Effects of dietary supplementation

Effects of dietary supplementation of chitosan on humoral and cellular immune function in weaned piglets
a b s t r a c t
The effects of dietary supplementation of chitosan on humoral and cellular immune function
in weaned piglets were investigated. One hundred and eighty piglets weaned at 28 d
(Duroc
×
Large white
×
Landrace) were assigned randomly to 5 dietary treatments with
6 repetitions in each treatment. The piglets in the 5 treatments were fed on the basal
diet supplemented with 0 (control), 100, 500, 1000 and 2000 mg chitosan/kg feed. Results
showed that chitosan improved serum immunoglobulin G (IgG) concentrations of piglets
in a quadratic dose-dependent manner (P

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ผลของอาหารแห้งเสริมของไคโตซาน humoral และเซลล์อักเสบในหย่านมถึงทรูดแบบ b s t r c tผลของอาหารแห้งเสริมของไคโตซานการ humoral และเซลล์อักเสบในการหย่านมถึงทรูดถูกสอบสวน หนึ่งร้อย และเอ้ทรูดหย่านมถึงที่ 28 d(Duroc×สีขาวขนาดใหญ่×แม่) ถูกกำหนดแบบสุ่มให้นวดอาหาร 5การทำซ้ำ 6 ในแต่ละทรีทเม้นต์ ทรูดในการรักษา 5 ถูกเลี้ยงในที่โรคอาหารเสริม ด้วย 0 (ควบคุม), 100, 500, 1000 และ 2000 mg ไคโตซานกิโลกรัมอาหาร ผลลัพธ์พบว่าไคโตซานขึ้นเซรั่มความเข้มข้น G (IgG) immunoglobulin ของทรูดในลักษณะขึ้นอยู่กับปริมาณกำลังสอง (P < 0.05), และเพิ่มเซรั่มเฉพาะ ovalbumin(OVA) IgG เนื้อหาในแบบเชิงเส้นหรือลักษณะขึ้นอยู่กับปริมาณกำลังสอง (P < 0.05) ในวันที่ 28ในขณะที่เซรั่ม immunoglobulin (อิกะ) และ immunoglobulin M (ระบาดของโรค) ความเข้มข้นไม่เปลี่ยนแปลงไป ด้วยการเพิ่มไคโตซาน immunoglobulin secretory (sIgA) ถูกปรับปรุงในพื้นผิว mucosal ileum ในลักษณะเชิงเส้น หรือกำลังสอง (P < 0.05) ในวันที่ 14 และปรับปรุง quadratically ในพื้นผิว mucosal jejunum ใน 28 วัน (P < 0.05) นอกจากนี้ ไคโตซานเซรั่มความเข้มข้นของ CD4 ละลายลดลง (sCD4) ในการกำลังสองยาขึ้นอยู่กับลักษณะ (P < 0.05) และ CD8 ละลาย (sCD8) ในลักษณะขึ้นอยู่กับยาเส้น หรือกำลังสอง(P < 0.05) ในวันที่ 28 ไคโตซาน quadratically เพิ่มความเข้มข้นของซีรั่มของ interleukin-1(IL-1) and interleukin-2 (IL-2) on day 14 as well as serum concentrations of tumor necrosisfactor-alpha (TNF-) on day 28 (P<0.05). These results implied that dietary supplementwith chitosan improved humoral and cellular immune responses of weaned piglets in adose-dependent manner, and in this experiment, the appropriate adding dose of chitosanmight be between 500 and 1000 mg/kg.Keywords: Cellular immunity, Chitosan, Humoral immunity, Weaned Piglets1. IntroductionThe immune system of piglet is underdeveloped fully at early age (Heugten et al., 1996), and the ability to resist diseasemainly depends on passive immunity from the sow during this time (Rooke and Bland, 2002). Early weaning not onlyinterrupts the supply of immunologically important factors from sow’s milk (Wu et al., 2004), but also impairs the productionof antibodies and compromises cellular immune functions (Touchette et al., 2002), which leads piglets to be infected moreeasily by pathogens. Traditionally, antibiotics were frequently used in the diets of newly weaned pigs for the prophylaxis ofinfections during the immediate post-weaning period in past decades (Bosi et al., 2011). However, there has been increasingTable 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (air dry basis, %).The premix provides following nutrients per kg diet: Vitamin A, 16,000 IU; Vitamin D3, 2500 IU; Vitamin E, 60 IU; Vitamin K3, 4.5 mg; Vitamin B1,2.6 mg; Vitamin B2, 8.7 mg; Vitamin B6, 7.0 mg; Vitamin B12, 0.03 mg; vitamin C, 200 mg; Pantothenic acid, 13 mg; Nicotinic acid, 35 mg; Biotin, 0.47 mg;Folic acid, 0.85 mg; Iron, 155 mg; Copper, 35 mg; Zinc, 100 mg; Manganese, 25 mg; Iodine, 0.35 mg; Cobalt, 0.2 mg; Selenium, 0.25 mg; Choline chloride,750 mg; Phytase, 500 FTU.pressure on the livestock industry to decrease or discontinue these additions because of the potential development ofantibiotic resistance (Davis et al., 2004). Therefore, alternative additives that help develop the immune responses of weanedpiglets are highly recommended.Chitosan, a natural and nontoxic alkaline polysaccharide, is formed by the action of chitin deacetylases and is a keystructural component of helminths, arthropods and fungi (Synowiecki and Al-Khateeb, 2003). Porporatto et al. (2005) demon-strated that chitosan profoundly affected intestinal mucosal immunity by activating leukocytes. Our previous study foundthat chitosan improved the humoral and cellular immune functions in broilers (Li, 2009).In piglets, however, there were limited studies evaluating the effect of chitosan on immune function. Therefore, our studywas conducted to determine the effect of chitosan on the humoral and cellular immune function of weaned piglets and theappropriate chitosan supplemental level as an immuno-modulating agent.2. Materials and methodsAll procedures described in this experiment were approved by Animal Care and Use Committee of Inner MongoliaAgricultural University.2.1. Experimental design and animal managementA total of 180 piglets (Duroc × Large white × Landrace) with an initial average body weight of 7.6 kg were assignedrandomly to 5 treatments with 6 repetitions (3 pens of males and 3 pens of females) in each treatment, with 6 piglets in eachpen (4.0 m × 4.2 m). The formation of basal diets was showed in Table 1. All diets were offered in meal form. Five dietarytreatments supplemented with 0 (control), 100, 500, 1000 or 2000 mg chitosan/kg feed on the basal diet, respectively. Pigletswere weaned at the age of 28 d, penned in a temperature-controlled nursery building where temperature was maintained at26–27◦C and relative humidity was about 65–70%. The weaned piglets had one week of housing and management adaptationbefore the experimental phase. The experimental period was 28 d. Feed and water were freely available. Chitosan used inthis trial was provided by Jinan Haidebei Marine Bioengineering Limited Company (Jinan, China). The deacetylation degreeof chitosan was determined to be 85.09%, and the viscosity was 45 cps.2.2. Sample collectionOn day 14 and 28, one pig from each replicate of each treatment was randomly selected and blood samples were obtainedby puncturing the vena cava. The blood samples were centrifuged at 3000 × g for 20 min at 4◦C to yield serum. Serum wasstored at −20◦C until analysis of immunoglobulins, cytokines and sCD4, sCD8. At the beginning of trial, one piglet fromeach repetition of each treatment was selected randomly and injected with 1 mg ovalbumin/kg BW (Sigma, USA). Bloodsamples were collected by puncturing the vena cava on day 0 (before injection), 14 and 28 to test the specific OVA antibodyconcentrations in serum. The blood samples were centrifuged at 3000 × g for 20 min and stored at −20◦C until analysis.For determining the content of sIgA in small intestine mucosa, the pigs used to get blood samples were sacrificed, andthe jejunum and ileum were quickly removed, and then the samples were cut and washed with PBS (pH 7.2–7.4). Intestinalmucosa was gently scraped with slide, weighed 1 g and transferred to a centrifuge tube adding 9 mL saline then homogenizedby hand. Homogenates were centrifuged at 3000 × g for 20 min, and the supernatant was stored at −20◦C until analysis.Table 2 Effects of chitosan on the level of immunoglobulins and OVA-IgG in serum as well as the sIgA of jejunum and ileum mucosal in weaned piglet.Note: IgG = immunoglobulin G; IgM = immunoglobulin M; IgA = immunoglobulin A; OVA-IgG = ovalbumin IgG; SEM = standard error of the mean.2.3. Detection of immunoglobulins, cytokines, sCD4 and sCD8 in serumThe IgG, IgA and IgM were determined with a porcine ELISA kit (Bethyl Laboratories, Inc., USA) and the minimumdetectability was 15.6 mg/L. The IL-1, IL-2 and TNF- were measured with a commercially available porcine ELISA kit fromthe BioSource International, Inc. (Camarillo, USA). The minimum detectability of IL-1, IL-2 and TNF- were 0.003, 0.01 and0.03 ng/L, with 12–13%, 7–10% and 11–12% intra- and interassay CV, respectively. The sCD4 and sCD8 were measured witha commercial porcine ELISA kit from the BioSource International, Inc. (Camarillo, USA). The minimum detectable dose was0.1 U/mL with 9% and 15% intra- and interassay CV, respectively.2.4. Determination of specific ovalbumin antibody in serumOVA-IgG contents were determined with a porcine ELISA kit from the R & D Systems, Inc. (Minneapolis, USA). Briefly,standard samples were serially diluted and the final concentrations were 120, 80, 40, 20 and 10 g/mL, respectively. Sampleswere added to testing sample wells. The plate was incubated for 30 min at 37◦C then was washed and added HRP-conjugatereagent. Absorbance at 450 nm after adding stop solution and with in 15 min was read after coloring.2.5. Specific secretory immunoglobulin A analysisThe specific sIgA in small intestine mucosa was determined with a porcine ELISA kit (R&D Systems). Assay procedure wassimilar with the determination of OVA-IgG.2.6. Statistical analysisRegression analysis was conducted to evaluate linear and quadratic effects of chitosan on the various response criteriain piglets by using the SAS software 9.0. Trends were considered significant if probability values of P<0.05 were obtained.3. ResultsWith increasing addition of chitosan, serum IgG concentrations increased in a quadratic dose-dependent manner (P<0.05),while serum IgA and IgM concentrations were not altered (Table 2). Serum OVA-IgG average content of piglets in each groupwas about 30 g/mL and had no difference between treatments before the trial (Table 2). However, serum OVA-IgG wasenhanced by chitosan quadratically (P<0.05) on day 14 and improved linearly or quadratically (P<0.05) on day 28. Withincreasing chitosan, the sIgA was enhanced in ileum mucosa in a linear or quadratic manner (P<0.05) on day 14, and wasimproved quadratically in jejunum mucosa on day 28 (P<0.05) (Table 2).Table 3 Effects of chitosan on the concentration of sCD4, sCD8 and cytokines in serum of weaned piglets.
The result showed that chitosan decreased serum CD4 in a quadratic dose-dependent manner (P<0.05) and sCD8 in a linearor quadratic manner on day 28 (P<0.05) (Table 3). The maximum decrease of SCD4 in 1000 mg/kg chitosan group and sCD8 in500 mg/kg chitosan group were 13.71% and 13.79% on day 28, respectively. Chitosan quadratically enhanced serum IL-1andIL-2 on day 14 as well as serum TNF- in piglets on day 28 (P<0.05) (Table 3). In addition, piglets in 500 and 1000 mg/kgchitosan treatments had higher serum sIgA, IL-1, IL-2 and TNF- concentrations compar

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ผลของการเสริมอาหารไคโตซานในการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันของร่างกายและโทรศัพท์มือถือในลูกสุกรหย่านม
bstract
ผลของการเสริมอาหารไคโตซานในการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันของร่างกายและโทรศัพท์มือถือในลูกสุกรหย่านมถูกตรวจสอบ
หนึ่งร้อยแปดสิบลูกสุกรหย่านมที่ 28 d
(Duroc
×สีขาวขนาดใหญ่×แลนด์เรซ) ถูกสุ่มให้ได้ 5 วิธีการบริโภคอาหารที่มี6 ซ้ำในการรักษาแต่ละ ลูกสุกรใน 5 การรักษาได้รับการเลี้ยงดูในฐานอาหารเสริมด้วย 0 (ควบคุม), 100, 500, 1,000 และ 2,000 มก. ไคโตซาน / กิโลกรัมอาหาร ผลการศึกษาพบว่าอิมมูโนเซรั่มที่ดีขึ้นไคโตซานจี (IgG) ความเข้มข้นของลูกสุกรในลักษณะปริมาณขึ้นอยู่กับกำลังสอง(P <0.05) และเพิ่มขึ้นซีรั่มที่เฉพาะเจาะจง ovalbumin (OVA) เนื้อหา IgG ในเชิงเส้นหรือลักษณะปริมาณขึ้นอยู่กับกำลังสอง (P < 0.05) ในวันที่ 28 ในขณะที่ซีรั่มอิมมูโน A (IgA) และอิมมูโน M (IgM) ความเข้มข้นที่ไม่ได้มีการเปลี่ยนแปลง ด้วยการเพิ่มไคโตซานที่อิมมูโนหลั่ง A (sIgA) ได้รับการปรับปรุงในพื้นผิวเยื่อเมือกileum ในลักษณะเชิงเส้นหรือสมการกำลังสอง (P <0.05) ในวันที่ 14 และได้รับการปรับปรุงให้ดีขึ้นในquadratically พื้นผิวเยื่อเมือก jejunum ในวันที่ 28 (P <0.05) นอกจากนี้ไคโตซานที่ลดลงของความเข้มข้นของซีรั่มที่ละลายน้ำได้ CD4 (sCD4) ในปริมาณขึ้นอยู่กับกำลังสองลักษณะ(P <0.05) และ CD8 ที่ละลายน้ำได้ (sCD8) ในเชิงเส้นหรือลักษณะปริมาณขึ้นอยู่กับกำลังสอง(P <0.05) ในวันที่ 28 ไคโตซาน เพิ่ม quadratically ความเข้มข้นในซีรั่มของ interleukin-1 (IL-1) และ interleukin-2 (IL-2) ในวันที่ 14 เช่นเดียวกับความเข้มข้นของซีรั่มของเนื้องอกเนื้อร้ายปัจจัยอัลฟา(TNF-?) ในวันที่ 28 (P <0.05) ผลลัพธ์เหล่านี้ส่อให้เห็นว่าผลิตภัณฑ์เสริมอาหารที่มีไคโตซานที่ดีขึ้นการตอบสนองของระบบภูมิคุ้มกันของร่างกายและเซลล์ของลูกสุกรหย่านมในลักษณะปริมาณขึ้นอยู่กับและในการทดลองนี้เหมาะสมการเพิ่มปริมาณของไคโตซานอาจจะอยู่ระหว่าง500 และ 1,000 มก. / กก. คำสำคัญ: การสร้างภูมิคุ้มกันมือถือ ไคโตซานภูมิคุ้มกันของร่างกายหย่านมลูกสุกร1 IntroductionThe ระบบภูมิคุ้มกันของลูกสุกรเป็นด้อยพัฒนาอย่างเต็มที่ในวัยต้น (Heugten et al., 1996) และความสามารถในการต้านทาน diseasemainly ขึ้นอยู่กับภูมิคุ้มกันเรื่อย ๆ จากสุกรในช่วงเวลานี้ (Rooke และรสชาติ, 2002) ต้นหย่านมไม่ onlyinterrupts อุปทานของปัจจัยที่สำคัญภูมิคุ้มกันจากนมสุกร (Wu et al., 2004) แต่ยังบั่นทอนแอนติบอดี productionof และบั่นทอนการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันโทรศัพท์มือถือ (Touchette et al., 2002) ซึ่งนำไปสู่ลูกสุกรที่จะติดเชื้อ moreeasily โดย เชื้อโรค ตามเนื้อผ้ายาปฏิชีวนะที่ใช้บ่อยในอาหารของสุกรหย่านมใหม่สำหรับ ofinfections การป้องกันโรคในช่วงระยะเวลาที่โพสต์หย่านมทันทีในทศวรรษที่ผ่านมา (Bosi et al., 2011) อย่างไรก็ตามได้มีการเพิ่มขึ้น. ตารางที่ 1 องค์ประกอบและระดับสารอาหารของอาหารพื้นฐาน (อากาศพื้นฐานแห้ง%) พรีมิกซ์ให้สารอาหารดังต่อไปนี้ต่อกิโลกรัมอาหาร: วิตามินเอ 16,000 IU; วิตามิน D3, 2,500 IU; วิตามินอี 60 IU; วิตามิน K3 4.5 มิลลิกรัม; วิตามิน B1,2.6 mg; วิตามินบี 2 8.7 มิลลิกรัม; วิตามินบี 6, 7.0 มิลลิกรัม; วิตามินบี 12, 0.03 มิลลิกรัม; วิตามินซี 200 มิลลิกรัม; กรด pantothenic 13 มก; กรด Nicotinic 35 มก; ไบโอติน 0.47 มิลลิกรัม; กรดโฟลิก, 0.85 มิลลิกรัม; เหล็ก 155 มก; ทองแดง 35 มิลลิกรัม; สังกะสี 100 มิลลิกรัม; แมงกานีส 25 มก; ไอโอดีน 0.35 มก; โคบอลต์ 0.2 มิลลิกรัม; ซีลีเนียม, 0.25 มิลลิกรัม; โคลีนคลอไรด์ 750 มก; phytase 500 FTU.pressure ในอุตสาหกรรมปศุสัตว์เพื่อลดหรือยุติการเพิ่มเติมเหล่านี้เพราะการพัฒนาศักยภาพต้านทาน ofantibiotic (เดวิส et al., 2004) ดังนั้นสารเติมแต่งทางเลือกที่จะช่วยให้การพัฒนาของการตอบสนองภูมิคุ้มกัน weanedpiglets จะสูง recommended.Chitosan เป็น polysaccharide ด่างธรรมชาติและปลอดสารพิษจะถูกสร้างขึ้นโดยการกระทำของ deacetylases ไคตินและเป็นส่วนประกอบของ keystructural พยาธิรพและเชื้อรา (Synowiecki และอัล Khateeb , 2003) Porporatto et al, (2005) ปีศาจ strated ไคโตซานที่ได้รับผลกระทบอย่างลึกซึ้งภูมิคุ้มกันเยื่อเมือกในลำไส้โดยเปิดใช้งานเม็ดเลือดขาว การศึกษาก่อนหน้าของเรา foundthat ไคโตซานการปรับปรุงการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันของร่างกายและโทรศัพท์มือถือในไก่เนื้อ (Li 2009) ลูกสุกรในหัวเรื่อง แต่มีการศึกษาที่ จำกัด การประเมินผลของไคโตซานต่อการทำงานของภูมิคุ้มกัน ดังนั้น studywas ของเราดำเนินการเพื่อตรวจสอบผลของไคโตซานในการทำงานของภูมิคุ้มกันของร่างกายและเซลล์ของลูกสุกรหย่านมและไคโตซานระดับ theappropriate เสริมเป็น agent.2 ภูมิคุ้มกันเลต วัสดุและวิธีการ methodsAll อธิบายไว้ในการทดลองนี้ได้รับอนุมัติจากการดูแลสัตว์และการใช้คณะกรรมการภายใน MongoliaAgricultural University.2.1 การออกแบบการทดลองและสัตว์ managementA รวม 180 ลูกสุกร (Duroc ×สีขาวขนาดใหญ่×แลนด์เรซ) ที่มีน้ำหนักตัวเริ่มต้นเฉลี่ย 7.6 กก. เป็น assignedrandomly 5 การรักษาที่มี 6 ซ้ำ (3 ปากกาของเพศชายและ 3 ปากกาของผู้หญิง) ในการรักษาแต่ละ 6 ลูกสุกรใน eachpen (4.0 × 4.2 มม.) การก่อตัวของอาหารพื้นฐานที่ถูกแสดงให้เห็นในตารางที่ 1 อาหารทั้งหมดถูกนำเสนอในรูปแบบอาหาร ห้า dietarytreatments เสริมด้วย 0 (ควบคุม), 100, 500, 1000 หรือ 2000 มก. ไคโตซาน / ฟีดกิโลกรัมอาหารพื้นฐานตามลำดับ Pigletswere หย่านมเมื่ออายุ 28 d ที่เขียนอยู่ในอาคารสถานรับเลี้ยงเด็กที่มีการควบคุมอุณหภูมิที่มีอุณหภูมิถูกเก็บรักษาไว้at26-27◦Cและความชื้นสัมพัทธ์คือประมาณ 65-70% ลูกสุกรหย่านมมีหนึ่งสัปดาห์ของการอยู่อาศัยและการจัดการ adaptationbefore ระยะทดลอง ระยะเวลาทดลอง 28 d ฟีดและน้ำที่มีอยู่ได้อย่างอิสระ ไคโตซานที่ใช้ในการพิจารณาคดี inthis ถูกจัดให้โดยจี่ Haidebei ทะเลชีววิศวกรรม จำกัด (จี่หนานประเทศจีน) สิ degreeof ไคโตซานที่มุ่งมั่นจะเป็น 85.09% และความหนืด 45 cps.2.2 วัน collectionOn ตัวอย่าง 14 และ 28 ซึ่งเป็นหนึ่งในหมูจากแต่ละซ้ำของการรักษาแต่ละคนถูกสุ่มเลือกและตัวอย่างเลือด obtainedby เจาะ vena ลาคาวา กลุ่มตัวอย่างเลือดหมุนเหวี่ยงที่ 3000 ×กรัมเป็นเวลา 20 นาทีที่4◦Cเพื่อให้ซีรั่ม เซรั่มที่ wasstored -20◦Cจนการวิเคราะห์ภูมิคุ้มกันบกพร่อง, cytokines และ sCD4, sCD8 ที่จุดเริ่มต้นของการทดลองซ้ำหนึ่งลูกสุกร fromeach ของการรักษาแต่ละคนถูกสุ่มเลือกและฉีด 1 มิลลิกรัม ovalbumin / กก (ซิกม่าสหรัฐอเมริกา) Bloodsamples ถูกเก็บรวบรวมโดยเจาะ vena ลาคาวาในวันที่ 0 (ก่อนที่จะฉีด), 14 และ 28 เพื่อทดสอบ antibodyconcentrations พหูพจน์ที่เฉพาะเจาะจงในซีรั่ม กลุ่มตัวอย่างเลือดหมุนเหวี่ยงที่ 3000 ×กรัมเป็นเวลา 20 นาทีและเก็บไว้ที่-20◦Cจนกว่า analysis.For การกำหนดเนื้อหาของ sIgA ในเยื่อบุลำไส้เล็กหมูที่ใช้ในการรับตัวอย่างเลือดเสียสละ andthe jejunum และ ileum ถูกถอดออกได้อย่างรวดเร็ว และจากนั้นตัวอย่างที่ถูกตัดและล้างด้วยพีบีเอส (pH 7.2-7.4) Intestinalmucosa ถูกขูดเบา ๆ ด้วยสไลด์ชั่งน้ำหนัก 1 กรัมและโอนไปยังหลอดหมุนเหวี่ยงเพิ่มน้ำเกลือ 9 มิลลิลิตรแล้วมือ homogenizedby homogenates ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 3000 ×กรัมเป็นเวลา 20 นาทีและสารละลายที่ถูกเก็บไว้ที่-20◦Cจนการวิเคราะห์. ตารางที่ 2 ผลของไคโตซานในระดับของภูมิคุ้มกันบกพร่องและพหูพจน์-IgG ในซีรั่มเช่นเดียวกับ sIgA ของ jejunum และ ileum เยื่อเมือก ในลูกสุกรหย่านม. หมายเหตุ: IgG = อิมมูโนซ; IgM = อิมมูโน M; จีเอ = อิมมูโน; พหูพจน์-IgG = IgG ovalbumin; SEM = ข้อผิดพลาดมาตรฐานของค่าเฉลี่ย. 2.3 การตรวจหาภูมิคุ้มกันบกพร่อง, cytokines, sCD4 และ sCD8 ใน serumThe IgG, IgA และ IgM ได้รับการพิจารณากับชุด ELISA สุกร (Bethyl Laboratories, Inc, USA) และ minimumdetectability เป็น 15.6 มิลลิกรัม / ลิตร อิลลินอยส์-1, IL-2 และ TNF-? วัดกับชุด ELISA สุกรใช้ได้ในเชิงพาณิชย์ fromthe BIOSOURCE อินเตอร์เนชั่นแนลอิงค์ (แคมาริลโล, สหรัฐอเมริกา) ขั้นต่ำ detectability ของ IL-1, IL-2 และ TNF-? มี 0.003, 0.01 and0.03 ng / L กับ 12-13% 7-10% และ 11-12% intra- และกันมี CV ตามลำดับ sCD4 และ sCD8 วัด witha ชุด ELISA เชิงพาณิชย์สุกรจาก BIOSOURCE อินเตอร์เนชั่นแนลอิงค์ (แคมาริลโล, สหรัฐอเมริกา) ปริมาณที่ตรวจพบต่ำสุด was0.1 U / มิลลิลิตร 9% และ 15% intra- และกันมี CV, respectively.2.4 การตรวจหาแอนติบอดี ovalbumin ที่ระบุในเนื้อหา serumOVA-IgG ได้รับการพิจารณากับชุด ELISA สุกรจาก R & D Systems, Inc (Minneapolis, สหรัฐอเมริกา) สั้น ๆ ตัวอย่างมาตรฐานเจือจางลำดับและความเข้มข้นสุดท้ายเป็น 120, 80, 40, 20 และ 10 กรัม / มิลลิลิตรตามลำดับ Sampleswere เพิ่มลงในหลุมตัวอย่างการทดสอบ แผ่นที่ได้รับการบ่มเป็นเวลา 30 นาทีที่แล้ว37◦Cถูกล้างและเพิ่ม HRP-conjugatereagent การดูดกลืนแสงที่ 450 นาโนเมตรหลังจากที่เพิ่มโซลูชั่นที่ครบวงจรและใน 15 นาทีหลังจากที่ได้อ่าน coloring.2.5 อิมมูโนหลั่งเฉพาะ analysisThe เฉพาะ sIgA ในเยื่อบุลำไส้เล็กก็ตั้งใจกับชุด ELISA หมู (R & D ระบบ) ขั้นตอนการทดสอบ wassimilar ด้วยความมุ่งมั่นของพหูพจน์-IgG.2.6 การวิเคราะห์ทางสถิติ analysisRegression ได้ดำเนินการในการประเมินผลกระทบเชิงเส้นและสมการกำลังสองของไคโตซานในลูกสุกร criteriain การตอบสนองต่างๆโดยการใช้ซอฟต์แวร์ SAS 9.0 แนวโน้มได้รับการพิจารณาที่สำคัญหากค่าความน่าจะเป็นของ P <0.05 เป็น obtained.3 ResultsWith เพิ่มขึ้นนอกเหนือจากไคโตซานความเข้มข้นของ IgG เซรั่มเพิ่มขึ้นในลักษณะที่ปริมาณขึ้นอยู่กับกำลังสอง (P <0.05) ในขณะที่จีเอซีรั่มและความเข้มข้นของ IgM ไม่ได้เปลี่ยนแปลง (ตารางที่ 2) เซรั่มเนื้อหาพหูพจน์-IgG เฉลี่ยของลูกสุกรในแต่ละ groupwas ประมาณ 30? g / ml และมีความแตกต่างระหว่างการรักษาไม่ก่อนการพิจารณาคดี (ตารางที่ 2) อย่างไรก็ตาม, เซรั่มโอวีเอ-IgG wasenhanced โดยไคโตซาน quadratically (P <0.05) ในวันที่ 14 และการปรับปรุงเป็นเส้นตรงหรือ quadratically (P <0.05) ในวันที่ 28 Withincreasing ไคโตซานที่ sIgA ถูกปรับปรุงในเยื่อบุ ileum ในลักษณะเชิงเส้นหรือสมการกำลังสอง (P <0.05) ในวันที่ 14 และ wasimproved quadratically ในเยื่อบุลำไส้เล็กส่วนกลางในวันที่ 28 (P <0.05) (ตารางที่ 2). ตารางที่ 3 ผลของไคโตซานต่อความเข้มข้นของ sCD4 ที่ sCD8 และ cytokines ในซีรั่มของลูกสุกรหย่านม. ผลที่ได้แสดงให้เห็นว่า ไคโตซานซีรั่มลดลง CD4 ในลักษณะปริมาณขึ้นอยู่กับกำลังสอง (P <0.05) และ sCD8 ในลักษณะ linearor กำลังสองในวันที่ 28 (p <0.05) (ตารางที่ 3) การลดลงสูงสุดของ sCD4 1000 mg / kg กลุ่มไคโตซานและ sCD8 in500 mg / kg กลุ่มไคโตซานเป็น 13.71% และ 13.79% ในวันที่ 28 ตามลำดับ ไคโตซานเซรั่มเพิ่ม quadratically IL-1andIL-2 ในวันที่ 14 เช่นเดียวกับเซรั่ม TNF-? ในลูกสุกรในวันที่ 28 (p <0.05) (ตารางที่ 3) นอกจากนี้ลูกสุกร 500 และ 1000 mg / การรักษา kgchitosan มีซีรั่มที่สูงขึ้น sIgA, IL-1, IL-2 และ TNF-? ความเข้มข้น compar

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ผลของการเสริมไคโตซานใน humoral และการทำงานของเซลล์ทางภูมิคุ้มกันในลูกสุกรหลังหย่านม
B S T R A C T
ผลของการเสริมไคโตซานใน humoral และการทำงานของเซลล์ทางภูมิคุ้มกัน
ในลูกสุกรหลังหย่านมได้ หนึ่งร้อยแปดสิบและลูกสุกรหย่านมที่อายุ 28 D
( ดีที่สุด



××สีขาวขนาดใหญ่แลนเรซ ) ได้รับมอบหมายจากการทดลองกับ
5 คน6 repetitions ในการรักษาแต่ละ ลูกสุกรใน 5 การทดลองเลี้ยงบนอาหารที่เติมแรกเริ่ม
0 ( control ) , 100 , 500 , 1000 และ 2000 มิลลิกรัม / กิโลกรัม ไคโตซานอาหารสัตว์ ผลพบว่า ไคโตซาน ซีรั่มอิมมูโนโกลบูลินดีขึ้น
g ( IgG ) ความเข้มข้นของลูกสุกร
ในลักษณะปิดกั้นกำลังสอง ( P < 0.05 ) และเพิ่มขึ้น
โอวัลบูมินเฉพาะเซรั่ม( OVA ) เนื้อหา IgG ในเส้นหรือลักษณะปิดกั้นกำลังสอง ( P < 0.05 ) ในวันที่ 28 ,
ระดับอิมมูโนโกลบูลิน ( IgA ) และอิมมูโนโกลบูลิน ( IgM ) ความเข้มข้นไม่
เปลี่ยน การหลั่งด้วยไคโตซาน อิมมูโนโกลบูลิน ( SIGA ) เพิ่มขึ้น
ในส่วนพื้นผิวกำลังสองเชิงเส้น ( หรือลักษณะ ( P < 0.05 ) ในวันที่ 14 และ
เกี่ยวกับสมการ 2 ชั้นในการปรับปรุงพื้นผิวเยื่อเมือกในเดือน 28 วัน ( P < 0.05 ) นอกจากนี้ ไคโตซาน เซรั่มละลาย
ลดลงความเข้มข้นของ CD4 ( scd4 ) ในลักษณะปิดกั้น
กำลังสอง ( P < 0.05 ) และ soluble CD8 ( scd8 ) ในลักษณะเชิงเส้นกำลังสอง หรือปิดกั้น
( P < 0.05 ) ในวันที่ 28 ไคโตซานเซรั่มเพิ่มความเข้มข้นของ interleukin-1
เกี่ยวกับสมการ 2 ชั้น( 1 ) และการเรียนแบบร่วมมือ ( 3 ) ในวันที่ 14 เป็น เซรั่มเข้มข้นของปัจจัยเนื้องอกเนื้อร้าย
อัลฟ่า ( TNF -  ) 28 วัน ( P < 0.05 ) ผลลัพธ์เหล่านี้แสดงให้เห็นว่าอาหารเสริมไคโตซานและเซลล์ดีขึ้น
humoral ตอบสนองทางภูมิคุ้มกันของลูกสุกรหลังหย่านมใน
รายงานลักษณะ และในการทดลองนี้เหมาะสมเพิ่มปริมาณของไคโตแซน
อาจอยู่ระหว่าง 500 และ 1000 มก. / กก.
คำสำคัญ :