For our experiments we modified two

For our experiments we modified two media; agar was reduced from 10 to 6 g l−1 and sucrose from 30 to 20 g l−1 in
MS medium (hereafter referred to as modified MS) and agar was reduced from 16 to 6 g l−1 and fructose was replaced with sucrose in Robert Ernst medium (hereafter referred to as modified RE; cf. Arditti, 1982). To assess the effect of reduced salt and addition of coconut water (CW) as a supplement, the harvested seeds were tested in six compositions: (1) 1/2 strength modified MS;
(2) 1/2 strength modified MS supplemented with 10% CW;
(3) 1/4 strength modified MS;
(4) 1/4 strength
modified MS supplemented with 10% CW;
(5) modified RE with 1.0 g l−1 activated charcoal;
(6) modified RE with 1.0 g l−1
activated charcoal and 10% CW. In all media pHwas adjusted to 5.8 using 1 mol l−1 NaOHor 1 mol l−1 HCl. Each treatment was replicated 15 times in 200 ml sterile clear glass jars with 30 ml of media solution. Approximately 100 seeds, each sterilized for 5 min in 1% NaOCl, were placed in each jar under sterile conditions. Seed placement was done by suspending seeds in 0.1% autoclaved Agar solution using a sterile syringe and pipetting out 1 ml for each replicate. After seed placement, the exact number of seeds in each jar was counted. Seeds were then allowed to germinate in tissue culture rooms under a 12 h dark and 12 h light cycle. We used cool white fluorescent lights with approximately 200 μ molm−2 s−1, for the photoperiod cycle condition. In orchids germination and seedling development are divided into six stages including stage 0 the ungerminated seed and were scored as described by Arditti (1967). Germination (stage 1), defined as imbibed seeds still covered by testa and with a white and green color visual to the eye, was assessed three months after seed sowing

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สำหรับการทดลองของเราที่เรามีการปรับเปลี่ยนทั้งสองสื่อ วุ้นก็ลดลง 10-6 GL-1 และซูโครส 30-20 GL-1 ใน
อาหารสูตร MS (ต่อไปนี้จะเรียกว่าการแก้ไข MS) และวุ้นก็ลดลง 16-6 GL-1 และฟรุกโตสถูกแทนที่ด้วยน้ำตาลซูโครสในโรเบิร์ตเอิร์นส์ ขนาดกลาง (ต่อไปนี้จะเรียกว่าเป็นเรื่องการแก้ไข; cf เลย Arditti, 1982) เพื่อประเมินผลกระทบของเกลือที่ลดลงและการเพิ่มขึ้นของน้ำมะพร้าว (CW) เป็นอาหารเสริมเมล็ดที่เก็บเกี่ยวได้มีการทดสอบในหกองค์ประกอบ: (1) 1/2 ความแข็งแรงการแก้ไข MS;
(2) การปรับเปลี่ยนความแข็งแรง 1/2 MS เสริมด้วย 10 CW%;
(3) 1/4 ความแข็งแรงการแก้ไข MS;
(4) 1/4 ความแข็งแรง
การแก้ไข MS เสริมด้วย 10% CW;
(5) การแก้ไข RE 1.0 GL-1 ถ่าน;
(6) การแก้ไข RE 1.0 gl- 1
ถ่านและ 10% CW ในทุกสื่อ pHwas ปรับ 5.8 ใช้ 1 mol L-1 NaOHor 1 mol L-1 HCl การรักษาแต่ละครั้งได้รับการจำลองแบบ 15 ครั้งใน 200 มล. ขวดแก้วที่ผ่านการฆ่าเชื้อที่ชัดเจนกับ 30 มล. ของการแก้ปัญหาสื่อ ประมาณ 100 เมล็ดฆ่าเชื้อแต่ละเวลา 5 นาทีใน 1% NaOCl, ถูกวางไว้ในแต่ละขวดภายใต้เงื่อนไขที่ผ่านการฆ่าเชื้อ ตำแหน่งเมล็ดพันธุ์ที่ได้กระทำโดยการเพาะเมล็ดในการระงับการนึ่งฆ่าเชื้อ 0.1% การแก้ปัญหาวุ้นใช้เข็มฉีดยาฆ่าเชื้อและปิเปตออก 1 มิลลิลิตรสำหรับแต่ละซ้ำ หลังจากที่การจัดวางเมล็ดจำนวนที่แน่นอนของเมล็ดในแต่ละขวดนับ เมล็ดพันธุ์พืชที่ได้รับอนุญาตแล้วจะงอกในห้องเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อภายใต้ความมืด 12 ชั่วโมงและวงจรแสง 12 ชั่วโมง เราใช้ไฟเรืองแสงสีขาวนวลมีประมาณ 200 μ molm-2 S-1 สำหรับสภาพแสงรอบ ในกล้วยไม้งอกและการพัฒนาต้นกล้าจะแบ่งออกเป็นหกขั้นตอนรวมทั้งขั้นตอน 0 เมล็ดตัวอย่างควบคุมถูกยิงตามที่อธิบาย Arditti (1967) การงอก (ระยะที่ 1) กำหนดให้เป็นเมล็ดครองยังคงปกคลุมด้วย Testa และมีสีขาวและสีเขียวที่มองเห็นตาได้รับการประเมินสามเดือนหลังจากการหว่านเมล็ด

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การทดลองของเรา เราปรับเปลี่ยนสองสื่อ วุ้นก็ลดลงจาก 10 เป็น 6 g L − 1 และน้ำตาลซูโครส 30 20 g L − 1MS ( ต่อจากนี้จะเรียกว่า MS ดัดแปลง ) และวุ้นลดลงจาก 16 6 g L − 1 ฟรุกโตสและถูกแทนที่ด้วยซูโครสในโรเบิร์ต Ernst ขนาดกลาง ( ต่อเรียกว่าแก้ไขอีกครั้ง ; CF arditti , 1982 ) เพื่อศึกษาผลของการลดเกลือและการเพิ่มของน้ำมะพร้าว ( CW ) เป็นอาหารเสริม , การเก็บเกี่ยวเมล็ดถูกทดสอบใน 6 องค์ประกอบ ( 1 ) แรง 1 / 2 แก้ไข MS ;( 2 ) 1 / 2 แรง อาหารสูตร MS ดัดแปลงกับ 10% CW ;( 3 ) 1 / 4 แรงแก้ไข MS ;( 4 ) 1 / 4 แรงMS ดัดแปลงที่เติม 10% CW ;( 5 ) ปรับปรุงใหม่ 1.0 g L − 1 ถ่าน ;( 6 ) การแก้ไขอีกครั้งกับ 1.0 กรัมต่อลิตร− 1ถ่านและ 10% CW ทุกสื่อใน phwas ปรับใช้ 1 mol − 1 5.8 ลิตร naohor 1 mol − 1 ลิตร hcl . การรักษาแต่ละครั้งเป็นจำนวน 15 ครั้งใน 200 ml ฆ่าเชื้อล้างขวดแก้วกับ 30 มล. มีเดีย โซลูชั่น ประมาณ 100 เมล็ด แต่ละฆ่าเชื้อเป็นเวลา 5 นาทีใน 1 % ไม่ระบุไว้ในแต่ละโถ , ภายใต้สภาวะปลอดเชื้อ การจัดวางเมล็ดทำได้โดยระงับเมล็ดใน 0.1% วุ้นสังเคราะห์สารละลายโดยใช้เข็มปลอดเชื้อและ pipetting ออก 1 มล. สำหรับแต่ละจําลอง หลังจากวางเมล็ด จำนวนที่แน่นอนของเมล็ดในแต่ละขวดก็นับ เมล็ดได้รับอนุญาตแล้วให้งอกในห้องเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อใต้ 12 H มืดและวงจรแสง 12 ชั่วโมง . เราใช้เย็นสีขาวเรืองแสงไฟประมาณ 200 μ molm − 2 s − 1 สำหรับช่วงของเงื่อนไข การงอกของต้นกล้ากล้วยไม้และการพัฒนาจะแบ่งออกเป็น 6 ขั้นตอน ได้แก่ ขั้น 0 ungerminated เมล็ดพันธุ์และระดับคะแนนตามที่อธิบายไว้โดย arditti ( 1967 ) การงอก ( ระยะที่ 1 ) หมายถึงการนำเมล็ดยังปกคลุมด้วยเทสลา และมีสีขาว และสีเขียว เห็นกับตาและสามเดือนหลังจากการหว่านเมล็ดพันธุ์