hydrolysates was also included in t

hydrolysates was also included in the assay as a control sample. Decimal
dilution of each culture was enumerated on Plate Count Agar (PCA;
Becton Dickinson Difco) seeded with mPCB decimal dilutions after 5, 24
and 30 h of incubation at 30 °C. In this case II values were calculated as
the logarithmic value of the ratio between the number of microorganisms
at different times (Giannuzzi and Zaritzky, 1996). Inhibition indexes calculated
with OD readings were named IITR, whereas those calculated
with cell counts were named II, as reported by Giannuzzi and Zaritzky
(1996).
For Pseudomonas cultures without any apparent microbial growth
after 30 h of incubation, and in the absence of countable colonies on
Petri dishes, the antimicrobial activity of LFH was checked by inoculating
50 ml of LFH-free PCB medium with 1% of 30 h-old treated cultures;
for samples with visible microbial growth after incubation (30 °C for
24 h), the assigned II value was N1.0, while for samples without growth
the assigned II value was 1.5.
In the light of these results, a single hydrolysate and the purified antimicrobial
peptides were chosen for in vivo experiments.
2.5. Evaluation of BLF derived peptides for the control of lettuce leaf microbial
spoilage
Undamaged leaves of Trocadero lettuce (L. sativa L.) were washed,
cut and treated as reported in Section 2.2. Freeze-dried powders of
LFH from pepsin digestion and its peptide lactoferricin B (Lfcin B), puri-
fied by applying a two-step preparative chromatography, coupled with
LC/MS Orbitrap-based technology analysis, as previously described by
Quintieri et al. (2012), were dissolved in the sterile saline solution at
the final concentration of 50 mg/ml and 3 mg/ml, respectively. Then,
the filter-sterilized (0.22 μm) solutions were supplemented with fresh
bacterial cell cultures (5 log CFU/ml) of each selected strain. Four treatments
were represented by wounded leaves and treated with 10 μL of
sterile saline solution (treatment 1), 10 μL sterile saline solution
amended with LFH or LFcin B (treatment 2), 10 μL of cell suspensions
(treatment 3; 3 log CFU/wound) and 10 μL of cell suspensions containing
LFH or LFcin B (treatment 4). Percentage of spoiled wounds was recorded
over cold storage for 6 days as reported above.
In order to verify the viability of spoiler pseudomonads in treated
leaves, the number of viable cells of a single target Pseudomonas strain
was evaluated during cold storage in comparison to the untreated samples.
The experiment was conducted as described above. Pseudomonas spp.
counts and the percentage of spoilage in wounded lettuce leaves were recorded
after 3, 6, 10 and 13 days of cold storage at 4 °C in air. Viable cells of
inoculated spoiler strain, as well as those from naturally contaminating
microorganisms, were recovered from wounds by three subsequent
washing steps with 150 μl of sterile saline solution, subsequent decimal
dilution and seeding on PSA. In addition, the Pseudomonadaceae population
contaminating the lettuce leaves was determined as reported in
Section 2.1. The resulting viable cell concentration was expressed as
log CFU/g or as log CFU/wound. The trial was carried out in triplicate
(3 leaves for each treatment and for each sampling time, N = 3).
2.6. Statistical analysis
Results related to the percentage of infected wounds and the inhibition
index values were subjected to a square root arcsin transformation
(Sokal and Rohlf, 1995) in order to meet the homogeneity-of-variance
assumptions according to Levene's test. The univariate General Linear
Model (GLM) procedure, applying a one-way ANOVA (P b 0.05), performed
on SPSS software release 8 (SPSS, Inc., Chicago, IL), was used
to examine the effect of the cold storage period on the percentage of infected
wounds per strain. Two-way ANOVA was carried out to evaluate
the independent and interaction effects of treatments with enzyme hydrolysates
as well as purified peptide solutions and extension of cold
storage on in vitro inhibition index values and on spoiled wounds for
each selected strain. Multiple comparisons among individual means
for each assayed strain were performed by Fisher's least significant difference
(LSD) multiple range test at the 95% confidence interval. The
level of significance was determined at P b 0.05.
3. Results and discussions
3.1. Isolation of bacteria from fresh-cut vegetables
In the present work, a Pseudomonas spp. load higher than 5 log CFU/g
was found in two cold-stored unspoiled ready-to-eat (RTE) vegetables
(curly endive and lettuce leaves), using count methods suggested by
López-Gálvez et al. (2010) on disinfected lettuce samples. Forty-eight
isolates collected were typed by RAPD-PCR, resulting in 17 biotypes.
Taxonomic identification (Table 1) showed that four biotypes from lettuce
belonged to P. fluorescens, whereas 13 strains out of 40 isolates
from curly endive were distributed among seven Pseudomonas species
(10), Acinetobacter calcoaceticus (1) and Aeromonas media (2).
The need to collect microbial strains potential responsible for vegetable
tissue decay in RTE leafy vegetables led us to isolate, type and identify
all biotypes occurring on PSA plates enumerated as the dominant
Pseudomans spp. population, even though culture-independent techniques
showed that natural microflora occurring on these vegetables
is composed by several species from different genera (Handschur et
al., 2005; Randazzo et al., 2009; Rudi et al., 2002).
The isolation of strains from cold-stored unspoiled RTE vegetables
was carried out in order to collect some Pseudomonas strains from microbial
populations surviving chlorine-based washing steps and the
cold-storage environment. The isolation of spoilers from heavily spoiled
tissues (Lee et al., 2013) could have no relationship with RTE processing.
As survival following RTE processing and cold storage is not evidence of
spoilage ability, the Pseudomonas strains isolated were further characterized
for their role in tissue decay on various vegetables.
3.2. Spoilage ability of Pseudomonas bacteria on some vegetables
Previous studies had highlighted the isolation and the different
spoilage abilities of Pseudomonas species from various fresh vegetables
and fresh-cut products (Jacxsens et al., 2003; Lee et al., 2013; Pascoe
and Premier, 2000); thus, in this work, we evaluated the spoilage ability
of 7 species of Pseudomonas on Iceberg lettuce, well known to be subject
to microbial spoilage under refrigeration (Li et al., 2001).
Table 1
Taxonomic identification of Pseudomonas spp. strains isolated from fresh-cut vegetables.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

hydrolysates ยังถูกรวมในการวิเคราะห์เป็นตัวอย่างควบคุม ทศนิยมเจือจางของแต่ละวัฒนธรรมถูกระบุบนจานนับ Agar (PCABecton สัน Difco) seeded กับ mPCB dilutions ทศนิยมหลัง 5, 24และ h 30 ของคณะทันตแพทยศาสตร์ที่ 30 องศาเซลเซียส ในกรณีนี้ มีคำนวณค่าที่สองเป็นค่าลอการิทึมของอัตราส่วนระหว่างจำนวนของจุลินทรีย์เวลาที่แตกต่างกัน (Giannuzzi และ Zaritzky, 1996) คำนวณดัชนียับยั้งมี OD อ่านได้ชื่อ IITR ในขณะที่คำนวณมีเซลล์ นับได้ชื่อ II รายงานของ Giannuzzi และ Zaritzky(1996)สำหรับวัฒนธรรมลีโดยไม่มีการเจริญเติบโตจุลินทรีย์ใด ๆ ชัดเจนหลังจาก h 30 คณะทันตแพทยศาสตร์ และ ในการขาดงานของอาณานิคมที่นับได้ในจาน petri กิจกรรมจุลินทรีย์ของ LFH ถูกตรวจสอบ โดย inoculating50 มลของกลางฟรี LFH PCB 1% 30 h อายุวัฒนธรรมบำบัดสำหรับตัวอย่างที่มีการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ปรากฏหลังจากบ่ม (30 ° C สำหรับ24 h), ค่า II กำหนดถูก N1.0 สำหรับตัวอย่างโดยไม่มีการเจริญเติบโต1.5 ค่า II กำหนดได้นี้ผลลัพธ์เหล่านี้ ด้วยเดี่ยว และบริสุทธิ์จุลินทรีย์เปปไทด์ถูกเลือกสำหรับการทดลองในสัตว์ทดลอง2.5 การประเมิน BLF มาเปปไทด์ในการควบคุมจุลินทรีย์ใบผักกาดหอมเน่าเสียมีล้างใบไม่เสียหายของผักกาดหอมเอลลิงตัน (ซา L. L.)ตัด และบำบัดเป็นรายงานในหัวข้อ 2.2 ผงกรอบของLFH จากย่อยอาหารเพพซินและ lactoferricin ของเพปไทด์บี (Lfcin B), ปู-ฟอง โดยใช้ chromatography preparative สองขั้นตอน ควบคู่ไปด้วยLC/MS Orbitrap ใช้เทคโนโลยีการวิเคราะห์ อธิบายว่า ก่อนหน้านี้มีละลาย Quintieri et al. (2012), ในเกลือฆ่าเชื้อที่สุดท้ายความเข้มข้น 50 mg/ml และ 3 mg/ml ตามลำดับ แล้วโซลูชั่น sterilized กรอง (0.22 μm) ถูกเสริม ด้วยสดเซลล์แบคทีเรียวัฒนธรรม (5 ล็อก CFU/ml) ของแต่ละคนเลือกต้องใช้ รักษา 4แสดง โดยใบที่ได้รับบาดเจ็บ และรักษา ด้วย μL 10 ของใส่เกลือ (รักษา 1), 10 μL ใส่เกลือแก้ไข โดย LFH หรือ LFcin B (รักษา 2), μL 10 ของเซลล์บริการ(รักษา 3; 3 ล็อก CFU/แผล) และ μL 10 ของบริการเซลล์ประกอบด้วยLFH หรือ LFcin B (รักษา 4) บันทึกเปอร์เซ็นต์ของแผลบูดช่วงเย็น 6 วันตามรายงานข้างต้นเพื่อชีวิตของสปอยเลอร์ pseudomonads ในการตรวจสอบถือว่าใบ จำนวนเป้าหมายเดียวต้องใช้ Pseudomonas เซลล์ทำงานได้มีประเมินในช่วงเย็นโดยตัวอย่างที่ไม่ถูกรักษาทดลองได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ข้างต้น โอลีบันทึกจำนวนและเปอร์เซ็นต์การเน่าเสียในผักกาดหอมที่ได้รับบาดเจ็บหลัง 3, 6, 10 และ 13 วันของเย็นที่ 4 ° C ในอากาศ เซลล์ทำงานได้ต้องใช้ inoculated สปอยเลอร์ รวมทั้งจากธรรมชาติขยะจุลินทรีย์ ถูกกู้คืนจากบาดแผล โดยสามตามมาขั้นตอนการซักผ้า ด้วย μl 150 ของเกลือฆ่าเชื้อ ทศนิยมตามมาเจือจางและอัตราใน PSA นอกจากนี้ ประชากร Pseudomonadaceaeขยะใบไม้ผักกาดได้กำหนดในส่วน 2.1 ความเข้มข้นของเซลล์ทำงานได้ผลลัพธ์ถูกแสดงเป็นระบบ CFU/g หรือเป็นระบบ CFU/แผล การทดลองที่ดำเนินการใน triplicate(ใบที่ 3 สำหรับแต่ละ และ แต่ละ ครั้งสุ่ม N = 3)2.6. สถิติวิเคราะห์ผลลัพธ์ที่เกี่ยวข้องกับเปอร์เซ็นต์ของแผลติดเชื้อและยับยั้งการค่าดัชนีถูกต้องเปลี่ยนแปลง arcsin ราก(Sokal และ Rohlf, 1995) เพื่อตอบสนอง homogeneity ต่างสมมติฐานตามการทดสอบของ Levene อย่างไร univariate เชิงเส้นทั่วไปใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียว (P b 0.05), ดำเนินการรูปแบบขั้นตอน (GLM)โปรแกรมซอฟต์แวร์ ใช้รุ่น 8 (โปรแกรม Inc. ชิคาโก IL),ตรวจสอบผลของระยะเวลาเย็นเปอร์เซ็นต์การติดเชื้อแผลต่อต้องใช้ การวิเคราะห์ความแปรปรวนสองทางที่ดำเนินการประเมินผลการรักษาด้วยเอนไซม์ hydrolysates อิสระและโต้ตอบโซลูชั่นเพปไทด์บริสุทธิ์และส่วนขยายของเย็นเก็บค่าดัชนีในยับยั้ง และแผลบูดสำหรับแต่ละที่เลือกต้องใช้ เปรียบเทียบหลายระหว่างแต่ละวิธีสำหรับแต่ละต้องใช้ assayed ดำเนิน โดยความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญน้อยที่สุดของฟิชเชอร์(LSD) หลายช่วงทดสอบที่ช่วงความเชื่อมั่น 95% ที่กำหนดระดับของนัยสำคัญที่ P b 0.053. ผลลัพธ์ และสนทนา3.1 การแยกแบคทีเรียจากผักสดตัดในการทำงานปัจจุบัน โอลีโหลดสูงกว่า 5 ล็อก CFU/gพบในสองเก็บเย็นสวยงามพร้อมกิน (RTE) ผัก(endive หยักและผักกาดหอมใบ), ใช้วิธีนับโดยการแนะนำLópez Gálvez et al. (2010) ในตัวอย่างผักกาดหอมฆ่าเชื้อ สี่สิบแปดแยกเก็บถูกพิมพ์ โดยอาร์เอพีดี-PCR เกิด 17 biotypesรหัสอนุกรมวิธาน (ตาราง 1) พบว่าสี่ biotypes จากผักกาดหอมเป็นสมาชิก P. fluorescens ในขณะที่สายพันธุ์ 13 จากแยก 40จาก endive หยิกได้ถูกกระจายพันธุ์ Pseudomonas เจ็ด(10), Acinetobacter calcoaceticus (1) และสื่อ Aeromonas (2)จำเป็นต้องเก็บรวบรวมสายพันธุ์จุลินทรีย์อาจชอบผักนำเนื้อเยื่อผุในผักใบเขียวชะอุ่ม RTE เราแยก พิมพ์ และระบุbiotypes ทั้งหมดที่เกิดขึ้นบนแผ่น PSA ที่ระบุเป็นตัวหลักPseudomans โอประชากร เทคนิคแม้วัฒนธรรมอิสระแสดงให้เห็นว่า microflora ธรรมชาติที่เกิดขึ้นในผักเหล่านี้หลายชนิดจากสกุลต่าง ๆ ขึ้น (Handschur etal., 2005 Randazzo et al., 2009 Rudi et al., 2002)แยกของสายพันธุ์จากเก็บเย็น RTE ผักสวยงามได้ดำเนินการเก็บรวบรวมสายพันธุ์ Pseudomonas บางจากจุลินทรีย์ประชากรรอดขั้นตอนซักผ้าที่ใช้คลอรีนและ-เย็นสภาพแวดล้อม แยกของ spoilers จากเสียมากเนื้อเยื่อ (Lee et al., 2013) อาจมีความสัมพันธ์ไม่ มีการประมวลผล RTEขั้นประมวลผล RTE และเย็นอยู่รอดไม่ได้ หลักฐานของเพิ่มเติมมีลักษณะเน่าเสียสามารถ สายพันธุ์ Pseudomonas ที่แยกต่างหากสำหรับบทบาทของตนในเนื้อเยื่อผุบนผักต่าง ๆ3.2 การเน่าเสียความสามารถของเชื้อแบคทีเรีย Pseudomonas บนผักบางการศึกษาก่อนหน้านี้ได้เน้นการแยกและที่แตกต่างกันความเน่าเสียของ Pseudomonas ชนิดจากผักสดต่าง ๆและผลิตภัณฑ์ตัด (Jacxsens et al., 2003 ลีเอส al., 2013 Pascoeและพรี เมียร์ 2000); ดังนั้น ในงานนี้ เราประเมินความสามารถในการเน่าเสียของ 7 พันธุ์ Pseudomonas บนภูเขาน้ำแข็งผักกาดหอม ที่รู้จักกันเป็นชื่อเรื่องการเน่าเสียที่จุลินทรีย์ภายใต้การแช่แข็ง (Li et al., 2001)ตารางที่ 1รหัสอนุกรมวิธานของสายพันธุ์โอลีโดดเดี่ยวตัดผัก

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ไฮโดรไลเซยังถูกรวมอยู่ในการทดสอบเป็นตัวอย่างการควบคุมที่ ทศนิยมลดสัดส่วนของแต่ละวัฒนธรรมได้รับการระบุในการนับจานวุ้น (PCA; Becton Dickinson Difco) เมล็ดที่มี mPCB เจือจางทศนิยมหลังจาก 5, 24 และ 30 ชั่วโมงของการบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส ในกรณีนี้ค่าที่สองจะถูกคำนวณเป็นค่าลอการิทึมของอัตราส่วนระหว่างจำนวนของจุลินทรีย์ในช่วงเวลาที่แตกต่างกัน(Giannuzzi และ Zaritzky, 1996) ดัชนียับยั้งการคำนวณที่มีการอ่าน OD ชื่อ IITR ในขณะที่ผู้ที่คำนวณกับจำนวนเซลล์ถูกตั้งชื่อครั้งที่สองตามที่รายงานโดยGiannuzzi และ Zaritzky (1996). สำหรับวัฒนธรรม Pseudomonas โดยไม่ต้องเจริญเติบโตของจุลินทรีย์อย่างเห็นได้ชัดหลังจาก 30 ชั่วโมงของการบ่มและในกรณีที่ไม่มีการนับ โคโลนีบนจานเลี้ยงเชื้อที่ฤทธิ์ต้านจุลชีพของLFH ได้รับการตรวจสอบโดยการฉีดวัคซีน50 มิลลิลิตร LFH ฟรีกลาง PCB กับ 1% ของ 30 ชั่วโมงอายุวัฒนธรรมที่ได้รับการรักษา; สำหรับตัวอย่างที่มีการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์มองเห็นได้หลังจากการบ่ม (30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา24 ชั่วโมง) ค่าครั้งที่สองที่ได้รับมอบหมายเป็น N1.0 ในขณะที่สำหรับการเจริญเติบโตของกลุ่มตัวอย่างโดยไม่ได้ค่าครั้งที่สองที่ได้รับมอบหมายคือ1.5. ในแง่ของผลเหล่านี้ที่เป็นไฮโดรไลเดียวและยาต้านจุลชีพบริสุทธิ์เปปไทด์ที่ได้รับเลือกสำหรับการทดลองในร่างกาย. 2.5 การประเมินผลการ BLF มาเปปไทด์สำหรับการควบคุมของใบผักกาดหอมจุลินทรีย์เน่าเสียใบของผักกาดหอมไม่เสียหายTrocadero (แอล sativa L. ) ได้รับการล้างตัดและถือว่าเป็นรายงานในมาตรา2.2 ผงแห้งของLFH จากการย่อยอาหารและน้ำย่อยเปปไทด์ของ lactoferricin B (Lfcin B), puri- กระแสไฟโดยการใช้สองขั้นตอนโคเตรียมควบคู่กับLC / MS วิเคราะห์เทคโนโลยี Orbitrap ตามตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้โดยQuintieri et al, (2012) ถูกละลายในน้ำเกลือปลอดเชื้อที่มีความเข้มข้นสุดท้ายของ50 mg / ml และ 3 mg / ml ตามลำดับ จากนั้นกรองฆ่าเชื้อ (0.22 ไมครอน) โซลูชั่นที่ได้รับการเสริมด้วยสดเซลล์เพาะเลี้ยงแบคทีเรีย(5 log CFU / ml) ของแต่ละสายพันธุ์ สี่การรักษาที่ถูกแทนด้วยใบที่ได้รับบาดเจ็บและได้รับการรักษาที่มี 10 ไมโครลิตรของน้ำเกลือปลอดเชื้อ(การทดลองที่ 1) น้ำเกลือปลอดเชื้อ 10 ไมโครลิตรแก้ไขเพิ่มเติมกับLFH หรือ LFcin B (การรักษา 2), 10 ไมโครลิตรของสารแขวนลอยเซลล์(การรักษา 3 3 log CFU / แผล) และ 10 ไมโครลิตรของเซลล์ที่มีสารแขวนลอยLFH หรือ LFcin B (การรักษา 4) ร้อยละของแผลเน่าเสียได้รับการบันทึกในช่วงเย็นเวลา 6 วันขณะที่รายงานข้างต้น. เพื่อที่จะตรวจสอบความมีชีวิตของ pseudomonads สปอยเลอร์ในการรักษาใบจำนวนของเซลล์ที่ทำงานได้ของเป้าหมายเดียวสายพันธุ์Pseudomonas ถูกประเมินระหว่างการเก็บรักษาความเย็นในการเปรียบเทียบกับได้รับการรักษา ตัวอย่าง. การทดลองที่ได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ข้างต้น เอสพีพี Pseudomonas. นับและร้อยละของการเน่าเสียในใบผักกาดหอมที่ได้รับบาดเจ็บถูกบันทึกไว้หลังจาก 3, 6, 10 และ 13 วันของการเก็บรักษาความเย็นที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสในอากาศ เซลล์ทำงานได้ของสายพันธุ์เชื้อสปอยเลอร์เช่นเดียวกับผู้ที่มาจากการปนเปื้อนตามธรรมชาติจุลินทรีย์หายจากบาดแผลที่ตามมาโดยสามขั้นตอนการซักผ้าที่มี150 ไมโครลิตรน้ำเกลือปลอดเชื้อทศนิยมตามมาเจือจางและเพาะบนPSA นอกจากนี้ประชากร Pseudomonadaceae ปนเปื้อนในใบผักกาดหอมที่ถูกกำหนดเป็นรายงานในมาตรา 2.1 ความเข้มข้นของเซลล์ที่มีชีวิตส่งผลให้ได้รับการแสดงเป็นlog CFU / g หรือเข้าสู่ระบบโคโลนี / แผล การพิจารณาคดีได้ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่า(3 ใบสำหรับการรักษาในแต่ละครั้งและแต่ละครั้งสำหรับการสุ่มตัวอย่าง, N = 3). 2.6 การวิเคราะห์ทางสถิติผลที่เกี่ยวข้องกับร้อยละของบาดแผลที่ติดเชื้อและการยับยั้งที่ดัชนีค่าถูกยัดเยียดให้รากที่สองการเปลี่ยนแปลงarcsin (Sokal และ Rohlf, 1995) เพื่อตอบสนองความสม่ำเสมอของความแปรปรวนสมมติฐานตามการทดสอบLevene ของ univariate ทั่วไปเป็น Linear Model (GLM) ขั้นตอนการใช้ one-way ANOVA (P 0.05 ข) ดำเนินการเกี่ยวกับการเปิดตัวซอฟแวร์โปรแกรมSPSS 8 (SPSS, Inc, Chicago, IL) ถูกนำมาใช้ในการตรวจสอบผลกระทบของระยะเวลาการจัดเก็บเย็นในอัตราร้อยละของการติดเชื้อแผลต่อความเครียด สองทาง ANOVA ได้ดำเนินการในการประเมินผลกระทบที่เป็นอิสระและการทำงานร่วมกันของการรักษาด้วยการไฮโดรไลเซเอนไซม์เช่นเดียวกับโซลูชั่นเปปไทด์บริสุทธิ์และการขยายของความหนาวเย็นจัดเก็บในหลอดทดลองค่าดัชนีการยับยั้งและบาดแผลมากมายสำหรับแต่ละสายพันธุ์ เปรียบเทียบหลายวิธีในหมู่ของแต่ละบุคคลสำหรับแต่ละสายพันธุ์ assayed ดำเนินการโดยอย่างน้อยฟิชเชอร์อย่างมีนัยสำคัญ (LSD) การทดสอบช่วงหลายในช่วงความเชื่อมั่น 95% ระดับนัยสำคัญที่ถูกกำหนด P 0.05 ข. 3 และการอภิปรายผล3.1 การแยกเชื้อแบคทีเรียจากผักสดตัดในงานปัจจุบันเป็น Pseudomonas spp โหลดสูงกว่า 5 log CFU / g พบว่าในสองเย็นเก็บไว้ที่สวยงามพร้อมรับประทาน (RTE) ผัก(พืชชนิดหนึ่งหยิกและใบผักกาดหอม) โดยใช้วิธีการนับแนะนำโดยLópez-Gálvez et al, (2010) ตัวอย่างผักกาดหอมฆ่าเชื้อ สี่สิบแปดสายพันธุ์เก็บถูกพิมพ์โดย RAPD-PCR ที่มีผลในวันที่ 17 ไบโอไทป์. บัตรประจำตัวอนุกรมวิธาน (ตารางที่ 1) พบว่าไบโอไทป์สี่จากผักกาดหอมเป็นพีfluorescens ในขณะที่สายพันธุ์ที่ 13 จาก 40 สายพันธุ์จากพืชชนิดหนึ่งหยิกถูกกระจายไปในหมู่เจ็ดPseudomonas สปีชีส์(10), Acinetobacter calcoaceticus (1) และสื่อ Aeromonas (2). จำเป็นที่จะต้องเก็บรวบรวมสายพันธุ์จุลินทรีย์ที่มีศักยภาพความรับผิดชอบสำหรับการผักสลายเนื้อเยื่อใน RTE ผักใบนำเราไปสู่การแยกประเภทและระบุไบโอไทป์ทั้งหมดที่เกิดขึ้นบนจานPSA แจกแจงเป็น ที่โดดเด่นspp Pseudomans ประชากรแม้ว่าเทคนิคการเพาะเลี้ยงอิสระแสดงให้เห็นว่าจุลินทรีย์ธรรมชาติที่เกิดขึ้นบนผักเหล่านี้ประกอบด้วยหลายสายพันธุ์จากจำพวกที่แตกต่างกัน(Handschur et al, 2005;. Randazzo et al, 2009;.. ฤดี, et al, 2002). การแยกของ สายพันธุ์จากเย็นเก็บไว้ผักที่สวยงาม RTE ได้ดำเนินการเพื่อเก็บบางสายพันธุ์จุลินทรีย์ Pseudomonas จากประชากรที่หลงเหลืออยู่ในขั้นตอนการล้างคลอรีนที่ใช้และสภาพแวดล้อมที่เย็นจัดเก็บ แยกของสปอยเลอร์จากนิสัยเสียอย่างหนักเนื้อเยื่อ (Lee et al., 2013) อาจมีความสัมพันธ์กับการประมวลผล RTE ไม่มี. ขณะที่มีชีวิตอยู่รอดต่อไปนี้การประมวลผล RTE และการเก็บรักษาความเย็นไม่ได้เป็นหลักฐานที่แสดงถึงความสามารถในการเน่าเสียของสายพันธุ์Pseudomonas ที่แยกมีลักษณะต่อไปสำหรับบทบาทของพวกเขาในการสลายตัวของเนื้อเยื่อในผักต่างๆ. 3.2 ความสามารถในการทดสอบอาหารของแบคทีเรีย Pseudomonas ในผักบางศึกษาก่อนหน้านี้ได้เน้นการแยกและแตกต่างกันความสามารถในการเน่าเสียของสายพันธุ์Pseudomonas จากผักสดต่างๆและผลิตภัณฑ์สดตัด(Jacxsens et al, 2003;. ลี et al, 2013;. ปาสคูและนายกรัฐมนตรี2000) ดังนั้นในงานนี้เรามีการประเมินความสามารถในการเน่าเสียของ 7 ชนิดของ Pseudomonas บนผักกาดหอมภูเขาน้ำแข็งที่รู้จักกันดีจะเป็นเรื่องการเน่าเสียของจุลินทรีย์ภายใต้เครื่องทำความเย็น(Li et al., 2001). ตารางที่ 1 การระบุอนุกรมวิธานของ Pseudomonas spp สายพันธุ์ที่แยกได้จากพืชผักผลไม้สดตัด

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ของก็รวมอยู่ในการทดสอบเป็นควบคุมตัวอย่าง เจือจางทศนิยม
ของแต่ละวัฒนธรรมก็ระบุใน Planetmath reference ( PCA ;
เบคตอนดิกคินสัน difco ) เมล็ดกับ mpcb ทศนิยมเจือจางหลัง 5 , 24 และ 30 H
บ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา ในกรณีนี้ 2 ค่าคำนวณเป็นค่า
ลอการิทึมของอัตราส่วนระหว่างจำนวนของจุลินทรีย์
เวลาที่ต่างกัน ( giannuzzi และ zaritzky , 1996 ) ดัชนีการคํานวณ
กับการอ่าน od ชื่อ iitr ในขณะที่ผู้คำนวณ
กับเซลล์นับชื่อ II , รายงานโดย giannuzzi และ zaritzky
( 1996 ) .

สำหรับวัฒนธรรมของการเจริญเติบโตใด ๆโดยไม่แจ้งจุลินทรีย์หลังจาก 30 ชั่วโมงของการบ่มและการขาดงานของอาณานิคมนับ
Petri อาหารกิจกรรมการต้านจุลชีพของ lfh ถูกตรวจสอบ โดยการฉีดวัคซีน
50 มิลลิลิตร lfh PCB สามารถสื่อกับ 1% ของ 30 h-old รักษาวัฒนธรรม ;
อย่างที่เห็นจากการหลังจากบ่ม ( 30 ° C
24 ชั่วโมง ) จำนวน 2 ค่าคือ n1.0 ในขณะที่ตัวอย่าง โดยไม่มีการกำหนดมูลค่า 1.5
II .
ในแสงของผลลัพธ์เหล่านี้ ไฮโดรไลเซทเดียวและทำให้จุลชีพ
ติดตั้งสำหรับ chosen / vivo experiments .
2.5 . การประเมิน blf ได้มาเปปไทด์เพื่อการควบคุมจุลินทรีย์เน่าเสียไม่เสียหาย

ใบผักกาดหอมใบโทรคาเดโร ผักกาดหอม ( L . sativa L . ) ล้าง
ตัดและถือว่าเป็นการรายงานในส่วน 2.2 . ตรึงแห้งผง
lfh จากการย่อยอาหารเอนไซม์เปปซินและเปปไทด์แลคโตเฟอรริซิน B ( B -
lfcin ) , ภูริ