือแบบ-h) ภาพยนตร์ เป็นที่ชัดเจนซึ่งโครงสร้างเหล่านี้บทความในวารสารFig. 1.ชั่วคราวร่วมค่าของ endosomal เครื่องหมาย Ara6 GFP (ก) กับ DsRed-FYVE (บี) ในมาตราส่วนหลอด epidermal หอมเซลล์ พร้อมกัน 2 ช่อง confocal ภาพเปิดเผยว่า โปรตีนเหล่านี้ผสมผสานสองร่วมแปลในขนาดเล็กช่องในขณะที่บางช่อง FYVE ชื่อใหญ่ไม่บวกสำหรับ Ara6 (c) นิพจน์แบบฉับพลันร่วม (d) eYFPRabF2a และ DsRed-FYVE (e) ในเซลล์ขนาดหลอด epidermalแสดงให้เห็นว่าการแปลร่วมทำเครื่องหมายทั้งสอง (f) ถึงยืนยันลักษณะ endosomal ของช่องชื่อ FYVE เราใช้ endocytic ติดตาม FM4 64 transgenicMtruncatula รากกำลังสอง GFP FYVE สร้างหลังจาก 5 นาทีของการสัมผัสกับ FM4-64 ป้าย FYVE endosomes(g) อุดมไปยัง ด้วย FM4-64 (h), ตามที่เป็นหลักฐานโดยยังรูปสองแชนเนล (i) Colocalization ระหว่าง Ara6 และ FYVE (a-c), เช่นเป็นระหว่างบ่งชี้หัวลูกศรสีเหลืองFM4 64 และ FYVE (i) Bars¼10mm2. fig. ในราก stably แปร ofM truncatula, FYVElabeled endosomes มีมากมายในเซลล์ทั้งหมด มากสุดendosomes โดดเด่นช่วงต้นได้คะแนนในเซลล์ secretoryรากหมวก (a) ในขณะที่พวกเขาน้อยมากในการแบ่งเซลล์ meristem รากทั้งโน้ตเนื้อแน่นสถานกลางเอนแอลฟาทำเครื่องหมายดาว (b) ในแปลงของ A. thaliana(c,d), stably ชื่อ FYVEendosomes อยู่มากมายในเซลล์ทั้งหมด เท่าใดสถานการณ์ในการมากใหญ่ราก ofM truncatula บางเซลล์จะอธิบายการใช้เส้นสีขาว ตำแหน่งของแอลฟาบางอยู่ระบุดาว บาร์: a – c ¼50mm d¼25mmB. Voigt et al. / ยุโรปสมุดของชีววิทยาเซลล์ 84 (2005) 609-621 612พวกเขาอยู่ตามแนวเส้นขนรากรวมทั้งการโซนแนะนำเวสิเคิลริช และออร์แกเนลล์ที่มีพร่องของเส้นขนรากกิน 3c) เมื่อเจริญเติบโตของรากผมได้หยุด GFP FYVEสะสมในโครงสร้างขนาดใหญ่และขนาดเล็ก endosomesไม่เคยตรวจพบในคำแนะนำรากผม (Fig. 3d)บางครั้ง เส้นขนรากสมบูรณ์ปลูกพบเพียงไม่กี่ผล endosomal ขนาดใหญ่โดยไม่ต้องมีต้องแปล (Fig. 3e ภาพยนต์ 3 และ 4)เพื่อยืนยันว่า รูปนี้ไม่จำกัด legumeราก เราตรวจสอบการกระจายของ GFP FYVEช่องใน stably transformedA thaliana ในทำนองเดียวกัน เช่นใน Medicago แสดงให้เห็นเส้นขน Arabidopsisrootendosomes FYVE ป้ายขนาดเล็กภายใน outgrowingbulges (ไม่แสดง) และสะสมอุดมสมบูรณ์เหล่านี้ภายใน 30 มม.แรกของการเจริญเติบโตรากผม apices(Fig. 4a ภาพยนตร์ 5) เติบโตเส้นขนจัดแสดงมากมายendosomes จากคำแนะนำถึง 30 มม.ลงรากผมจำพวก หดแต่จากคำแนะนำในเส้นขนเป็นผู้ใหญ่เมื่อเจริญเติบโตได้หยุดลง (Fig. 4b) อย่างไรก็ตาม ไม่เหมือนสถานการณ์ Medicago ชื่อ FYVE endosomes ได้แบบฟอร์มไม่ขยายโครงสร้างในรากเส้นขนที่ผู้ใหญ่ของArabidopsis การ ค่อนข้าง endosomes เป็นเพียงหน่อย ๆจัด polarly และย้ายไปยังคำแนะนำผมในที่สุด พวกเขาหยุดความเคลื่อนไหวของพวกเขาอย่างสมบูรณ์ และเกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิดกับเคล็ดลับมากของเส้นขนราก jasplakinolidetreated (ภาพยนตร์ 10 และ 11)
การแปล กรุณารอสักครู่..
Motile F-actin patches in root hair tips
Both the tip localization as well as the highly dynamic
motility of the GFP-FYVE- and YFP-RabF2a-labeled
endosomes suggested a role of the actin cytoskeleton in
the subcellular distribution of these endosomal compartments within growing root hair cells. Because an
intact actin cytoskeleton is also required for expansion
of root hair cells (Balusˇka et al., 2000; Balusˇka and
Volkmann, 2002;Gilliland et al., 2002;Jiang et al., 1997;
Miller et al., 1999; Ringli et al., 2002; Sˇamaj et al., 2002;
Vantard and Blanchoin, 2002), we wanted to understand
the potential link between actin-based motility and
subcellular distribution of the GFP-FYVE- and Ara6/
YFP-RabF2a-labeled endosomes and cell expansion in
root hair cells. Interestingly, this motility did not appear
to be completely random, based on the observed
presence of these compartments at the tips of root
hairs. In vivo analysis of root hairs, transformed with
the GFP-FABD2 construct visualizing F-actin (actinbinding domain 2 of fimbrin, Voigt et al., 2005),
revealed mobile F-actin patches (Fig. 5a and c). The
rate of tip growth and cell morphology did not show any
obvious differences to wild-type root hairs (data not
shown).
The F-actin patches resembled closely the abovedescribed endosomes with respect to speed, locations
and directions of movements. Generally, in the tips
of growing root hairs ofM. truncatulaas well as of
A. thaliana, we could detect actin patches and very
dynamic short actin filaments (Fig. 5a and c). However,
non-growing root hairs showed prominent actin bundles, which protruded up to the extreme tip (Fig. 5b
and d), while enlarged actin patches were still present
but less motile (Movies 8 and 9).
Treatment of root hairs with 1mM jasplakinolide
resulted in the formation of thick actin structures
composed of presumably aberrantly bundled F-actin,
which were formed at or near the root hair tip
(Fig. 5e–h). In movies, it is obvious that these structures
ARTICLE IN PRESS
Fig. 1.Transient co-expression of endosomal markers Ara6-GFP (a) with DsRed-FYVE (b) in onion epidermal bulb scale
cells. Simultaneous two-channel confocal imaging revealed
that these two fusion proteins co-localize in several smaller
compartments while a few larger FYVE-labeled compartments
are not positive for Ara6 (c). Transient co-expression of eYFPRabF2a (d) and DsRed-FYVE (e) in epidermal bulb scale cells
showed a complete co-localization of both markers (f). To
confirm the endosomal nature of the FYVE-labeled compartments, we applied endocytic tracer FM4-64 on transgenicM.
truncatula roots expressing the double GFP-FYVE construct.
After 5 min of exposure to FM4-64, FYVE-labeled endosomes
(g) were enriched also with FM4-64 (h), as evidenced also by
the two-channel image (i). Yellow arrowheads indicate colocalization between Ara6 and FYVE (a–c), as well as between
FM4-64 and FYVE (i). Bars¼10mm.
Fig. 2.In stably transformed roots ofM. truncatula, FYVElabeled endosomes were abundant in all cells. The most
prominent early endosomes were scored in secretory cells of
the root cap (a) while they were less abundant in dividing
cortical cells of the root meristem localizing preferentially
around centrally positioned nuclei marked with stars (b). In
stably transformed roots of A. thaliana(c,d), FYVE-labeled
endosomes were abundant in all cells, closely resembling the
situation in the much larger roots ofM. truncatula. Some cells
are outlined using white lines, positions of some nuclei are
indicated with stars. Bars: a–c ¼50mm; d¼25mm.
B. Voigt et al. / European Journal of Cell Biology 84 (2005) 609–621 612
they were present along the root hairs including the
vesicle-rich and organelle-depleted tip zone of root hairs
(Fig. 3c). When root hair growth ceased, GFP-FYVE
accumulated on larger structures and small endosomes
were never detected at the root hair tip (Fig. 3d).
Occasionally, fully grown root hairs showed only a few
large endosomal aggregates without any preferential
localization (Fig. 3e; Movies 3 and 4).
To confirm that this pattern is not restricted to legume
roots, we examined the distribution of GFP-FYVE
compartments in stably transformedA. thaliana. Similarly like in Medicago, Arabidopsisroot hairs showed
small FYVE-labeled endosomes within outgrowing
bulges (not shown) and these accumulated abundantly
within the first 30mm of growing root hair apices
(Fig. 4a; Movie 5). Growing hairs exhibited abundant
endosomes from the tip up to 30mm downward the root
hair shank, but retracted from the tips in mature hairs,
once growth had ceased (Fig. 4b). However, unlike the
situation in Medicago, FYVE-labeled endosomes did
not form enlarged structures in mature root hairs of
Arabidopsis. Rather, endosomes became just a little bit
are polarly organized and move towards the hair tip.
Finally, they stopped their movements completely and
associated tightly with the very tips of jasplakinolidetreated root hairs (Movies 10 and 11).
Both the tip localization as well as the highly dynamic
motility of the GFP-FYVE- and YFP-RabF2a-labeled
endosomes suggested a role of the actin cytoskeleton in
the subcellular distribution of these endosomal compartments within growing root hair cells. Because an
intact actin cytoskeleton is also required for expansion
of root hair cells (Balusˇka et al., 2000; Balusˇka and
Volkmann, 2002;Gilliland et al., 2002;Jiang et al., 1997;
Miller et al., 1999; Ringli et al., 2002; Sˇamaj et al., 2002;
Vantard and Blanchoin, 2002), we wanted to understand
the potential link between actin-based motility and
subcellular distribution of the GFP-FYVE- and Ara6/
YFP-RabF2a-labeled endosomes and cell expansion in
root hair cells. Interestingly, this motility did not appear
to be completely random, based on the observed
presence of these compartments at the tips of root
hairs. In vivo analysis of root hairs, transformed with
the GFP-FABD2 construct visualizing F-actin (actinbinding domain 2 of fimbrin, Voigt et al., 2005),
revealed mobile F-actin patches (Fig. 5a and c). The
rate of tip growth and cell morphology did not show any
obvious differences to wild-type root hairs (data not
shown).
The F-actin patches resembled closely the abovedescribed endosomes with respect to speed, locations
and directions of movements. Generally, in the tips
of growing root hairs ofM. truncatulaas well as of
A. thaliana, we could detect actin patches and very
dynamic short actin filaments (Fig. 5a and c). However,
non-growing root hairs showed prominent actin bundles, which protruded up to the extreme tip (Fig. 5b
and d), while enlarged actin patches were still present
but less motile (Movies 8 and 9).
Treatment of root hairs with 1mM jasplakinolide
resulted in the formation of thick actin structures
composed of presumably aberrantly bundled F-actin,
which were formed at or near the root hair tip
(Fig. 5e–h). In movies, it is obvious that these structures
ARTICLE IN PRESS
Fig. 1.Transient co-expression of endosomal markers Ara6-GFP (a) with DsRed-FYVE (b) in onion epidermal bulb scale
cells. Simultaneous two-channel confocal imaging revealed
that these two fusion proteins co-localize in several smaller
compartments while a few larger FYVE-labeled compartments
are not positive for Ara6 (c). Transient co-expression of eYFPRabF2a (d) and DsRed-FYVE (e) in epidermal bulb scale cells
showed a complete co-localization of both markers (f). To
confirm the endosomal nature of the FYVE-labeled compartments, we applied endocytic tracer FM4-64 on transgenicM.
truncatula roots expressing the double GFP-FYVE construct.
After 5 min of exposure to FM4-64, FYVE-labeled endosomes
(g) were enriched also with FM4-64 (h), as evidenced also by
the two-channel image (i). Yellow arrowheads indicate colocalization between Ara6 and FYVE (a–c), as well as between
FM4-64 and FYVE (i). Bars¼10mm.
Fig. 2.In stably transformed roots ofM. truncatula, FYVElabeled endosomes were abundant in all cells. The most
prominent early endosomes were scored in secretory cells of
the root cap (a) while they were less abundant in dividing
cortical cells of the root meristem localizing preferentially
around centrally positioned nuclei marked with stars (b). In
stably transformed roots of A. thaliana(c,d), FYVE-labeled
endosomes were abundant in all cells, closely resembling the
situation in the much larger roots ofM. truncatula. Some cells
are outlined using white lines, positions of some nuclei are
indicated with stars. Bars: a–c ¼50mm; d¼25mm.
B. Voigt et al. / European Journal of Cell Biology 84 (2005) 609–621 612
they were present along the root hairs including the
vesicle-rich and organelle-depleted tip zone of root hairs
(Fig. 3c). When root hair growth ceased, GFP-FYVE
accumulated on larger structures and small endosomes
were never detected at the root hair tip (Fig. 3d).
Occasionally, fully grown root hairs showed only a few
large endosomal aggregates without any preferential
localization (Fig. 3e; Movies 3 and 4).
To confirm that this pattern is not restricted to legume
roots, we examined the distribution of GFP-FYVE
compartments in stably transformedA. thaliana. Similarly like in Medicago, Arabidopsisroot hairs showed
small FYVE-labeled endosomes within outgrowing
bulges (not shown) and these accumulated abundantly
within the first 30mm of growing root hair apices
(Fig. 4a; Movie 5). Growing hairs exhibited abundant
endosomes from the tip up to 30mm downward the root
hair shank, but retracted from the tips in mature hairs,
once growth had ceased (Fig. 4b). However, unlike the
situation in Medicago, FYVE-labeled endosomes did
not form enlarged structures in mature root hairs of
Arabidopsis. Rather, endosomes became just a little bit
are polarly organized and move towards the hair tip.
Finally, they stopped their movements completely and
associated tightly with the very tips of jasplakinolidetreated root hairs (Movies 10 and 11).
การแปล กรุณารอสักครู่..
มือถือ f-actin แพทช์ในเคล็ดลับรากผม
ทั้งปลายจำกัดรวมทั้งการเคลื่อนที่แบบไดนามิกสูงของ gfp-fyve
-
yfp-rabf2a-labeled endosomes ชี้ให้เห็นบทบาทของ actin
ขาดตอนในตําแหน่งภายในเซลล์กระจายช่อง endosomal เหล่านี้ภายในเซลล์ขนรากเติบโต . เพราะยังต้องการ
เหมือนเดิม actin ขาดตอนการ
เซลล์รากผม ( balus ˇ ka et al ., 2000 ; balus และˇ Ka
น โฟล์คแมนน์ , 2002 ; กิลีแลนด์ et al . , 2002 ; เจียง et al . , 1997 ;
มิลเลอร์ et al . , 1999 ; ringli et al . , 2002 ; S ˇ amaj et al . , 2002 ;
vantard และ blanchoin , 2002 ) , เราต้องการที่จะเข้าใจ
ลิงค์ที่อาจเกิดขึ้นระหว่างแอกตินตามตําแหน่งภายในเซลล์ของการกระจายการเคลื่อนที่และ
gfp-fyve - ara6 /
yfp-rabf2a-labeled endosomes และขยายเซลล์ใน
เซลล์รากผม น่าสนใจการเคลื่อนที่นี้ไม่ปรากฏ
จะสุ่มอย่างสมบูรณ์ ตามสังเกต
มีช่องเหล่านี้ที่ปลายราก
ขน ในการวิเคราะห์ชนิดของรากขนแปลง ด้วย
gfp-fabd2 สร้างการ f-actin ( actinbinding โดเมน 2 fimbrin วอยก์ต , et al . , 2005 ) ,
พบมือถือ f-actin แพทช์ ( รูปที่ 43 และ C )
อัตราการเจริญเติบโตของปลายและรูปร่างของเซลล์ไม่แสดง
ความแตกต่างที่ชัดเจนของขนราก ( ข้อมูลไม่แสดง
) f-actin เป็นหย่อม ๆคล้ายอย่างใกล้ชิด endosomes abovedescribed ตามความเร็วที่ตั้ง
และทิศทางของการเคลื่อนไหว โดยทั่วไปในเคล็ดลับ
ปลูกขนราก OFM . truncatulaas เช่นเดียวกับของ
. thaliana เราสามารถตรวจหาแอคตินแพทช์และแบบไดนามิกมาก
เครื่องปรับสั้น ( รูปที่ 43 และ C ) อย่างไรก็ตาม
ไม่ขึ้นขนรากมีการรวมกลุ่ม actin ที่โดดเด่นซึ่งโดยมีถึงปลายรุนแรง ( มะเดื่อ 5B
และ D ) , ในขณะที่การขยาย actin แพทช์ยังเสนอ
แต่เคลื่อนที่น้อย ( ภาพยนตร์ 8 และ 9 ) .
รักษารากผมกับ 1mm jasplakinolide
ส่งผลให้เกิดการก่อตัวของโครงสร้างโปรตีนในกล้ามเนื้อหนา
aberrantly ประกอบด้วย สันนิษฐานว่า รวม f-actin
, ซึ่งถูกสร้างขึ้นหรือใกล้รากผมปลาย
( ฟิคนกมินิ ( H ) ในหนัง มันชัดเจนว่าโครงสร้างเหล่านี้ในบทความ
กดรูปที่ 1 . แสดง Co ชั่วคราวของ endosomal เครื่องหมาย ara6 GFP ( ) กับ dsred fyve ( B ) ในหอมตรงหลอดไฟขนาด
เซลล์ พร้อมกันสองช่องด้วยภาพเปิดเผย
สองเหล่านี้ฟิวชั่นโปรตีน Co จำกัด ในช่องเล็ก
ในขณะที่หลายขนาดใหญ่ไม่กี่ fyve ติดป้ายช่อง
ไม่บวกสำหรับ ara6 ( C )การแสดงออก Co ชั่วคราวของ eyfprabf2a ( D ) และ dsred fyve ( E ) ในระดับเซลล์พบว่าหลอดไฟตรง
จำกัด Co ที่สมบูรณ์ของทั้งสองเครื่องหมาย ( F )
ยืนยันธรรมชาติ endosomal ของ fyve ติดป้ายช่องที่เราใช้ endocytic Tracer fm4-64 บน transgenicm .
ราก truncatula แสดง gfp-fyve คู่สร้าง
หลังจาก 5 นาทีของการ fm4-64 fyve endosomes
, ป้าย( กรัม ) อุดมด้วย fm4-64 ( H ) เป็น evidenced โดย
2 ช่องภาพ ( ฉัน ) หัวลูกศรสีเหลืองแสดง colocalization และระหว่าง ara6 fyve ( ( C ) , รวมทั้งระหว่าง
fm4-64 fyve ( และฉัน ) บาร์¼ 10mm .
รูปที่ 2 . ในแปลงอย่างถาวร ราก OFM . truncatula fyvelabeled , endosomes มีดาษดื่นในเซลล์ ที่โดดเด่นที่สุด
endosomes ก่อนถูกยิงในเซลล์หลั่ง
หมวกราก ( ) ขณะที่พวกเขามากน้อยในการแบ่งเซลล์ของเนื้อเยื่อเจริญ
-
รอบรากจำกัด preferentially ส่วนกลางวางนิวเคลียสที่มีเครื่องหมายดาว ( B ) ใน
เปลี่ยนอย่างถาวร รากของ . thaliana ( C , D ) , fyve ป้าย
endosomes มีดาษดื่นในเซลล์ทั้งหมดอย่างใกล้ชิดคล้าย
สถานการณ์ในรากมีขนาดใหญ่มาก OFM . truncatula . บางเซลล์
มีอธิบายไว้โดยใช้เส้นสีขาวตำแหน่งของนิวเคลียสจะ
ระบุกับดาว บาร์ : –ซี¼ 50mm ; D ¼ 25mm .
b วอยก์ต et al . / วารสารยุโรปเซลล์ชีววิทยา 84 ( 2005 ) 609 – 621 612
ก็อยู่ตามขนรากแขนงรวมทั้ง
รวยและออร์แกเนลล์หมดโซนปลายของขนราก
( รูปที่ 3 ) เมื่อการเจริญเติบโตของรากผมหยุด gfp-fyve
สะสมในโครงสร้างขนาดใหญ่ และขนาดเล็ก endosomes
ไม่เคยถูกตรวจพบที่รากขนปลาย ( ภาพ 3 มิติ ) .
เป็นครั้งคราว โตเต็มที่ขนราก พบ เพียง ไม่ กี่ ขนาดใหญ่กว่า ไม่มีสิทธิพิเศษ endosomal
จำกัด ( รูปที่ 3E ; ภาพยนตร์ 3 และ 4 ) .
ยืนยันว่ารูปแบบนี้ไม่จํากัด
รากถั่ว เราตรวจสอบการกระจายของ gfp-fyve
ช่องใน transformeda อย่างถาวร . thaliana . เหมือนใน MEDICAGO ในทํานองเดียวกัน ,arabidopsisroot ขนให้เล็ก fyve ป้าย endosomes ภายใน outgrowing
bulges ( ไม่แสดง ) และเหล่านี้สะสมเยอะแยะ
ภายใน 30mm แรกของการเจริญเติบโต apices รากผม
( รูปที่ 4a ; ภาพยนตร์ 5 ) เจริญเติบโตมี endosomes มากมาย
จากปลายถึง 30mm ลงราก
ผมแข้ง แต่หดจากเคล็ดลับในผู้ใหญ่ขน
เมื่อเจริญเติบโตได้หยุด ( ภาพ 4B ) แต่แตกต่าง
สถานการณ์ใน MEDICAGO fyve , ป้าย endosomes ทำ
ฟอร์ม ขยายโครงสร้างในผู้ใหญ่ขนรากของ
Arabidopsis . แต่ endosomes เป็นเพียงเล็กน้อยจะ polarly
จัดและย้ายไปทางปลายเส้นผม .
ในที่สุดพวกเขาก็หยุดการเคลื่อนไหวของพวกเขาอย่างสมบูรณ์และ
เกี่ยวข้องแน่นด้วยเคล็ดลับของ jasplakinolidetreated ขนราก ( ภาพยนตร์ที่ 10 และ 11 )
ทั้งปลายจำกัดรวมทั้งการเคลื่อนที่แบบไดนามิกสูงของ gfp-fyve
-
yfp-rabf2a-labeled endosomes ชี้ให้เห็นบทบาทของ actin
ขาดตอนในตําแหน่งภายในเซลล์กระจายช่อง endosomal เหล่านี้ภายในเซลล์ขนรากเติบโต . เพราะยังต้องการ
เหมือนเดิม actin ขาดตอนการ
เซลล์รากผม ( balus ˇ ka et al ., 2000 ; balus และˇ Ka
น โฟล์คแมนน์ , 2002 ; กิลีแลนด์ et al . , 2002 ; เจียง et al . , 1997 ;
มิลเลอร์ et al . , 1999 ; ringli et al . , 2002 ; S ˇ amaj et al . , 2002 ;
vantard และ blanchoin , 2002 ) , เราต้องการที่จะเข้าใจ
ลิงค์ที่อาจเกิดขึ้นระหว่างแอกตินตามตําแหน่งภายในเซลล์ของการกระจายการเคลื่อนที่และ
gfp-fyve - ara6 /
yfp-rabf2a-labeled endosomes และขยายเซลล์ใน
เซลล์รากผม น่าสนใจการเคลื่อนที่นี้ไม่ปรากฏ
จะสุ่มอย่างสมบูรณ์ ตามสังเกต
มีช่องเหล่านี้ที่ปลายราก
ขน ในการวิเคราะห์ชนิดของรากขนแปลง ด้วย
gfp-fabd2 สร้างการ f-actin ( actinbinding โดเมน 2 fimbrin วอยก์ต , et al . , 2005 ) ,
พบมือถือ f-actin แพทช์ ( รูปที่ 43 และ C )
อัตราการเจริญเติบโตของปลายและรูปร่างของเซลล์ไม่แสดง
ความแตกต่างที่ชัดเจนของขนราก ( ข้อมูลไม่แสดง
) f-actin เป็นหย่อม ๆคล้ายอย่างใกล้ชิด endosomes abovedescribed ตามความเร็วที่ตั้ง
และทิศทางของการเคลื่อนไหว โดยทั่วไปในเคล็ดลับ
ปลูกขนราก OFM . truncatulaas เช่นเดียวกับของ
. thaliana เราสามารถตรวจหาแอคตินแพทช์และแบบไดนามิกมาก
เครื่องปรับสั้น ( รูปที่ 43 และ C ) อย่างไรก็ตาม
ไม่ขึ้นขนรากมีการรวมกลุ่ม actin ที่โดดเด่นซึ่งโดยมีถึงปลายรุนแรง ( มะเดื่อ 5B
และ D ) , ในขณะที่การขยาย actin แพทช์ยังเสนอ
แต่เคลื่อนที่น้อย ( ภาพยนตร์ 8 และ 9 ) .
รักษารากผมกับ 1mm jasplakinolide
ส่งผลให้เกิดการก่อตัวของโครงสร้างโปรตีนในกล้ามเนื้อหนา
aberrantly ประกอบด้วย สันนิษฐานว่า รวม f-actin
, ซึ่งถูกสร้างขึ้นหรือใกล้รากผมปลาย
( ฟิคนกมินิ ( H ) ในหนัง มันชัดเจนว่าโครงสร้างเหล่านี้ในบทความ
กดรูปที่ 1 . แสดง Co ชั่วคราวของ endosomal เครื่องหมาย ara6 GFP ( ) กับ dsred fyve ( B ) ในหอมตรงหลอดไฟขนาด
เซลล์ พร้อมกันสองช่องด้วยภาพเปิดเผย
สองเหล่านี้ฟิวชั่นโปรตีน Co จำกัด ในช่องเล็ก
ในขณะที่หลายขนาดใหญ่ไม่กี่ fyve ติดป้ายช่อง
ไม่บวกสำหรับ ara6 ( C )การแสดงออก Co ชั่วคราวของ eyfprabf2a ( D ) และ dsred fyve ( E ) ในระดับเซลล์พบว่าหลอดไฟตรง
จำกัด Co ที่สมบูรณ์ของทั้งสองเครื่องหมาย ( F )
ยืนยันธรรมชาติ endosomal ของ fyve ติดป้ายช่องที่เราใช้ endocytic Tracer fm4-64 บน transgenicm .
ราก truncatula แสดง gfp-fyve คู่สร้าง
หลังจาก 5 นาทีของการ fm4-64 fyve endosomes
, ป้าย( กรัม ) อุดมด้วย fm4-64 ( H ) เป็น evidenced โดย
2 ช่องภาพ ( ฉัน ) หัวลูกศรสีเหลืองแสดง colocalization และระหว่าง ara6 fyve ( ( C ) , รวมทั้งระหว่าง
fm4-64 fyve ( และฉัน ) บาร์¼ 10mm .
รูปที่ 2 . ในแปลงอย่างถาวร ราก OFM . truncatula fyvelabeled , endosomes มีดาษดื่นในเซลล์ ที่โดดเด่นที่สุด
endosomes ก่อนถูกยิงในเซลล์หลั่ง
หมวกราก ( ) ขณะที่พวกเขามากน้อยในการแบ่งเซลล์ของเนื้อเยื่อเจริญ
-
รอบรากจำกัด preferentially ส่วนกลางวางนิวเคลียสที่มีเครื่องหมายดาว ( B ) ใน
เปลี่ยนอย่างถาวร รากของ . thaliana ( C , D ) , fyve ป้าย
endosomes มีดาษดื่นในเซลล์ทั้งหมดอย่างใกล้ชิดคล้าย
สถานการณ์ในรากมีขนาดใหญ่มาก OFM . truncatula . บางเซลล์
มีอธิบายไว้โดยใช้เส้นสีขาวตำแหน่งของนิวเคลียสจะ
ระบุกับดาว บาร์ : –ซี¼ 50mm ; D ¼ 25mm .
b วอยก์ต et al . / วารสารยุโรปเซลล์ชีววิทยา 84 ( 2005 ) 609 – 621 612
ก็อยู่ตามขนรากแขนงรวมทั้ง
รวยและออร์แกเนลล์หมดโซนปลายของขนราก
( รูปที่ 3 ) เมื่อการเจริญเติบโตของรากผมหยุด gfp-fyve
สะสมในโครงสร้างขนาดใหญ่ และขนาดเล็ก endosomes
ไม่เคยถูกตรวจพบที่รากขนปลาย ( ภาพ 3 มิติ ) .
เป็นครั้งคราว โตเต็มที่ขนราก พบ เพียง ไม่ กี่ ขนาดใหญ่กว่า ไม่มีสิทธิพิเศษ endosomal
จำกัด ( รูปที่ 3E ; ภาพยนตร์ 3 และ 4 ) .
ยืนยันว่ารูปแบบนี้ไม่จํากัด
รากถั่ว เราตรวจสอบการกระจายของ gfp-fyve
ช่องใน transformeda อย่างถาวร . thaliana . เหมือนใน MEDICAGO ในทํานองเดียวกัน ,arabidopsisroot ขนให้เล็ก fyve ป้าย endosomes ภายใน outgrowing
bulges ( ไม่แสดง ) และเหล่านี้สะสมเยอะแยะ
ภายใน 30mm แรกของการเจริญเติบโต apices รากผม
( รูปที่ 4a ; ภาพยนตร์ 5 ) เจริญเติบโตมี endosomes มากมาย
จากปลายถึง 30mm ลงราก
ผมแข้ง แต่หดจากเคล็ดลับในผู้ใหญ่ขน
เมื่อเจริญเติบโตได้หยุด ( ภาพ 4B ) แต่แตกต่าง
สถานการณ์ใน MEDICAGO fyve , ป้าย endosomes ทำ
ฟอร์ม ขยายโครงสร้างในผู้ใหญ่ขนรากของ
Arabidopsis . แต่ endosomes เป็นเพียงเล็กน้อยจะ polarly
จัดและย้ายไปทางปลายเส้นผม .
ในที่สุดพวกเขาก็หยุดการเคลื่อนไหวของพวกเขาอย่างสมบูรณ์และ
เกี่ยวข้องแน่นด้วยเคล็ดลับของ jasplakinolidetreated ขนราก ( ภาพยนตร์ที่ 10 และ 11 )
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- breathe
- typically described as monstrous , lizar
- และสัังเกตว่าบกพร่องด้านไหนอีกบ้าง
- มิเช่นนั้นแล้วทั่วโลกอาจจะหันไปใช้สกุลเง
- Army of two
- อาบน้ำเสร็จแล้ว
- คุณหนูก็เดินออกไป
- Lower cost
- 乘机登记
- when i receive money i buy new phone
- การบันทึกบัญชี
- never seen a man like me
- If the United States also want the curre
- แต่มันไม่ใช่เรื่องง่ายที่จะทำ
- ฉันขอโทษที่ไม่บอกคุณ ฉันอยากแก้ปัญหาด้วย
- ฉันเคยทำให้คุณไปแล้ว.ครั้งนี้ฉันขอให้คุณ
- This is a very short description about m
- 问讯
- ครอบครัวเล็ก
- นี้ใกล้จะถึงวันขึ้นปีใหม่อีกเเล้ว เวลามั
- ดังนั้น สายลับจะสนิทกับแม่ทัพมากกว่าทหาร
- hello everyone. first of all,let me than
- Euro also accepted
- Tamam dersten sonra gidiyoruz.
