detector monitoring absorbance at 3

detector monitoring absorbance at 350–500 nm and identified and
quantified as previously reported (Chitchumroonchokchai et al., 2004;
Thakkar et al., 2007). Apo-8′-carotenal was used as internal standard
to estimate the efficiency of carotenoid recovery during extraction
(91–108%).
2.6. Statistical analysis
Data are presented as mean ± SEM. All data were analyzed using
one way ANOVA follow by Tukey post-hoc test with significance set at
p b 0.05 by GraphPad Prism Version 6.05 (GraphPad Software, Inc., CA,
USA).
3. Results
3.1. Carotenoid profile in pumpkin genotypes and retention after home
cooking
The most abundant carotenoids detected in all five genotypes of orange
fleshed pumpkin were beta-carotene (βC) and alpha-carotene
(αC) (Table 1). Trace quantities (≤0.4% of total carotenoids) of lutein
and zeaxanthin were detected in raw pumpkin and not further considered.
Total concentrations of the pro-vitamin A carotenoids in the genotypes
ranged from 209 μg/g FW (genotype 346) to 658 μg/g FW
(genotype 12) with βC accounting for 52% (genotype 13) to 90% (genotype
129) of the pro-vitamin A carotenoids. The amounts of αC in raw
pulp ranged from 20 μg/g FW (genotype 129) to 206 μg/g FW (genotype
13). 9-, 13- and 15-Z βC were present in raw pulp and collectively
accounted for ≤13% of total βC (Fig. 1). 13-Z-βC was the most abundant
Z-isomer βC in raw pulp
Boiled and steamed pulp from genotypes 12 and 13 contained 5–15%
and 13–22% less total pro-vitamin A, respectively, than raw pulp
(Table 1). These reductions were due to significant losses of both allE-βC
and Z-βC. αC was also lower in boiled and steamed pulp from
genotype 13, as well as steamed pulp from genotypes 12. Steaming
also significantly decreased total pro-vitamin A, all-E-βC and αC content
in pulp from genotype 346. In contrast with the adverse impact of home
cooking on pulp from genotypes 12, 13 and 346, there were minimal, if
any, changes in total pro-vitamin A, all-E-βC and αC in cooked pulp
from genotypes 58 and 129. The concentration of Z-βC (Table 1), and
particularly 13-Z-βC (Fig. 1), increased (p b 0.01) in cooked pulp from

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เครื่องตรวจจับตรวจสอบ absorbance ที่ 350-500 nm และระบุ และquantified เป็นรายงานไปก่อนหน้านี้ (Chitchumroonchokchai et al., 2004Thakkar et al., 2007) อาโป-8′-carotenal ใช้เป็นมาตรฐานภายในการประเมินประสิทธิภาพการกู้คืน carotenoid ระหว่างแยก(91-108%)2.6. สถิติวิเคราะห์ข้อมูลจะแสดงเป็นหมายถึง ± SEM. ข้อมูลทั้งหมดถูกวิเคราะห์โดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียว โดยทดสอบ Tukey ฮอคลงตามความสำคัญที่b p 0.05 GraphPad Prism รุ่น 6.05 (ซอ GraphPad, Inc., CAสหรัฐอเมริกา)3. ผลลัพธ์3.1. carotenoid โปรไฟล์ในการศึกษาจีโนไทป์ฟักทองและการเก็บรักษาหลังบ้านทำอาหารCarotenoids ที่อุดมสมบูรณ์ที่สุดที่พบในการศึกษาจีโนไทป์ห้าทั้งหมดของส้มมีฟักทอง fleshed beta-carotene (βC) และแอลฟาแคโรทีน(ΑC) (ตาราง 1) ติดตามปริมาณ (≤0.4% ของรวม carotenoids) ของลูทีนและ zeaxanthin ถูกตรวจพบในฟักทองดิบ และถือว่าไม่เพิ่มเติมรวมความเข้มข้นของวิตามินสนับสนุน carotenoids ในการศึกษาจีโนไทป์อยู่ในช่วงจาก μg 209 g FW (346 ลักษณะทางพันธุกรรม) กับ μg 658 g FW(12 ลักษณะทางพันธุกรรม) กับ βC บัญชี 52% (13 ลักษณะทางพันธุกรรม) มากกว่า 90% (ลักษณะทางพันธุกรรม129) ของวิตามินสนับสนุน A carotenoids จำนวน αC ในวัตถุดิบเยื่อกระดาษที่อยู่ในช่วงจาก μg 20 g FW (129 ลักษณะทางพันธุกรรม) กับ μg 206 g FW (ลักษณะทางพันธุกรรม13) . 9- 13 - 15 Z βC อยู่ ในเยื่อดิบ และโดยรวมคิดเป็น ≤13% ของทั้งหมด βC (Fig. 1) 13-Z-βC ถูกมากที่สุดΒC Z-ไอโซเมอร์ในเยื่อกระดาษวัตถุดิบต้ม และนึ่งเยื่อจากการศึกษาจีโนไทป์ 12 และ 13 อยู่ 5 – 15%และ 13 – 22% น้อยรวมสนับสนุนวิตามิน A ตามลำดับ กว่าเยื่อดิบ(ตาราง 1) ลดเหล่านี้ได้เนื่องจากขาดทุนอย่างมีนัยสำคัญของทั้งสอง βC เวและ Z-βC ยัง αC ไม่ต่ำกว่าในการต้ม และนึ่งเยื่อจากลักษณะทางพันธุกรรม 13 เป็นนึ่งเยื่อจากการศึกษาจีโนไทป์ 12 นึ่งนอกจากนี้ยัง ลดลงรวมสนับสนุนวิตามิน A, E-ทั้งหมด-βC และ αC ที่เนื้อหาอย่างมีนัยสำคัญในเยื่อจากลักษณะทางพันธุกรรม 346 In contrast with กระทบบ้านทำอาหารบนเยื่อจากการศึกษาจีโนไทป์ 12, 13 และ 346 มีน้อยที่สุด ถ้าแปลงรวมสนับสนุนวิตามิน a, E-ทั้งหมด-βC และ αC ในเยื่อสุกจากการศึกษาจีโนไทป์ 58 และ 129 ความเข้มข้นของ Z-βC (ตารางที่ 1), และโดยเฉพาะอย่างยิ่ง 13-Z-βC (Fig. 1) เพิ่ม (p b 0.01) ในเยื่อสุกจาก

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การตรวจสอบเครื่องตรวจจับการดูดกลืนแสงที่ 350-500
นาโนเมตรและมีการระบุและปริมาณตามที่รายงานก่อนหน้านี้(Chitchumroonchokchai et al,
2004;.. Thakkar et al, 2007) Apo-8'-carotenal
ถูกใช้เป็นมาตรฐานภายในในการประเมินประสิทธิภาพของการฟื้นตัวในช่วงcarotenoid สกัด
(91-108%).
2.6 การวิเคราะห์ทางสถิติข้อมูลจะถูกนำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย± SEM
ทั้งหมดวิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้วิธีหนึ่ง ANOVA ตามด้วยการทดสอบการโพสต์ทูกีเฉพาะกิจอย่างมีนัยสำคัญที่ตั้ง PB 0.05 โดยเวอร์ชั่นปริซึม GraphPad 6.05 (GraphPad Software, Inc, CA, USA). 3 ผล3.1 รายละเอียด carotenoid ในยีนฟักทองและการเก็บรักษาที่บ้านหลังจากการปรุงอาหารนอยด์ที่มีมากที่สุดที่ตรวจพบในทุกห้ายีนสีส้มฟักทองเนื้อมีเบต้าแคโรที(βC) และอัลฟาแคโรทีน(αC) (ตารางที่ 1) ติดตามปริมาณ (≤0.4% ของ carotenoids ทั้งหมด) ของลูทีนและซีแซนทีนถูกตรวจพบในฟักทองดิบและไม่ได้รับการพิจารณาต่อไป. ความเข้มข้นรวมของวิตามินโปร carotenoids ในยีนตั้งแต่209 ไมโครกรัม / g FW (genotype 346) 658 ไมโครกรัมต่อไป / g FW (genotype 12) กับβCคิดเป็น 52% (genotype 13) ถึง 90% (genotype 129) ของโปรวิตามิน carotenoids จำนวนของαCดิบในการผลิตเยื่อกระดาษตั้งแต่ 20 ไมโครกรัม / g FW (genotype 129) ถึง 206 ไมโครกรัม / g FW (genotype 13) 9, 13 และ 15-Z βCมีอยู่ในเยื่อดิบและรวมคิดเป็น≤13% จากทั้งหมดβC (รูปที่ 1). 13-Z-βCเป็นมากที่สุดZ-isomer βCในเยื่อดิบต้มนึ่งและเยื่อกระดาษจากยีนที่12 และ 13 มี 5-15% และ 13-22% น้อยรวมโปรวิตามิน A, ตามลำดับกว่าเยื่อดิบ(ตารางที่ 1 ) การลดลงของเหล่านี้เกิดจากการสูญเสียที่สำคัญของทั้งสอง alle-βCและZ-βC αCก็ยังต่ำกว่าในเยื่อต้มและนึ่งจาก13 พันธุ์เช่นเดียวกับเยื่อนึ่งจากยีน 12. นึ่งก็ลดลงอย่างมีนัยสำคัญรวมโปรวิตามินA, ทุก-E-βCและเนื้อหาαCในเยื่อกระดาษจากgenotype 346 ในทางตรงกันข้ามกับ ผลกระทบของบ้านของการปรุงอาหารในเยื่อกระดาษจากยีน12, 13 และ 346 มีน้อยถ้าใดๆ การเปลี่ยนแปลงในโปรวิตามินรวมทั้งหมด-E-βCและαCในการผลิตเยื่อกระดาษที่ปรุงสุกจากยีน58 และ 129 ความเข้มข้นของซี -βC (ตารางที่ 1) และโดยเฉพาะอย่างยิ่ง13-Z-βC (รูปที่ 1). เพิ่มขึ้น (Pb 0.01) ในการผลิตเยื่อกระดาษที่ปรุงสุกจาก

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เครื่องตรวจวัดการดูดกลืนแสงที่ 350 - 500 nm และระบุและ
quantified ตามที่รายงานก่อนหน้านี้ ( chitchumroonchokchai et al . , 2004 ;
ฐักการ et al . , 2007 ) apo-8 ’ - carotenal ใช้ภายในมาตรฐาน
ประมาณประสิทธิภาพในการกู้คืนระหว่างการสกัด
( 91 ( 108 ) .
2.6 การวิเคราะห์ข้อมูลทางสถิติจะแสดงเป็นค่าเฉลี่ย
± SEM ข้อมูลที่ได้นำมาวิเคราะห์โดยใช้
การวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียว และทดสอบกับชุดทดสอบหาระดับที่
P B 0.05 โดย graphpad Prism รุ่น 6.05 ( graphpad Software , Inc , CA , USA

) 3 ผลลัพธ์
3.1 . ในโปรไฟล์พันธุ์ฟักทองและความคงทนหลังจากกลับบ้าน

อาหาร carotenoids ชุกชุมมากที่สุดที่พบในทั้งห้าพันธุ์ของส้ม
เนื้อฟักทอง เบต้าแคโรทีน ( บีตาแคโรทีน
( C ) และบริษัท α C ) ( ตารางที่ 1 )ติดตาม ( ≤ 0.4 % ของปริมาณคาโรทีนอยด์ สารลูทีน และซีแซนทีน
ทั้งหมด ) ถูกตรวจพบในฟักทองดิบ และไม่พิจารณาต่อไป .
ความเข้มข้นรวมของโปรวิตามินเอ แคโรทีนอยด์ ในพันธุ์
ตั้งแต่ 209 μ g / g FW ( genotype 346 ) แล้วμ g / g FW
( จี 12 ) กับบีตา C / 52 ( จีโนไทป์ 13 ) 90% ( genotype
129 ) ของโปรวิตามินเอ แคโรทีนอยด์ . ปริมาณของαดิบ
cเยื่อกระดาษตั้งแต่ 20 μ g / g FW ( genotype 129 ) 206 μ g / g FW ( genotype
13 ) 9 - 13 - 15-z บีตาซี อยู่ในเนื้อดิบและเรียก
คิดเป็น 13% ของทั้งหมด≤บีตาซี ( รูปที่ 1 ) 13-z - บีตา C มากมาย

ส่วนใหญ่ z-isomer บีตาซี ในเนื้อดิบต้มและนึ่งผลิตจากพันธุ์ 12 และ 13 มีอยู่ 5
15% ) และ 13 – 22 % น้อยรวมโปรวิตามินเอ มากกว่าเนื้อดิบ (
) ตารางที่ 1 )ซึ่งเหล่านี้เนื่องจากการสูญเสียที่สำคัญของทั้งทั้งหมด - บีตา C
z - C และบีตาα C ยังลดลงในต้มและนึ่งผลิตจาก
จีโนไทป์ 13 เช่นเดียวกับนึ่งผลิตจากพันธุ์ 12 นึ่ง
ยังลดลงรวมโปรวิตามิน A , C และ C all-e - บีตาαเนื้อหา
ในเยื่อกระดาษจากพันธุกรรม 346 . ในทางตรงกันข้ามกับผลกระทบของอาหารที่ผลิตจากพันธุ์บ้าน
ที่ 12 , 13 และ 346 ,มีการเปลี่ยนแปลงน้อยที่สุด ถ้า
, รวมโปรวิตามิน A , C และ C all-e - บีตาαต้มเยื่อ
จากน้ำหนัก 58 และ 129 ความเข้มข้นของ Z - บีตาซี ( ตารางที่ 1 ) และโดยเฉพาะอย่างยิ่ง 13-z บีตา
- C ( รูปที่ 1 ) เพิ่มขึ้น ( P B 0.01 ) ต้มเยื่อกระดาษจาก