A maximum of 188mgof Au g−1 dry wei

A maximum of 188mgof Au g−1 dry weight was observed in BJ roots when exposed 10,000ppm Au solution for 24 h. MS roots accumulated 193mg of Au g−1 dry weight at the same conditions. The Translocation Factor (TF), defined as the ratio of metal accumulated in the shoots to metal accumulated in the roots, was between 0.15–0.50 in BJ and 0.25–0.97 in MS. These results indicate an increase in TF with an increase in concentration and thus increase in metal transport
from roots to shoots was observed with increased concentration of Au in the solution.The roots of both BJ and MS in general showed a greater UR defined as the ratio of Au concentration in plant tissues to the concentration in the solution to a maximum of 994 in MS and 906 in BJ. On average, MS exhibited a higher root and shoot UR
than BJ. Fig. 2a shows a decrease in the relative uptake of Au
with an increase in solution Au concentration. The greater UR of
the roots suggests restricted translocation of Au to shoots once
absorbed. Although the reason for this restricted translocation was
not able to be established from these experiments, it is possible
that significant quantities of Au were retained in the root vacuoles,
and/or apoplasts. This result suggests that plant roots rapidly
deplete Au ions from the solution and hence have a high affinity for
Au+.
To date, no biological mechanism has been elucidated for the
uptake of noble metals nor has the form of accumulated Au in
plants been studied. In general however, as indicated by Anderson
et al. [20], plants accumulate Au because it is present in an
available form in solution. Research on heavy metal uptake suggests
rhizosecretion of biologically active compounds, i.e. organic
acids (e.g. histidine), proteins (mainly phytochelatins and metallothionins),
isoflavonoids and enzymes, occurs in response to metal
exposure [13,25–28]. These compounds may be responsible for the
Au accumulation observed in MS and BJ in this work. Further biochemical
and physiological studies are required on metal uptake,
accumulation and sequestration in plants.
The time of exposure to a metal is another critical factor influencing
the uptake of metal through the root membrane [17,28]. To
this end, the effect of exposure time (24, 48 or 72 h) was studied at
all higher concentrations (100, 1000 and 10,000 ppm). Au uptake
was found to markedly increase with increasing exposure time in
MS (Fig. 2b), to a maximum of 287mgAu g−1 dry weight of roots
after 72 h exposure at 10,000ppm of Au. At 1000 ppm, the roots of
MS accumulated 98–168mgAu g−1 dry weight at exposure times
from 24-72 h. This trend of increasing metal uptake with increasing
exposure time was observed across all Au concentrations studied
for MS. However, for BJ, Au uptake increased from 24 to 48 h across
all concentrations but then decreased from 48 to 72 h, indicating
some kind of exclusion mechanism had been activated (Fig. 2c). The
process of the accumulated metal elimination by the roots indicates
Au to be phloem mobile.
At 1000ppm Au in the solution, Au uptake was 124mgAu g−1
dry weight after 24 h of exposure, 129mgAu g−1 dry weight after
48 h reducing to 93mgAu g−1 dry weight after 72 h of exposure.
Cells, when starved of a metabolite, show increased influx of that
metabolite. This can explain the initial high uptake of Au in both
MS and BJ. Once the cells are saturated, the uptake is dependent
on the external concentration and availability of free ion exchange
sites at the root surface. The initial rapid uptake may be because
of diffusion, metal homeostasis or an ion exchange mechanism [6]
and is indicative of the fact that BJ had reached its threshold level
after 48 h exposure time.
Similar results were observed at all the lower concentrations
(5, 10, 20, 40 and 80 ppm) wherein the data suggest an increase in
uptake with increased exposure time and concentration for both
BJ and MS. ICP-OES analysis of plant tissues revealed that at each
exposure concentration, the majority of Au was associated with

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

188mgof Au g−1 น้ำหนักแห้งสูงสุดที่พบในราก BJ เมื่อสัมผัส 10000 ppm อูโซลูชั่นสำหรับ 24 h. MS รากสะสม 193 มิลลิกรัมของน้ำหนักแห้ง g−1 Au ในเงื่อนไขเดียวกัน ในการสับเปลี่ยนปัจจัย (TF), กำหนดเป็นอัตราส่วนของโลหะที่สะสมในยอดสะสมในราก โลหะระหว่าง 0.15-0.50 ใน BJ และ 0.25 – 0.97 ใน MS ได้ ผลเหล่านี้แสดงการเพิ่มรหัส ด้วยการเพิ่มความเข้มข้น และเพิ่มดังนั้น ในการขนส่งโลหะจากรากเพื่อถ่ายภาพถูกสังเกต ด้วยเพิ่มความเข้มข้นของ Au ในโซลูชัน โดยทั่วไปรากของ BJ และ MS พบว่ายูมากกว่าที่กำหนดเป็นอัตราส่วนของความเข้มข้นของ Au ในเนื้อเยื่อพืชเพื่อสมาธิในการแก้ปัญหาสูงสุด 994 ใน MS และ 906 ใน BJ โดยเฉลี่ย MS จัดแสดงยูรากและยิงสูงกว่ากว่า BJ Fig. 2a แสดงลดลงในสัมพันธ์ต่อการเจริญของ Auด้วยการเพิ่มความเข้มข้นของอูโซลูชั่น ยูมากกว่าของรากแนะนำจำกัดการสับเปลี่ยนของ Au การถ่ายภาพครั้งเดียวดูดซึม แม้ว่าเหตุผลจำกัดการสับเปลี่ยน ได้ไม่สามารถสร้างจากการทดลองเหล่านี้ มันเป็นไปได้ที่สำคัญปริมาณของ Au ถูกเก็บไว้ใน vacuoles รากหรือ apoplasts ผลนี้แสดงให้เห็นว่า พืชรากอย่างรวดเร็วทำอูประจุจากโซลูชัน และดังนั้นจึง มีความสัมพันธ์สูงสำหรับอู +วันที่ กลไกชีวภาพที่ได้รับ elucidated สำหรับการของตระกูลโลหะ หรือมีรูปแบบของ Au สะสมในพืชการศึกษา โดยทั่วไปอย่างไรก็ตาม เป็นระบุโดยแอนเดอร์สันal. ร้อยเอ็ด [20], พืชสะสมอู เพราะมีอยู่ในตัวแบบฟอร์มที่ใช้ในการแก้ปัญหา แนะนำงานวิจัยในการดูดซับโลหะหนักrhizosecretion สารชิ้นงาน อินทรีย์เช่นกรด (เช่น histidine), โปรตีน (ส่วนใหญ่เป็น phytochelatins และ metallothionins),isoflavonoids และเอนไซม์ เกิดขึ้นในโลหะแสง [13,25-28] สารเหล่านี้อาจชอบการสังเกตในการทำงานนี้ใน MS และ BJ สะสม Au ชีวเคมีเพิ่มเติมและจำเป็นในการดูดซับโลหะ ศึกษาสรีรวิทยาสะสมและ sequestration ในพืชเวลาของการสัมผัสกับโลหะจะมีอิทธิพลต่อปัจจัยสำคัญอื่นดูดซับโลหะผ่านเมมเบรนราก [17,28] ถึงการนี้ ผลของแสงเวลา (24, 48 หรือ 72 h) ได้ศึกษาที่ความเข้มข้นสูงทั้งหมด (100, 1000 และ 10000 ppm) ดูดซับ Auพบเพิ่มขึ้นอย่างเด่นชัดกับระยะเวลาการรับแสงเพิ่มขึ้นในMS (Fig. 2b), สูงสุด 287mgAu g−1 แห้งน้ำหนักของรากหลังจากถ่ายภาพ 72 h ที่ 10000 ppm ของ Au ที่ 1000 ppm รากของMS สะสมน้ำหนักแห้ง g−1 98-168mgAu เวลาเปิดรับแสงจาก 24-72 h แนวโน้มนี้เพิ่มดูดซับโลหะเพิ่มขึ้นเวลาสัมผัสถูกสังเกตในความเข้มข้น Au ทั้งหมดที่ศึกษาสำหรับ MS อย่างไรก็ตาม สำหรับ BJ อูดูดซับเพิ่มขึ้นจาก 24 h 48 ข้ามความเข้มข้นทั้งหมดแล้วแต่ลดลงจาก 48 ถึง 72 h แสดงบางชนิดของการแยกกลไกได้เปิด (Fig. 2 c) ที่บ่งชี้ว่า กระบวนการของการกำจัดโลหะสะสมโดยรากAu จะ เคลื่อนเปลือกชั้นใน1000ppm Au ในโซลูชัน ดูดซับ Au ถูก 124mgAu g−1น้ำหนักแห้งหลังจาก 24 ชมของการสัมผัส น้ำหนักหลังจากซักแห้ง 129mgAu g−1h 48 ลด 93mgAu g−1 แห้งน้ำหนักหลัง h 72 ของแสงเซลล์ เมื่อ starved ของ metabolite แสดงเพิ่มขึ้นอีกที่metabolite นี้สามารถอธิบายเริ่มต้นสูงต่อการเจริญของ Au ทั้งMS และ BJ เมื่ออิ่มตัวเซลล์ การดูดซับขึ้นอยู่ความเข้มข้นภายนอกและพร้อมใช้งานของสารกรองฟรีไซต์ที่ผิวราก ดูดซับอย่างรวดเร็วเริ่มต้นอาจเนื่องจากแพร่ ภาวะธำรงดุลโลหะ หรือกลไกการแลกเปลี่ยนไอออน [6]และเป็นตัวชี้ให้เห็นความจริงที่ว่า BJ มีถึงระดับขีดจำกัดหลังจากเวลาแสง 48 hผลคล้ายถูกสังเกตที่ความเข้มข้นต่ำกว่า(5, 10, 20, 40 และ 80 ppm) นั้นข้อมูลแนะนำการเพิ่มดูดซับแสงเพิ่มเวลาและความเข้มข้นทั้งBJ และนางสาววิจัยวิเคราะห์เนื้อเยื่อพืชเปิดเผยแต่ละที่ความเข้มข้นของแสง ส่วนใหญ่ของ Au เกี่ยวข้องกับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สูงสุดของ 188mgof Au-1 กรัมน้ำหนักแห้งพบว่าในราก BJ เมื่อสัมผัส 10,000ppm แก้ปัญหา Au เวลา 24 ชั่วโมง ราก MS สะสม 193mg ของ Au-1 กรัมน้ำหนักแห้งที่สภาวะเดียวกัน ปัจจัยโยกย้าย (TF) กำหนดเป็นอัตราส่วนของโลหะสะสมในหน่อโลหะสะสมในรากที่อยู่ระหว่าง 0.15-0.50 ใน BJ และ 0.25-0.97 ใน MS ผลการศึกษานี้แสดงให้เห็นเพิ่มขึ้นในการลุยกับการเพิ่มขึ้นของความเข้มข้นและทำให้เพิ่มในการขนส่งโลหะ
จากรากหน่อจะพบว่ามีความเข้มข้นที่เพิ่มขึ้นของ Au ในราก solution.The ทั้งบีเจและ MS ทั่วไปแสดงให้เห็นมากขึ้น UR กำหนดเป็นอัตราส่วน ความเข้มข้นของ Au ในเนื้อเยื่อพืชกับความเข้มข้นในการแก้ปัญหาได้สูงสุดถึง 994 ใน MS และ 906 ใน BJ โดยเฉลี่ย MS แสดงรากที่สูงขึ้นและการถ่าย UR
กว่า BJ มะเดื่อ 2a แสดงให้เห็นถึงการลดลงของการดูดซึมญาติของ Au
กับการเพิ่มขึ้นในการแก้ปัญหาความเข้มข้น Au UR มากขึ้นของ
รากแนะนำโยกย้าย จำกัด ของ Au การยิงครั้งเดียว
ดูดซึม แม้ว่าเหตุผลในการโยกย้ายครั้งนี้มี จำกัด
ไม่สามารถที่จะจัดตั้งขึ้นจากการทดลองเหล่านี้ก็เป็นไปได้
ว่าปริมาณที่มีนัยสำคัญของ Au ถูกเก็บไว้ใน vacuoles ราก
และ / หรือ apoplasts ผลที่ได้นี้แสดงให้เห็นว่ารากพืชอย่างรวดเร็ว
ทำให้หมดสิ้นลงไอออน Au จากการแก้ปัญหาและด้วยเหตุนี้มีความสัมพันธ์สูงสำหรับ
Au +.
ในวันที่ไม่มีกลไกทางชีวภาพได้รับการอธิบายสำหรับ
การดูดซึมของโลหะมีเกียรติหรือมีรูปแบบของ Au สะสมใน
พืชได้รับการศึกษา แต่โดยทั่วไปตามที่ระบุโดยเดอร์สัน
และอัล [20], พืชสะสม Au เพราะมันอยู่ใน
รูปแบบที่มีอยู่ในการแก้ปัญหา งานวิจัยเกี่ยวกับการดูดซึมโลหะหนักที่แสดงให้เห็น
rhizosecretion ของสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพอินทรีย์เช่น
กรด (เช่นฮิสติดีน), โปรตีน (ส่วนใหญ่ phytochelatins และ metallothionins)
isoflavonoids และเอนไซม์ที่เกิดขึ้นในการตอบสนองต่อโลหะ
การสัมผัส [13,25-28] สารเหล่านี้อาจจะเป็นผู้รับผิดชอบในการ
สะสม Au สังเกตใน MS และบีเจในงานนี้ นอกจากนี้ทางชีวเคมี
และสรีรวิทยาการศึกษาจะต้องเกี่ยวกับการดูดซึมโลหะ
สะสมและการกักเก็บในพืช.
เวลาของการสัมผัสกับโลหะเป็นอีกหนึ่งปัจจัยสำคัญที่มีอิทธิพลต่อ
การดูดซึมของโลหะที่ผ่านเยื่อหุ้มราก [17,28] จะ
ด้วยเหตุนี้ผลกระทบของระยะเวลารับแสง (24, 48 หรือ 72 ชั่วโมง) ได้รับการศึกษาที่
ทุกความเข้มข้นสูง (100, 1000 และ 10,000 ppm) การดูดซึม Au
พบว่าเพิ่มขึ้นอย่างเห็นได้ชัดเวลารับแสงที่เพิ่มขึ้นใน
MS (รูป. 2b) สูงสุด 287mgAu-1 กรัมน้ำหนักแห้งของราก
หลังจากได้รับ 72 ชั่วโมงที่ 10,000ppm ของ Au ที่ 1000 ppm, ราก
สะสม 98-168mgAu MS-1 กรัมน้ำหนักแห้งในช่วงเวลาที่เปิดรับ
24-72 ชั่วโมง แนวโน้มของการเพิ่มการดูดซึมโลหะที่มีเพิ่มขึ้นนี้
เวลารับแสงที่ถูกพบในทุกระดับความเข้มข้น Au ศึกษา
สำหรับ MS แต่สำหรับ BJ, การดูดซึม Au เพิ่มขึ้น 24-48 ชั่วโมงทั่ว
ทุกความเข้มข้นลดลง แต่แล้ว 48-72 ชั่วโมงแสดงให้เห็น
ชนิดของกลไกการยกเว้นบางส่วนที่ได้รับการเปิดใช้งาน (รูป. 2c)
ขั้นตอนการตัดโลหะสะสมรากบ่งชี้
Au จะเป็นใยเปลือกไม้มือถือ.
1000 ส่วนในล้านที่ Au ในการแก้ปัญหาการดูดซึมเป็น 124mgAu Au-1 กรัม
น้ำหนักแห้งหลังจาก 24 ชั่วโมงของการเปิดรับ 129mgAu-1 กรัมน้ำหนักแห้งหลังจาก
48 ชั่วโมงเพื่อลด 93mgAu-1 กรัมน้ำหนักแห้งหลังจาก 72 ชั่วโมงของการเปิดรับ.
เซลล์เมื่อหิวโหยของสารแสดงการไหลเข้าเพิ่มขึ้นจากการที่
สาร นี้สามารถอธิบายการดูดซึมสูงเริ่มต้นของ Au ทั้ง
MS และ BJ เมื่อเซลล์จะอิ่มตัวการดูดซึมจะขึ้นอยู่
ในความเข้มข้นภายนอกและความพร้อมของการแลกเปลี่ยนไอออนฟรี
เว็บไซต์ที่พื้นผิวราก การดูดซึมอย่างรวดเร็วเริ่มต้นอาจจะเป็นเพราะ
การแพร่สภาวะสมดุลโลหะหรือกลไกการแลกเปลี่ยนไอออน [6]
และแสดงให้เห็นถึงความจริงที่ว่า BJ ได้ถึงระดับเกณฑ์ของ
การเปิดรับหลังจากเวลา 48 ชม.
ผลที่คล้ายกันถูกตั้งข้อสังเกตในทุกระดับความเข้มข้นต่ำ
(5 , 10, 20, 40 และ 80 ppm) นั้นข้อมูลที่แสดงให้เห็นการเพิ่มขึ้นของ
การดูดซึมที่มีเวลาเปิดรับเพิ่มขึ้นและความเข้มข้นของทั้ง
บีเจและ MS การวิเคราะห์ ICP-OES ของเนื้อเยื่อพืชเปิดเผยว่าในแต่ละ
ความเข้มข้นของการเปิดรับส่วนใหญ่ของ Au มีความสัมพันธ์กับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

สูงสุดของ 188mgof AU − 1 กรัมน้ำหนักแห้งและพบในราก BJ เมื่อสัมผัส 10000ppm AU โซลูชั่นเป็นเวลา 24 ชั่วโมง นางสาวรากสะสม 193mg AU − 1 กรัมน้ำหนักแห้งในเงื่อนไขเดียวกัน ปัจจัยโยกย้าย ( TF ) หมายถึง อัตราส่วนของโลหะสะสมในยอดโลหะสะสมในราก อยู่ระหว่าง 0.15 และ 0.25 - 0.50 ใน BJ และ 0.97 ในคุณผลลัพธ์เหล่านี้แสดงการเพิ่มขึ้นของ TF กับเพิ่มความเข้มข้น และดังนั้นจึง เพิ่ม
การขนส่งโลหะจากราก หน่อ ) ที่มีความเข้มข้นที่เพิ่มขึ้นของ AU ในสารละลาย รากของ BJ และ MS ในทั่วไปให้มากขึ้นครับ เช่น อัตราส่วนของความเข้มข้นของ AU ในเนื้อเยื่อพืชที่พบในสารละลายสูงสุด 994 ใน MS และ 906 ใน BJ .โดย นางสาวมีรากสูง และยิง ur
มากกว่า BJ . รูปที่ 2A แสดงให้เห็นการลดลงในญาติของ AU
เพิ่มขึ้นในสารละลาย หรือ สมาธิ ยิ่ง ur ของ
รากแนะนำจำกัดการเคลื่อนย้ายของ AU เพื่อยิงเมื่อ
ดูดซึม แม้ว่าเหตุผลนี้ จำกัด การสะสม
ไม่สามารถจะจัดตั้งขึ้นจากการทดลองเหล่านี้ , มันเป็นไปได้
ที่ปริมาณที่สําคัญของ Au ถูกเก็บไว้ในรากการสลาย
, และ / หรือ apoplasts . ผลที่ได้นี้แสดงให้เห็นว่ารากพืชอย่างรวดเร็ว
deplete AU ไอออนจากโซลูชั่นและด้วยเหตุนี้มี affinity สูง
Au
ถึงวันที่ไม่มีกลไกทางชีววิทยาที่ได้รับการตรวจสอบสำหรับ
การดูดซึมของแผงวงจรหลัก หรือมีรูปแบบของการสะสมในพืชเป็น AU
) ทั่วไปอย่างไรก็ตาม , ตามที่ระบุโดย
แอนเดอร์สันet al . [ 20 ] , พืชสะสมหรือเพราะมันเป็นปัจจุบันใน
แบบฟอร์มใช้ได้ในสารละลาย งานวิจัยเกี่ยวกับการใช้โลหะหนักพบ
rhizosecretion ของสารที่มีฤทธิ์ทางชีวภาพ เช่น กรดอินทรีย์
( เช่นเมื่อ ) , โปรตีน ( ส่วนใหญ่ไฟโตคีเลทิน และ metallothionins )
ไอโซฟลาโวนอยด์ และ เอนไซม์ เกิดขึ้นในการตอบสนองต่อแสง และ 13,25 โลหะ
[ 28 ] สารเหล่านี้อาจต้องรับผิดชอบ
หรือการสะสมที่พบใน MS และการแข่งขันในงานนี้ การศึกษาทางสรีรวิทยาและชีวเคมี
เพิ่มเติมเป็นในการดูดซึมโลหะ
การสะสมและสะสมในพืช
เวลาของการสัมผัสกับโลหะอื่นที่สำคัญปัจจัยที่มีอิทธิพลต่อ
การดูดซึมของโลหะผ่านเยื่อหุ้มราก [ 17,28 ]

จบนี้ ผลของเวลาสัมผัส ( 24 , 48 และ 72 ชั่วโมง ) คือเรียน
ทั้งหมดสูงกว่าความเข้มข้น 100 , 1000 และ 10 , 000 ppm ) หรือการใช้
พบเพิ่มขึ้นอย่างเห็นได้ชัด เวลาเปิดรับแสงใน
MS ( รูปที่ 2B ) ได้สูงสุดถึง 287mgau − 1 กรัมน้ำหนักแห้งของราก
หลังจาก 72 ชั่วโมง แสงที่ 10000ppm ของ AU ที่ 1 , 000 ppm ราก
MS สะสม 98 – 168mgau − 1 กรัมน้ำหนักแห้งที่เวลา 24-72 ชั่วโมง
จากแนวโน้มนี้เพิ่มการดูดซึมโลหะเพิ่ม
เวลาการตรวจสอบข้าม , AU ทั้งหมดเรียน
สำหรับคุณแต่สำหรับ BJ , หรือการใช้ที่เพิ่มขึ้นจาก 24 ถึง 48 ชั่วโมงทั่วประเทศ
เข้มข้น แต่ก็ลดลงจาก 48 ถึง 72 ชั่วโมง ยกเว้นบางชนิดของกลไกบ่งชี้
ได้เปิดใช้งาน ( รูปที่ 2 )
กระบวนการของการสะสมโลหะโดยรากบ่งชี้
Au ถูกโฟลเอ็มเคลื่อนที่ .
ที่ 1000ppm AU ในการแก้ปัญหาหรือใช้เป็น 124mgau G − 1
น้ำหนักแห้งหลังจาก 24 ชั่วโมงของแสง 129mgau − 1 กรัมน้ำหนักแห้งหลังจากการลด 93mgau
48 H − 1 กรัมน้ำหนักแห้งหลังจาก 72 ชั่วโมงของแสง .
เซลล์ เมื่อหิวของไลท์ ให้เพิ่มการไหลเข้าของที่
ไลท์ . นี้สามารถอธิบายเริ่มต้นสูง การดูดซึมของ AU ทั้ง
MS และ BJ . เมื่อเซลล์มีการอิ่มตัว , ขึ้นอยู่กับ
ในภายนอก ความเข้มข้นและความพร้อมของเว็บไซต์แลกเปลี่ยน
ไอออนฟรีที่ผิวราก การดูดซึมอย่างรวดเร็ว เบื้องต้นอาจเป็นเพราะ
การแพร่ของโลหะ , การรักษาสมดุลของร่างกายหรือกลไกการแลกเปลี่ยนไอออน [ 6 ]
และแสดงให้เห็นถึงความจริงที่ว่า BJ ได้ถึงระดับเกณฑ์
หลังจาก 48 เวลาเปิดรับแสง H .
ผลที่คล้ายกันที่พบทั้งหมดลดความเข้มข้น
( 5 , 10 , 20 ,40 และ 80 ppm ) ซึ่งข้อมูลที่ขอแนะนำให้เพิ่มในการเพิ่มเวลาด้วย

และความเข้มข้นทั้ง BJ และนางสาวเทคนิคการวิเคราะห์เนื้อเยื่อพืช พบว่าในแต่ละ
แสงความเข้มข้น ส่วนใหญ่เกี่ยวข้องกับหรือ