From the perspective of biogeochemical prospecting (i.e. concerning
ppb concentrations of Au in plant tissues), Kovalevskii and Kovalevskaya [5] classified plant species and organs into four
groups:
(i) Non barrier bio-objects which give quantitative information on
the Au concentration in the growth medium.
(ii) Semi-non barrier bio-objects with high concentration limits of
3–300 times the Au concentration in the growth medium.
(iii) Barriers having concentration limits of 3–30 giving only qualitative
information on the concentration of Au in the growth
medium.
(iv) Background barriers which provide neither quantitative nor
qualitative information on Au concentration in the growth
medium.
Kovalevskii and Kovalevskaya [5] recommended the inner, middle
and outer bark of trees as non-barriers and confirmed them
as the main organs of trees which can reflect deeply buried Au
deposits based on a study of 33 separate species. Kovalevskii and
Kovalevskaya’s barrier concept states that every plant and plant
organ offers varying degrees of resistance to metal uptake. Thus,
when prospecting for an element, the focus of analysis has to be on
specific plants and plant organs.
More recently, researchers have reported inordinately large
concentrations (e.g. ppm to %-wt) of metals in some plants [12].
To this end, Baker and Brooks [13] classified plants into three categories:
(i) excluders; plants which do not take up metals, (ii)
hyperaccumulators; those which take up abnormally large quantities
of metal and (iii) indicators; those which take up metal
in proportion to its quantity in the soil. Hyperaccumulators of time. This information is necessary to advance the development of
phytomining and phytoremediation processes for Au.
In light of the above, the objectives of this work were to (i) evaluate
the limits of uptake of Au in two known metallophytes, BJ and
MS using hydroponic growth experiments (to exclude the complicating
factors introduced when a soil matrix is present), (ii) assess
the effect of critical parameters on Au uptake and (iii) determine
the localisation of accumulated Au in the various plant organs.
BJ and MS seeds were surface sterilized in a solution of 1% hydrogen
peroxide for 15 min to avoid fungal contamination, washed
with deionised water and then germinated on wet paper towels
for 48 h in an incubator (without illumination) at 25 ◦C. Seedlings
were transplanted into glass jars containing 250 mL Hoaglands
media (Hoaglands Basal No 2, Sigma–Aldrich). All experiments
were performed in the controlled environment of a plant growth
chamber (Contherm Scientific Ltd) with a 12-h/12-h light/dark
cycle (25 ◦C/18 ◦C). Seedlings were harvested between two and
three weeks following germination and transferred to Petri plates
containing 40 ml of aqueous solutions of KAuCl4 (Sigma–Aldrich,
99.99%). As summarised in Table 1, the influence of Au concentration
(100, 1000, 10,000 ppm), exposure time (24, 48 or 72 h),
solution pH (2, 3, 4, 5 and 6) and plant organ (roots and shoots)
was investigated during the course of experiments. Solution pH
was adjusted by the addition of 0.1 M NaOH or 1 M HCl. The effect
of longer exposure times (24, 48, 72, 120, 360 h) on Au uptake was
also studied at lower Au concentrations (5, 10, 20, 40 and 80 ppm).
After exposure, plants were harvested, washed with demineralised
water, dried for 48 h at 105 ◦C, weighed and ashed in the
presence of air at 500 ◦C for 4 h. The ash was then digested in
a mixture of 8 ml of concentrated HCl and HNO3 acids using
microwave-assisted digestion at 105 ◦C for 15 min (Milestone
ETHOS SEL). The microwave digestion program used for metal
digestion is reported in Table 2. The sample volume was raised
to 10 mL with the addition of 1 M HCl prior to analysis by ICPOES.
Calibration standards were prepared from a known Au ICP
standard (1000 mg L−1). All calibration curves had a correlation
coefficient of >0.99. Amongst the analytical techniques available to
measure metal concentration in digested plant samples, ICP-OES
and FAAS are most common [21]. In this work ICP-OES was chosen
because of its greater sensitivity and higher detection limits (
จากมุมมองของแร่ biogeochemical (เช่นเกี่ยวกับppb ความเข้มข้นของ Au ในเนื้อเยื่อพืช), Kovalevskii และ Kovalevskaya [5] จัดพืชพันธุ์และอวัยวะเป็นสี่กลุ่ม:(i) อุปสรรคไม่ใช่ไบโอวัตถุที่ให้ข้อมูลเชิงปริมาณความเข้มข้น Au ในการเจริญเติบโต(ii) วัตถุชีวภาพอุปสรรคกึ่งไม่ มีขีดจำกัดความเข้มข้นสูงของ3 – 300 ครั้งอูความเข้มข้นในการเจริญเติบโต(iii) อุปสรรคมีความเข้มข้นจำกัด 3 – 30 ให้คุณภาพเท่านั้นข้อมูลความเข้มข้นของ Au ในการเจริญเติบโตสื่อ(iv) อุปสรรคพื้นหลังซึ่งมีทั้งเชิงปริมาณ และข้อมูลเชิงคุณภาพเกี่ยวกับอูความเข้มข้นในการเจริญเติบโตสื่อแนะนำตรงกลางภายใน Kovalevskii และ Kovalevskaya [5]และเปลือกนอกของต้นไม้เป็นอุปสรรคไม่ และยืนยันได้เป็นอวัยวะหลักของต้นไม้ซึ่งสามารถสะท้อนลึกฝัง Auเงินฝากตามการศึกษาพันธุ์แยก 33 Kovalevskii และแนวคิดของ Kovalevskaya อุปสรรคระบุว่า ทุกโรงงานและโรงงานอวัยวะมีองศาที่แตกต่างของความต้านทานการดูดซับโลหะ ดังนั้นเมื่อแร่องค์ประกอบ โฟกัสการวิเคราะห์มีอยู่บนเฉพาะพืชและอวัยวะพืชเมื่อเร็ว ๆ นี้ นักวิจัยได้รายงานขนาดใหญ่สุดเหวี่ยงความเข้มข้น (เช่น ppm ไป% wt) ของโลหะในบางพืช [12]เพื่อการนี้ เบเกอร์และบรู๊คส์ [13] ลับพืชออกเป็นสามประเภท:(i) excluders พืชที่ไม่ใช้โลหะ, (ii)hyperaccumulators ผู้ที่ใช้จำนวนมากอย่างผิดปกติของโลหะและ (iii) ตัวบ่งชี้ ผู้ที่ใช้โลหะสัดของปริมาณในดิน Hyperaccumulators เวลา ข้อมูลนี้จำเป็นต้องเลื่อนการพัฒนากระบวนการ phytomining และ phytoremediation ใน Auเมื่อข้าง วัตถุประสงค์ของงานนี้ถูกต้อง (i) ประเมินขีดจำกัดของการดูดซับของ Au ในสองชื่อดัง metallophytes, BJ และMS ที่ใช้ทดลองสีเจริญเติบโต (การแยกการ complicatingปัจจัยเมื่อเมทริกซ์ดินอยู่), (ii) ประเมินตรวจสอบผลของพารามิเตอร์ที่สำคัญในการดูดซับของ Au และ (iii)สังคมธุรกิจของ Au ที่สะสมในอวัยวะพืชต่าง ๆBJ และ MS เมล็ดมีผิว sterilized ในโซลูชันของไฮโดรเจน 1%เพอร์ออกไซด์สำหรับ 15 นาทีเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนเชื้อรา ล้างกับ deionised น้ำ และเปลือกงอกแล้ว บนกระดาษเปียกผ้าเช็ดตัวสำหรับ h 48 ในการบ่มเพาะวิสาหกิจ (ไม่มีไฟส่องสว่าง) ที่ 25 ◦C กล้าไม้มี transplanted ลงในขวดแก้วที่ประกอบด้วย 250 มล Hoaglandsสื่อ (Hoaglands โรคทู ซิก-Aldrich) ทดลองทั้งหมดได้ดำเนินการในสภาพแวดล้อมการควบคุมการเจริญเติบโตของพืชหอการค้า (Contherm วิทยาศาสตร์ Ltd) กับดำ/ไฟที่ 12-h/12-hรอบ (25 ◦C/18 ◦C) กล้าไม้ได้เก็บเกี่ยวระหว่างสอง และสามสัปดาห์ต่อการงอก และการโอนย้ายไปจาน Petriประกอบด้วย 40 ml อควีโซลูชั่นของ KAuCl4 (ซิก-Aldrich99.99%) เป็น summarised ในตารางที่ 1 อิทธิพลของความเข้มข้นของ Au(100, 1000, 10000 ppm), ระยะเวลาการรับแสง (24, 48 หรือ 72 h),แก้ปัญหาค่า pH (2, 3, 4, 5 และ 6) และอวัยวะของพืช (รากและยอด)ถูกตรวจสอบในระหว่างการทดลอง แก้ปัญหาค่า pHถูกปรับปรุง โดยการเพิ่ม 0.1 M NaOH หรือ 1 M HCl ผลของแสงอีกครั้ง (24, 48, 72, 120, 360 h) ในอู ถูกดูดซับนอกจากนี้ยัง ศึกษาที่ต่ำกว่าอูความเข้มข้น (5, 10, 20, 40 และ 80 ppm)หลังจากการเปิดรับแสง พืชเก็บเกี่ยว ล้างด้วย demineralisedน้ำ แห้งสำหรับ h 48 ที่ 105 ◦C ชั่งน้ำหนัก และ ashed ในการสถานะของเครื่องที่ 500 ◦C สำหรับ 4 h เถ้าถูกย่อยแล้วในส่วนผสมของ 8 ml เข้มข้น HCl และ HNO3 กรดโดยใช้ไมโครเวฟช่วยย่อยอาหารที่ ◦C 105 สำหรับ 15 นาที (ไมล์สโตนปัด SEL) โปรแกรมย่อยอาหารไมโครเวฟใช้สำหรับโลหะย่อยอาหารรายงานในตารางที่ 2 ปริมาตรตัวอย่างขึ้นกับ mL 10 แห่ง 1 M HCl ก่อนวิเคราะห์โดย ICPOESปรับเทียบมาตรฐานถูกเตรียมจาก ICP Au รู้จักมาตรฐาน (1000 มิลลิกรัม L−1) เส้นโค้งเทียบทั้งหมดมีความสัมพันธ์สัมประสิทธิ์ของ > 0.99 ในบรรดาเทคนิคการวิเคราะห์ที่พร้อมใช้งานวัดความเข้มข้นโลหะในตัวอย่างพืชเจ่า วิจัยและ FAAS ส่วนใหญ่ทั่วไป [21] ในงานนี้ ได้รับการเลือกวิจัยเนื่องจาก มีความไวสูงความสูงตรวจสอบจำกัด (< 10ppb สำหรับ Au) ข้ามเงื่อนไขตรวจสอบ [22] แต่ละการทดลองได้เหมือนกับสองและทดลองทั้งหมดมี 3 ซ้ำครั้ง จากผลลัพธ์เหล่านี้ outliers ถูกเอาออกโดยใช้มาตรฐานอัลกอริทึมน้อยมัธยฐานของเหลี่ยม ตามคำนวณค่าเฉลี่ยและส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานของความเข้มข้นของ Auสำหรับการวิเคราะห์สัณฐาน และกายวิภาค โรงงานตัวอย่างถาวรได้ใน 2% glutaraldehyde ตามคายน้ำแอลกอฮอล์ฝังตัวอยู่ใน Spurrs เรซิน และเตาอบรักษาที่ 60 ◦C สำหรับ 24 ชม [23]ประมาณ 1 เมตรส่วนหนาถูกตัดใช้ microtome เป็น(ไล Microsystems) ส่วนที่สีกับ toluidine 0.2%สีน้ำเงิน ความร้อนคงที่ แล้วดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง (Nikon Sensicam)ในเบื้องต้น - PIXE วิเคราะห์มือส่วนต่าง ๆ ของราก และเกิดของ BJ และ MS ได้รับ เหล่านี้ถูกลดลงทันทีลงในไนโตรเจนเหลว ตาม ด้วยการอบแห้งสำหรับ 24 h. ตรึงแห้งแช่แข็ง
การแปล กรุณารอสักครู่..
จากมุมมองของแร่ biogeochemical (เช่นเกี่ยวกับ
ความเข้มข้นของ Au ppb ในเนื้อเยื่อพืช) Kovalevskii และ Kovalevskaya [5] พันธุ์พืชจัดและอวัยวะออกเป็นสี่
กลุ่มคือ
(i) อุปสรรคที่ไม่ใช่ชีวภาพวัตถุที่ให้ข้อมูลเชิงปริมาณเกี่ยวกับ
ความเข้มข้นใน Au สื่อการเจริญเติบโต.
(ii) อุปสรรคกึ่งไม่ใช่วัตถุชีวภาพที่มีความเข้มข้นสูงของ
3-300 ครั้ง Au เข้มข้นในสื่อการเจริญเติบโต.
(iii) ปัญหาและอุปสรรคที่มีความเข้มข้นของ 3-30 ให้เพียงคุณภาพ
ข้อมูลเกี่ยวกับความเข้มข้นของ Au ในการเจริญเติบโต
ปานกลาง.
(iv) อุปสรรคพื้นหลังที่ให้ทั้งเชิงปริมาณหรือ
ข้อมูลเชิงคุณภาพที่เข้มข้น Au ในการเจริญเติบโต
ปานกลาง.
Kovalevskii และ Kovalevskaya [5] แนะนำภายในกลาง
และเปลือกนอกของต้นไม้ที่เป็นอุปสรรคที่ไม่ได้รับการยืนยันและพวกเขา
เป็น อวัยวะหลักของต้นไม้ซึ่งสามารถสะท้อนให้เห็นถึงฝังลึก Au
เงินฝากขึ้นอยู่กับการศึกษาของ 33 สายพันธุ์ที่แยกจากกัน Kovalevskii และ
แนวคิดของอุปสรรค Kovalevskaya ระบุว่าทุกโรงงานและโรงงาน
อวัยวะมีองศาที่แตกต่างของความต้านทานต่อการดูดซับโลหะ ดังนั้น
เมื่อแร่ธาตุสำคัญของการวิเคราะห์จะต้องมีใน
พืชที่เฉพาะเจาะจงและอวัยวะพืช.
เมื่อเร็ว ๆ นี้นักวิจัยได้รายงานที่มีขนาดใหญ่สุดฤทธิ์
ความเข้มข้น (เช่น ppm เป็น -wt%) ของโลหะในพืชบางชนิด [12].
ในการนี้ ปลายเบเกอร์และบรูคส์ [13] พืชแบ่งออกเป็นสามประเภท:
(i) excluders; พืชที่ไม่ใช้โลหะ, (ii)
hyperaccumulators; ผู้ที่ใช้ปริมาณมากขึ้นอย่างผิดปกติ
ของโลหะและ (iii) ตัวชี้วัด; ผู้ที่ใช้เวลาถึงโลหะ
ในสัดส่วนกับปริมาณในดิน Hyperaccumulators ของเวลา ข้อมูลเหล่านี้เป็นสิ่งที่จำเป็นเพื่อความก้าวหน้าของการพัฒนาของ
phytomining และกระบวนการบำบัดสำหรับ Au.
ในแง่ของด้านบนวัตถุประสงค์ของงานนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อ (i) การประเมิน
ขอบเขตของการดูดซึมของ Au ในสอง metallophytes รู้จัก BJ และ
MS โดยใช้การเจริญเติบโตของไฮโดรโพนิ การทดลอง (ที่จะไม่รวมแทรกซ้อน
ปัจจัยแนะนำเมื่อเมทริกซ์ของดินที่เป็นปัจจุบัน), (ii) การประเมิน
ผลกระทบของค่าพารามิเตอร์ที่สำคัญในการดูด Au และ (iii) การกำหนด
ตำแหน่งของสะสม Au ในอวัยวะต่าง ๆ ของพืช.
BJ และเมล็ด MS มีพื้นผิว ผ่านการฆ่าเชื้อในการแก้ปัญหาของไฮโดรเจน 1%
เปอร์ออกไซด์เป็นเวลา 15 นาทีเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนของเชื้อราล้าง
ด้วยน้ำ deionised และงอกแล้วบนกระดาษเปียก
เป็นเวลา 48 ชั่วโมงในตู้อบ (โดยไม่ต้องส่องสว่าง) ที่อุณหภูมิ 25 ◦C ต้นกล้าที่
ได้รับการปลูกถ่ายลงในขวดแก้วที่มี 250 มิลลิลิตร Hoaglands
สื่อ (Hoaglands ฐานที่ 2, Sigma-Aldrich) การทดสอบทั้งหมด
ได้ดำเนินการในสภาพแวดล้อมที่ควบคุมการเจริญเติบโตของพืช
ในห้อง (Contherm วิทยาศาสตร์ จำกัด ) กับ 12 ชั่วโมง / 12 ชั่วโมงแสง / มืด
รอบ (25 ◦C / 18 ◦C) ต้นกล้าที่เก็บเกี่ยวระหว่างสองและ
สามสัปดาห์ต่อการงอกและโอนไปยังแผ่น Petri
มี 40 มิลลิลิตรของสารละลายของ KAuCl4 (Sigma-Aldrich,
99.99%) ขณะที่สรุปไว้ในตารางที่ 1 อิทธิพลของความเข้มข้น Au
(100, 1000, 10,000 ppm), เวลารับแสง (24, 48 หรือ 72 ชั่วโมง)
สารละลาย (2, 3, 4, 5 และ 6) และอวัยวะพืช (รากและ หน่อ)
ถูกตรวจสอบในช่วงของการทดลอง สารละลายที่
มีการปรับโดยการเติม 0.1 M NaOH หรือ 1 M HCl ผลกระทบ
ของการเปิดรับอีกต่อครั้ง (24, 48, 72, 120, 360 ต่อชั่วโมง) ในการดูด Au ถูก
ยังศึกษาในระดับความเข้มข้นที่ต่ำกว่า Au (5, 10, 20, 40 และ 80 ppm).
หลังจากได้รับพืชเก็บเกี่ยว, การล้างด้วย ปราศจากแร่ธาตุ
น้ำแห้งเป็นเวลา 48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 105 ◦Cชั่งน้ำหนักและ ashed ใน
การปรากฏตัวของอากาศที่ 500 ◦Cเป็นเวลา 4 ชั่วโมง เถ้าถูกย่อยแล้วใน
ส่วนผสมของ 8 มล. เข้มข้น HCl และกรด HNO3 ใช้
ไมโครเวฟการย่อยอาหารช่วยที่ 105 ◦Cเป็นเวลา 15 นาที (Milestone
ETHOS SEL) โปรแกรมการย่อยอาหารไมโครเวฟที่ใช้ในการโลหะ
การย่อยอาหารจะมีการรายงานในตารางที่ 2 ปริมาณตัวอย่างที่ถูกยกขึ้น
ถึง 10 มิลลิลิตรด้วยนอกเหนือจาก 1 M HCl ก่อนที่จะมีการวิเคราะห์โดย ICPOES.
มาตรฐานการสอบเทียบที่เตรียมจากที่รู้จักกัน Au ICP
มาตรฐาน (1000 mg L- 1) เส้นโค้งการสอบเทียบทั้งหมดมีความสัมพันธ์
ค่าสัมประสิทธิ์ของ> 0.99 ในบรรดาเทคนิคการวิเคราะห์ที่มีให้
วัดความเข้มข้นของโลหะในตัวอย่างพืชย่อย ICP-OES
และ FAAS จะพบมากที่สุด [21] ในงานนี้ ICP-OES ได้รับเลือก
เพราะความไวมากขึ้นและข้อ จำกัด ที่สูงกว่าการตรวจสอบ (<10
ppb สำหรับ Au) ข้ามเงื่อนไขการตรวจสอบ [22] แต่ละการทดลอง
มีสองซ้ำและการทดลองทั้งหมดถูกซ้ำสาม
ครั้ง จากผลเหล่านี้ผิดปกติถูกถอดออกโดยใช้มาตรฐาน
อย่างน้อยเฉลี่ยของสี่เหลี่ยมอัลกอริทึมตามด้วยการคำนวณ
ค่าเฉลี่ยและค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานของความเข้มข้น Au.
สำหรับการวิเคราะห์ลักษณะทางสัณฐานวิทยาและกายวิภาคตัวอย่างพืชที่
ได้รับการแก้ไขใน glutaraldehyde 2% ตามด้วยเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ การคายน้ำ
ที่ฝังอยู่ในเรซิน Spurrs แล้วหายเตาอบที่อุณหภูมิ 60 ◦Cเป็นเวลา 24 ชั่วโมง [23].
ประมาณ 1 เมตรส่วนหนาถูกตัดโดยใช้ไมโคร
(Leica Microsystems) ส่วนที่ถูกย้อมด้วย 0.2% toluidine
สีฟ้าความร้อนคงที่และดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง (Nikon Sensicam).
สำหรับส่วนมือ -PIXE การวิเคราะห์เบื้องต้นของรากและ
ลำต้นของ BJ และ MS ที่ได้รับ เหล่านี้ลดลงทันที
ลงในไนโตรเจนเหลวตามมาด้วยการอบแห้งแช่แข็งเป็นเวลา 24 ชั่วโมง แช่แข็งแห้ง
การแปล กรุณารอสักครู่..
จากมุมมองของการสำรวจชีวธรณีเคมี ( เช่นเกี่ยวกับ
ppb ปริมาณ AU ในเนื้อเยื่อพืช ) , kovalevskii kovalevskaya [ 5 ] และจำแนกชนิดพืชและอวัยวะออกเป็นสี่กลุ่ม :
( ผม ) ไม่กั้น ไบโอ วัตถุที่ให้ข้อมูลเชิงปริมาณเกี่ยวกับ
Au ความเข้มข้นในอาหารเลี้ยงเชื้อ .
( 2 ) กึ่งปลอดอุปสรรค ไบโอ วัตถุที่มีความเข้มข้นสูงของ
จำกัด3 – 300 ครั้ง หรือ สมาธิในอาหารเลี้ยงเชื้อ .
( 3 ) อุปสรรคมีความเข้มข้นของขีด จำกัด ของ 3 – 30 ให้เพียงข้อมูลเชิงคุณภาพ
ต่อความเข้มข้นของ AU ในอาหารเลี้ยงเชื้อ
.
( 4 ) อุปสรรคในพื้นหลังที่ให้ทั้งเชิงปริมาณและเชิงคุณภาพใน AU
ข้อมูลความเข้มข้นในอาหารเลี้ยงเชื้อ
และ kovalevskii kovalevskaya [ 5 ] แนะนำ ภายใน กลาง
และภายนอกเปลือกต้นไม้เป็นอุปสรรคไม่ และยืนยันว่า พวกเขา
เป็นอวัยวะหลักของต้นไม้ ซึ่งสามารถสะท้อนให้เห็นถึงฝังลึก AU
เงินฝากตามการศึกษา 33 สายพันธุ์ที่แยกต่างหาก kovalevskii และ
kovalevskaya แนวคิดอุปสรรค ระบุว่า ทุกโรงงานและโรงงาน
อวัยวะมีองศาที่แตกต่างของความต้านทานการโลหะ ดังนั้น
เมื่อหาแร่องค์ประกอบ โฟกัสของการวิเคราะห์มี
พืชที่เฉพาะเจาะจงและอวัยวะพืช
เมื่อเร็วๆ นี้ นักวิจัยได้รายงานปริมาณขนาดใหญ่
สุดฤทธิ์ ( เช่นส่วนในล้านส่วน ( WT ) ของโลหะในพืชบางชนิด [ 12 ] .
จบนี้ พืช เบเกอร์ และ บรู๊ค [ 13 ] แบ่งออกเป็นสามประเภท :
( i ) excluders ; พืชที่ไม่ใช้โลหะ ( 2 )
อัลบั้มประจำตัวละครในฮายาเตะ พ่อบ้านประจัญบาน ; ผู้ที่ใช้ในปริมาณมากผิดปกติ
ของโลหะ และ ( 3 ) ตัวบ่งชี้ผู้ที่ใช้โลหะ
สัดส่วนกับปริมาณของมันในดิน อัลบั้มประจำตัวละครในฮายาเตะ พ่อบ้านประจัญบาน ของเวลา ข้อมูลนี้เป็นสิ่งจำเป็นเพื่อความก้าวหน้าของการพัฒนาและกระบวนการ phytomining วัชพืช
อุ๊ ในแง่ของการข้างต้น วัตถุประสงค์ของงานนี้เพื่อ ( 1 ) ประเมินขอบเขตของการเริ่มต้นที่ AU
2 รู้จัก metallophytes BJ และ
,นางสาวโดยใช้การทดลองการเจริญเติบโต hydroponic ( ไม่รวมปัจจัยแทรกซ้อน
แนะนำเมื่อดินเมทริกซ์ปัจจุบัน ) , ( 2 ) ศึกษาผลของพารามิเตอร์ที่สำคัญ
Au และ ( 3 ) ศึกษาการสะสมของ AU
การแปลในอวัยวะต่างๆ ของพืช .
BJ และ MS เมล็ดฟอกฆ่าเชื้อด้วยสารละลาย 1 ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ %
15 นาทีเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนของเชื้อรา , ล้าง
กับ deionised น้ำแล้วงอกบนผ้าขนหนูกระดาษเปียก
48 ชั่วโมงในตู้อบ ( ไม่มีไฟ ) ที่ 25 ◦ C . ต้นกล้า
ถูกปลูกถ่ายไปยังขวดแก้ว บรรจุ 250 ml hoaglands
สื่อ ( hoaglands แรกเริ่มไม่มี 2 , Sigma –ดิช ) โดย
ถูกดำเนินการในสภาพแวดล้อมที่ควบคุมการเจริญเติบโตของพืช
( ห้อง contherm ทางวิทยาศาสตร์ LTD ) กับ 12-h / แสง / มืด
12-hวงจร ( 25 ◦ C / 18 ◦ C ) ต้นกล้าถูกเก็บเกี่ยวระหว่างสองและสามสัปดาห์ต่อไปนี้การงอกและ
โอนไปยังจาน Petri ประกอบด้วย 40 มิลลิลิตรของสารละลายของ kaucl4 ( Sigma ) Aldrich
99.99% ) เป็นสรุปในตารางที่ 1 อิทธิพลของ AU
( ความเข้มข้น 100 , 1000 , 10000 ppm ) เวลาเปิดรับแสง ( 24 , 48 และ 72 ชั่วโมง )
พีเอช ( 2 , 3 , 4 , 5 และ 6 ) และอวัยวะของพืช ( รากและหน่อ )
พบในระหว่างการทดลอง พีเอช
จะปรับเพิ่ม 0.1 M NaOH หรือ 1 M HCl . ผล
ครั้งแสงอีกต่อไป ( 24 , 48 , 72 , 120 , 360 H ) ในการเป็น Au
ยังศึกษาระดับมัธยมศึกษาตอนต้นหรือความเข้มข้น 5 , 10 , 20 , 40 และ 80 ppm ) .
หลังจากการปลูกเก็บเกี่ยว , การล้างด้วย demineralised
น้ำแห้ง 48 H ที่ 105 ◦ C และใน
ชั่ง Ashedการแสดงตนของอากาศที่ 500 ◦ C เป็นเวลา 4 ชั่วโมง ผสมแล้วย่อยใน
ผสม 8 ml เข้มข้น HCl และกรดดินประสิวกรดใช้
microwave-assisted การย่อยอาหารที่ 105 ◦เป็นเวลา 15 นาที ( ขั้น
ethos SEL ) โปรแกรมที่ใช้ไมโครเวฟการย่อยอาหารการย่อยอาหารโลหะ
รายงานในตารางที่ 2 ตัวอย่างเล่มโต
10 ml พร้อมเพิ่ม 1 M HCl ก่อนการวิเคราะห์ด้วย
icpoes .มาตรฐานการสอบเทียบที่เตรียมจากรู้จัก AU ICP
มาตรฐาน ( 1000 mg L − 1 ) เส้นโค้งสอบเทียบทั้งหมดมีความสัมพันธ์
2 > 0.99 . ท่ามกลางเทคนิคการวิเคราะห์โลหะใช้ได้
วัดความเข้มข้นในโรงงานตัวอย่างและรูปแบบย่อย ,
FAAS พบมากที่สุด [ 21 ] ในงานวิจัยนี้ได้เลือกรูปแบบ
เพราะความไวมากขึ้นและสูงกว่าการตรวจสอบจำกัด ( < 10
? AU ) ข้ามเงื่อนไขตรวจสอบ [ 22 ] แต่ละการทดลอง
มี 2 ซ้ำ และทดลองซ้ำ 3
ครั้ง จากผลลัพธ์เหล่านี้เมื่อถูกลบโดยใช้มาตรฐาน
อย่างน้อยเฉลี่ยของสี่เหลี่ยมขั้นตอนวิธีตามการคำนวณของ
ค่าเฉลี่ย และส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานของความเข้มข้น Au
สำหรับการวิเคราะห์ทางสัณฐานวิทยาและกายวิภาคของพืช
ตัวอย่างได้รับการแก้ไขใน 2 % glutaraldehyde ตามด้วยน้ำแอลกอฮอล์
ฝังตัวอยู่ใน spurrs เรซินแล้วหายใน 60 ◦เตาอบเป็นเวลา 24 ชั่วโมง [ 23 ] .
สูงประมาณ 1 เมตร หนาบางส่วนถูกตัดโดยใช้เครื่องตัดชิ้นเนื้อ
( Leica Microsystems ) บางส่วนถูกย้อมด้วย 0.2% โทลูอิดีน
ฟ้า ความร้อนคงที่ และดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์ ( Nikon sensicam ) .
ส่วนมือการวิเคราะห์ pixe เบื้องต้น - รากและ
ก้านของ BJ และ MS ได้ เหล่านี้ได้ทันที )
ลงในไนโตรเจนเหลว ตามด้วยการอบแห้งแช่แข็งแช่แข็งเป็นเวลา 24 ชั่วโมง
การแปล กรุณารอสักครู่..