INTRODUCTION In ruminants, enteric

INTRODUCTION
In ruminants, enteric CH4 production is the result of
CO2 reduction by the methanogenic Archaea that use
the hydrogen resulting from the anaerobic microbial
fermentation of feeds. Methane is a potent greenhouse
gas and represents about 25% of the annual anthropogenic
CH4 emitted into the atmosphere (Lassey, 2008).
Moreover, methanogenesis is an energy waste for the
ruminant, representing 2 to 12% of gross energy intake
(Martin et al., 2010; Benchaar and Greathead, 2011).
The level of CH4 emission is mainly determined by feed
intake and the composition of the diet (Boadi et al.,
2004; Martin et al., 2010).
Because of its environmental and nutritional concern,
several dietary strategies have been suggested to mitigate
enteric CH4 emissions from ruminants (Martin et
al., 2010). It is well known that starch fermentation in
the rumen favors propionate production at the expense
of acetate and decreases ruminal pH, which reduces
hydrogen availability and inhibits the activity of rumen
methanogens (Martin et al., 2010; Hook et al., 2011a).
Rumen protozoal numbers are also often decreased in
ruminants fed high-starch diets, which also reduces the
transfer of hydrogen from protozoa to methanogens
(Morgavi et al., 2012). Compared with alfalfa silage
(AS), corn silage (CS) contains higher amounts of
starch, which make it an interesting means to reduce
enteric CH4 production.
Because of the symbiotic relationship between the
ruminant and its microbiota, a greater understanding
of how dietary changes affect the microbial consortia,
especially the interactions between Archaea and other
microorganisms, will enable the development of more
robust mitigation strategies. So far, microbial quantification
in the rumen was assessed by targeting DNA
(Zhou et al., 2009; Lettat et al., 2012), which is not a
reliable marker for metabolically active microbes because
extracted DNA may arise from dead bacteria or
bacteria in a dormant state, which are not implicated
in the fermentation processes (Sheridan et al., 1998; de
la Cruz-Leyva et al., 2011). On the contrary, RNA is
more correlated with microbial growth rate and metabolic
activity (Sheridan et al., 1998; de la Cruz-Leyva
et al., 2011). Hence, its utilization is thought to be
more reliable to quantify rumen microbial populations.
In a companion paper (Hassanat et al., 2013), we
observed lower CH4 energy losses in dairy cows when
CS replaced AS in the diet. This was associated with
lower ruminal pH, decreased protozoa numbers, and
increased propionate proportion at the expense of acetate,
suggesting possible shifts in microbial populations
involved in substrate fermentation and CH4 formation
within the rumen. Therefore, the objective of this study
was to examine the effects of replacing AS with CS
in dairy cow diets on the metabolically active ruminal
microbial communities (bacteria, Archaea, protozoa).
This study also aimed to assess the reliability of length
heterogeneity-PCR (LH-PCR) to fingerprint the bacteria
and Archaea communities within the rumen.
MATERIALS AND METHODS
All animal procedures were conducted under the approval
of the Animal Care Committee of the Dairy and
Swine Research and Development Center (Sherbrooke,
Canada) and were in accordance with the guidelines of
the Canadian Council on Animal Care (1993).
Experimental details (cows, diets, rumen content
collection for the determination of pH and VFA, CH4
measurements) of the present study have been described
in a companion paper (Hassanat et al., 2013)
and, therefore, will be briefly described in this section.
Dairy Cows and Diets
Nine multiparous Holstein lactating cows fitted with
ruminal cannulas (10 cm, Bar Diamond Inc., Parma,
ID) were used in a replicated 3 × 3 Latin square (31-d
period). The cows averaged (mean ± SD) 688 ± 66 kg
of BW, 82 ± 18 DIM, and 41 ± 4 kg/d of milk at the
start of the experiment. They were fed a TMR (60:40
forage:concentrate ratio) twice daily (0900 and 1930 h)
for ad libitum intake, with the forage portion being
either alfalfa silage (0% CS), corn silage (100% CS)
or a 50:50 mixture (50% CS). The cows were kept in
individual stalls and had free access to water. Ingredient
and chemical composition of the diets are shown in
Table 1. More details on dairy cows and experimental
diets are provided in a companion paper (Hassanat et
al., 2013).
Rumen Fluid Collection for pH
and VFA Determination
Sampling for the measurement of ruminal pH and
VFA concentrations was performed as described in
Benchaar et al. (2012). Briefly, ruminal fluid was collected
from the anterior dorsal, anterior ventral, medium
ventral, posterior dorsal, and posterior ventral
locations within the rumen at 0 (i.e., before feeding),
1, 2, 4, 6, and 8 h after the morning feeding. Samples
(250 mL/site) were withdrawn using a syringe screwed
to a stainless tube ending with a probe covered by a
fine metal mesh (RT Rumen Fluid Collection Tube,
Bar Diamond Inc.). Ruminal fluid pH was measured
immediately after sampling (Accumet pH meter; Fisher

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

แนะนำ ใน ruminants, enteric CH4 ผลิตเป็นผลลด CO2 โดย methanogenic อาร์เคียที่ใช้ไฮโดรเจนที่เกิดจากการไม่ใช้จุลินทรีย์หมักตัวดึงข้อมูล มีเทนเป็นเรือนกระจกมีศักยภาพก๊าซและแสดงประมาณ 25% ของปีที่มาของมนุษย์CH4 ที่ปล่อยออกสู่ชั้นบรรยากาศ (Lassey, 2008)นอกจากนี้ methanogenesis เป็นขยะเป็นพลังงานสำหรับการเคี้ยวเอื้อง การแสดง 2-12% ของการบริโภคพลังงานรวม(มาร์ตินเอ็ด al., 2010 Benchaar ก Greathead, 2011)ส่วนใหญ่มีกำหนดระดับของการปล่อยก๊าซ CH4 โดยอาหารบริโภคและส่วนประกอบของอาหาร (Boadi et al.,2004 มาร์ตินเอ็ด al., 2010)เนื่องจากปัญหาของสิ่งแวดล้อม และโภชนาการมีการแนะนำอาหารกลยุทธ์ต่าง ๆ เพื่อลดปล่อย CH4 enteric จาก ruminants (มาร์ตินเอ็ดal., 2010) เป็นที่รู้จักที่แป้งหมักในต่อการสนับสนุน propionate ผลิตที่ค่าใช้จ่ายของ acetate และลด ruminal ซึ่งลดความพร้อมใช้งานไฮโดรเจน และยับยั้งการต่อmethanogens (มาร์ตินเอ็ด al., 2010 ตะขอและ al., 2011a)หมายเลข protozoal ต่อจะลดลงมากในruminants เลี้ยงอาหารแป้งสูง ซึ่งยังช่วยลดการโอนย้ายไฮโดรเจนจากโพรโทซัวการ methanogens(Morgavi et al., 2012) เปรียบเทียบกับไซเลจต่อ alfalfa(เป็น), ข้าวโพดไซเลจต่อ (CS) ประกอบด้วยจำนวนสูงขึ้นแป้ง ซึ่งทำให้ความสนใจหมายถึง การลดการผลิต CH4 entericเนื่องจากความสัมพันธ์ระหว่าง symbioticเคี้ยวเอื้องและของ microbiota ความเข้าใจมากขึ้นเปลี่ยนแปลงว่าอาหารมีผลต่อจังหวัดจุลินทรีย์โดยเฉพาะอย่างยิ่งการโต้ตอบระหว่างอาร์เคียและอื่น ๆ จุลินทรีย์ จะช่วยให้การพัฒนาของบรรเทาสาธารณภัยที่มีประสิทธิภาพกลยุทธ์การ นับดังไกล จุลินทรีย์ในการต่อถูกประเมิน โดยการกำหนดเป้าหมายดีเอ็นเอ(โจว et al., 2009 Lettat et al., 2012), ที่ไม่เป็นเครื่องหมายความน่าเชื่อถือสำหรับจุลินทรีย์ metabolically งานเนื่องจากดีเอ็นเอแยกอาจเกิดขึ้นจากแบคทีเรียตาย หรือแบคทีเรียในสถานะระงับ ซึ่งจะเกี่ยวข้องในกระบวนการหมัก (เชอ et al., 1998 เดอลาครูซ Leyva et al., 2011) การ์ตูน อาร์เอ็นเอเป็นcorrelated กับอัตราการเติบโตของจุลินทรีย์ และเผาผลาญมากขึ้นกิจกรรม (เชอ et al., 1998 เดอลาครูซ-Leyvaร้อยเอ็ด al., 2011) ดังนั้น การใช้ประโยชน์เป็นความคิดที่จะยิ่งเชื่อถือได้เพื่อกำหนดปริมาณต่อประชากรจุลินทรีย์ในกระดาษเนียน (Hassanat et al., 2013), เราสังเกตด้านล่าง CH4 พลังงานสูญเสียในผลิตภัณฑ์นมโคเมื่อCS แทนในอาหาร นี้ไม่เกี่ยวข้องกับpH ต่ำกว่า ruminal หมายเลขโพรโทซัวที่ลดลง และpropionate เพิ่มสัดส่วนค่าใช้จ่าย acetateแนะนำกะไปในประชากรจุลินทรีย์เกี่ยวข้องในการหมักพื้นผิวและ CH4 ก่อตัวภายในต่อ ดังนั้น วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้มีการ ตรวจสอบผลของการแทนที่ ด้วย CSในนมวัวอาหารในงาน metabolically ruminalชุมชนจุลินทรีย์ (แบคทีเรีย อาร์เคีย โพรโทซัว)การศึกษานี้ยัง มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินความน่าเชื่อถือของความยาวheterogeneity-PCR (LH-PCR) กับลายนิ้วมือแบคทีเรียและอาร์เคียชุมชนภายในต่อการวัสดุและวิธีการตอนสัตว์ทั้งหมดได้ดำเนินการภายใต้การอนุมัติของสัตว์ดูแลคณะกรรมการของบริษัทผลิตนม และสุกรการวิจัยและพัฒนา (เชอร์บรูคประเทศแคนาดา) และตามแนวทางของสภาแคนาดาในสัตว์เลี้ยง (1993)รายละเอียดทดลอง (วัว อาหาร ต่อเนื้อหาคอลเลกชันสำหรับวัด pH และ VFA, CH4ขนาด) ของการศึกษาปัจจุบันได้ถูกอธิบายไว้ในกระดาษเนียน (Hassanat et al., 2013)และ ดังนั้น จะมีอธิบายไว้โดยสังเขปในส่วนนี้นมและอาหารเก้า multiparous โฮลชไตน์โครีดนมวัวด้วยcannulas ruminal (10 ซม. แถบเพชร Inc. ปาร์มารหัส) ใช้ในการจำลองแบบ 3 × 3 ติสแควร์ (31-dรอบระยะเวลา) วัว averaged ± 688 (เฉลี่ย± SD) 66 กก.ของ BW, 82 ± 18 มิติ และ 41 ± 4 kg/d ของนมที่จะจุดเริ่มต้นของการทดลอง พวกเขามีอาหาร TMR (60:40อัตราส่วนอาหารสัตว์: ข้น) สองครั้งทุกวัน (0900 และ 1930 h)สำหรับบริโภค ad libitum กับการอาหารสัตว์บางส่วนไซเลจต่อใด alfalfa (0% CS), ข้าวโพดไซเลจต่อ (CS 100%)หรือผสมกันคนละครึ่ง (50% CS) วัวที่ถูกเก็บไว้ในบุคคล stalls และมีถึงน้ำฟรี ส่วนผสมและแสดงองค์ประกอบทางเคมีของอาหารตารางที่ 1 รายละเอียดเพิ่มเติม ในนม และทดลองอาหารมีอยู่ในกระดาษเนียน (Hassanat etal., 2013)คอลเลกชันของน้ำมันต่อสำหรับ pHและกำหนด VFAสุ่มตัวอย่างสำหรับการประเมินของ ruminal และความเข้มข้นของ VFA ถูกดำเนินการตามที่อธิบายไว้ในBenchaar et al. (2012) สั้น ๆ น้ำมัน ruminal รวบรวมจากแอนทีเรียร์ dorsal แอนทีเรียร์ ventral กลางventral หลัง dorsal และ ventral หลังสถานภายในต่อที่ 0 (เช่น ก่อนอาหาร),1, 2, 4, 6 และ 8 h หลังจากอาหารเช้า ตัวอย่าง(250 mL/เว็บ ไซต์) ได้ถอนโดยใช้เข็มที่เมากับท่อสแตนเลสที่ลงท้าย ด้วยโพรบที่ครอบคลุมการตาข่ายโลหะดี (RT ต่อน้ำมันชุดหลอดแถบเพชร Inc.) มีวัด pH ของเหลว ruminalทันทีหลังจากสุ่มตัวอย่าง (Accumet pH มิเตอร์ ฟิชเชอร์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

บทนำ
ในสัตว์เคี้ยวเอื้องผลิต CH4 ลำไส้เป็นผลจากการ
ลด CO2 โดยเคีมีเทนที่ใช้
ไฮโดรเจนที่เกิดจากจุลินทรีย์แบบไม่ใช้ออกซิเจน
การหมักของฟีด ก๊าซมีเทนเป็นก๊าซเรือนกระจกที่มีศักยภาพ
และเป็นตัวแทนของก๊าซประมาณ 25% ของมนุษย์ประจำปี
CH4 ที่ปล่อยออกมาสู่ชั้นบรรยากาศ (Lassey 2008).
นอกจากนี้ methanogenesis คือการสูญเสียพลังงานสำหรับ
สัตว์เคี้ยวเอื้องคิดเป็น 2-12% ของปริมาณพลังงานขั้นต้น
(มาร์ตินและอัล . 2010. Benchaar และ Greathead 2011)
ระดับของการปล่อยก๊าซ CH4 จะถูกกำหนดโดยส่วนใหญ่อาหาร
การบริโภคและองค์ประกอบของอาหาร (Boadi, et al.
2004;. มาร์ติน, et al, 2010).
เนื่องจากการที่ บริษัท ด้านสิ่งแวดล้อมและคุณค่าทางโภชนาการ กังวล
กลยุทธ์การบริโภคอาหารที่หลายคนได้รับการแนะนำให้ลด
การปล่อยก๊าซ CH4 ลำไส้จากสัตว์เคี้ยวเอื้อง (มาร์ติ et
al., 2010) เป็นที่ทราบกันดีว่าการหมักแป้งใน
กระเพาะรูเมนโปรดปรานการผลิต propionate ที่ค่าใช้จ่าย
ของอะซิเตทและลดค่าความเป็นกรดในกระเพาะรูเมนซึ่งจะช่วยลด
ความพร้อมไฮโดรเจนและยับยั้งการทำงานของกระเพาะรูเมน
methanogens (มาร์ติน, et al, 2010;.. Hook, et al, 2011a)
โปรโตซัวในกระเพาะรูเมนตัวเลขลดลงนอกจากนี้ยังมักจะอยู่ใน
สัตว์เคี้ยวเอื้องเลี้ยงอาหารสูงแป้งซึ่งยังช่วยลด
การโอนไฮโดรเจนจากโปรโตซัวที่จะ methanogens
(Morgavi et al., 2012) เมื่อเทียบกับการหมักหญ้าชนิต
(AS), ข้าวโพดหมัก (CS) มีปริมาณที่สูงขึ้นของ
แป้งซึ่งทำให้มันเป็นวิธีที่น่าสนใจที่จะลด
การผลิต CH4 ลำไส้.
เพราะความสัมพันธ์ทางชีวภาพระหว่าง
สัตว์เคี้ยวเอื้องและ microbiota ของความเข้าใจมากขึ้น
ของวิธีการเปลี่ยนแปลงอาหาร ส่งผลกระทบต่อไพรีจุลินทรีย์,
โดยเฉพาะอย่างยิ่งการมีปฏิสัมพันธ์ระหว่างเคีและอื่น ๆ ที่
จุลินทรีย์จะช่วยให้การพัฒนามากขึ้น
กลยุทธ์ลดประสิทธิภาพ เพื่อให้ห่างไกลปริมาณจุลินทรีย์
ในกระเพาะรูเมนได้รับการประเมินโดยการกำหนดเป้าหมายดีเอ็นเอ
(โจว et al, 2009;. Lettat et al, 2012.) ซึ่งไม่ได้เป็น
เครื่องหมายที่เชื่อถือได้สำหรับจุลินทรีย์ที่ใช้งานเมตาบอลิเนื่องจาก
ดีเอ็นเอที่สกัดอาจเกิดขึ้นจากเชื้อแบคทีเรียที่ตายหรือ
แบคทีเรียใน รัฐเฉย ๆ ที่ไม่ได้มีส่วนเกี่ยวข้อง
ในกระบวนการหมัก (เชอริแดน, et al, 1998;. อ
. อลาครูซ Leyva-et al, 2011) ในทางตรงกันข้ามอาร์เอ็นเอเป็น
มากขึ้นมีความสัมพันธ์กับอัตราการเจริญเติบโตของเชื้อจุลินทรีย์และการเผาผลาญ
กิจกรรม (เชอริแดน, et al, 1998;. de la Cruz-Leyva
. et al, 2011) ดังนั้นการใช้ประโยชน์ของมันคือความคิดที่จะ
เชื่อถือได้มากขึ้นที่จะหาจำนวนประชากรจุลินทรีย์ในกระเพาะรูเมน.
ในกระดาษสหาย (Hassanat et al., 2013) เรา
สังเกตเห็นการสูญเสียพลังงานที่ต่ำกว่า CH4 ในโคนมเมื่อ
ซีแทนที่ AS ในอาหาร นี้มีความสัมพันธ์กับ
ค่า pH ต่ำกว่ากระเพาะหมักลดลงจำนวนโปรโตซัวและ
สัดส่วน propionate เพิ่มขึ้นค่าใช้จ่ายของอะซิเตท,
แนะนำการเปลี่ยนแปลงที่เป็นไปได้ในประชากรจุลินทรีย์
ที่เกี่ยวข้องในกระบวนการหมักอาหารและ CH4 ก่อตัว
ภายในกระเพาะรูเมน ดังนั้นวัตถุประสงค์ของการศึกษาครั้งนี้
เพื่อศึกษาผลของการแทนที่เช่นเดียวกับลูกค้า
ในอาหารโคนมในกระเพาะหมักที่ใช้งานเมตาบอลิ
กลุ่มจุลินทรีย์ (แบคทีเรียเคียโปรโตซัว).
การศึกษาครั้งนี้ยังมีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินความน่าเชื่อถือของความยาว
แตกต่าง-PCR ( LH-PCR) เพื่อลายนิ้วมือแบคทีเรีย
และชุมชนเคีภายในกระเพาะ.
วัสดุและวิธีการ
ทุกขั้นตอนสัตว์ได้ดำเนินการภายใต้ความเห็นชอบ
ของคณะกรรมการการดูแลสัตว์ของโคนมและ
สุกรวิจัยและพัฒนา (Sherbrooke,
แคนาดา) และเป็นไปตาม แนวทางของ
แคนาดาสภาการดูแลสัตว์ (1993).
รายละเอียดการทดลอง (วัวอาหารเนื้อหากระเพาะรูเมน
คอลเลกชันสำหรับการกำหนดค่า pH และ VFA, CH4
วัด) ของการศึกษาในปัจจุบันได้รับการอธิบาย
ในบทความสหาย (Hassanat et al, 2013)
และดังนั้นจะอธิบายสั้น ๆ ในส่วนนี้.
โคนมและอาหาร
เก้า multiparous โฮวัวให้นมบุตรพอดีกับ
cannulas กระเพาะรูเมน (10 ซม., ไดมอนด์บาร์อิงค์ปาร์ม่า
ID) ถูกนำมาใช้ในการจำลองแบบ 3 × 3 ภาษาละติน ตาราง (31-d
ระยะเวลา) วัวเฉลี่ย (mean ± SD) 688 ± 66 กก.
ของ BW 82 ± 18 DIM และ 41 ± 4 กิโลกรัม / วันของนมที่
จุดเริ่มต้นของการทดลอง พวกเขาได้รับการเลี้ยงดู TMR (60:40
อาหารสัตว์: สมาธิอัตราส่วน) วันละสองครั้ง (0900 และ 1930 ต่อชั่วโมง)
สำหรับโฆษณา libitum บริโภคมีส่วนอาหารสัตว์เป็น
อย่างใดอย่างหนึ่งหมักหญ้าชนิต (0% CS) ข้าวโพดหมัก (CS 100%)
หรือ 50:50 ส่วนผสม (50% CS) วัวที่ถูกเก็บไว้ใน
คอกม้าของแต่ละบุคคลและมีอิสระที่จะเข้าถึงน้ำ ส่วนผสม
และองค์ประกอบทางเคมีของอาหารที่แสดงใน
ตารางที่ 1 รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับโคนมและการทดลอง
อาหารที่มีอยู่ในกระดาษสหาย (Hassanat et
al., 2013).
กระเพาะรูเมนเก็บของเหลวสำหรับค่า pH
และ VFA กําหนด
การเก็บตัวอย่างสำหรับการวัดในกระเพาะรูเมน พีเอชและ
ความเข้มข้นของ VFA ได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ใน
Benchaar et al, (2012) สั้น ๆ , ของเหลวในกระเพาะรูเมนที่ถูกเก็บรวบรวม
จากหน้าหลังหน้าท้องกลาง
หน้าท้องหลังหลังและหน้าท้องหลัง
สถานที่ที่อยู่ในกระเพาะรูเมนที่ 0 (กล่าวคือก่อนที่จะให้อาหาร),
1, 2, 4, 6, และ 8 ชั่วโมงหลังจากตอนเช้า การให้อาหาร ตัวอย่าง
(250 มิลลิลิตร / สถานที่เดียวกัน) ถูกถอนออกโดยใช้เข็มฉีดยาเมา
ไปยังท่อสแตนเลสที่ลงท้ายด้วยการสอบสวนปกคลุมด้วย
ตาข่ายโลหะชั้นดี (RT กระเพาะรูเมนหลอดเก็บของไหล
ไดมอนด์บาร์ Inc) ค่าความเป็นกรดในกระเพาะรูเมนของเหลววัด
ทันทีหลังจากการสุ่มตัวอย่าง (Accumet ค่า pH เมตรฟิชเชอร์

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

บทนำ
ในสัตว์เคี้ยวเอื้อง การผลิต ที่มีร่างเป็นผลจากการลด CO2 โดยจุลินทรีย์

อาร์เคียที่ใช้ไฮโดรเจนที่เกิดจากการหมักจุลินทรีย์
ถังของฟีด ก๊าซมีเทนเป็นก๊าซเรือนกระจกที่มีศักยภาพและเป็นตัวแทน
ประมาณ 25% ของปีมนุษย์
ร่างออกมาในบรรยากาศ ( lassey , 2008 ) .
นอกจากนี้ ช้าเป็นพลังงานสูญเปล่า
สัตว์เคี้ยวเอื้องตัวแทน 2 ถึง 12 % ของยอดการบริโภคพลังงาน
( มาร์ติน et al . , 2010 ; และ benchaar Greathead , 2011 ) .
ระดับร่างเล็ดรอดถูกกำหนดโดยส่วนใหญ่บริโภคอาหาร
และองค์ประกอบของอาหาร ( boadi et al . ,
2004 ; มาร์ติน et al . , 2010 ) .
เพราะ ของสิ่งแวดล้อมและโภชนาการเกี่ยวกับอาหารหลายได้รับการแนะนำกลยุทธ์

ต่อจากร่างเพื่อลดการเคี้ยวเอื้อง ( มาร์ติน ร้อยเอ็ด
al . , 2010 ) มันเป็นที่รู้จักกันดีว่าแป้งที่หมักในกระเพาะหมักที่โปรดปราน propionate

ของค่าใช้จ่ายการผลิตอะซิเตทและลดลงและค่า pH ซึ่งช่วยลดและยับยั้งกิจกรรมว่าง
ไฮโดรเจนทั้งหมด
เมทาโนเจน ( มาร์ติน et al . , 2010 ; ตะขอ et al . , 2011a ) .
Rumen โพรโทซัวตัวเลขก็มักจะลดลงใน
สัตว์เคี้ยวเอื้องอาหารแป้งสูง ซึ่งจะช่วยลด
การถ่ายโอนของไฮโดรเจนจากโปรโตซัวจะสร้างมีเทน
( morgavi et al . , 2012 ) เมื่อเทียบกับหญ้าหมัก
( เป็น ) ข้าวโพดหมัก ( CS ) มีปริมาณที่สูงขึ้นของ
แป้ง ซึ่งทำให้มันน่าสนใจวิธีการลดการผลิตที่มีร่าง
.
เพราะความสัมพันธ์ symbiotic ระหว่าง
สัตว์เคี้ยวเอื้องและไมโครไบโ ้า มีความเข้าใจมากขึ้นว่าอาหารมีผลต่อการเปลี่ยนแปลง

consortia จุลินทรีย์โดยเฉพาะอย่างยิ่งระหว่างอาร์เคียและจุลินทรีย์อื่น ๆ
, จะช่วยให้ การพัฒนากลยุทธ์การผ่อนคลายที่แข็งแกร่งมากขึ้น

ดังนั้นไกล
ปริมาณจุลินทรีย์ในกระเพาะรูเมนและโดยเป้าหมายดีเอ็นเอ
( โจว et al . , 2009 ; lettat et al . , 2012 ) ซึ่งไม่ใช่เครื่องหมาย
ที่เชื่อถือได้ metabolically ปราดเปรียวจุลินทรีย์เพราะสกัดดีเอ็นเอจากแบคทีเรียที่อาจเกิดขึ้น

ตายหรือแบคทีเรียในสถานะเฉยๆ ซึ่งไม่ได้เกี่ยวข้องในกระบวนการหมัก
( Sheridan et al . , 1998 ; de la Cruz
leyva et al . , 2011 ) ในทางตรงกันข้าม ซึ่งมีความสัมพันธ์กับอัตราการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์
เพิ่มเติม และกิจกรรมการสลาย
( Sheridan et al . , 1998 ; de la Cruz leyva
et al . , 2011 ) ดังนั้น การใช้ประโยชน์ คือ คิดเป็น ปริมาณจุลินทรีย์ทั้งหมดที่น่าเชื่อถือมากขึ้น

ตามจำนวนประชากรในความเป็นเพื่อน กระดาษ ( hassanat et al . , 2013 ) เราพบว่าราคาพลังงานจากร่าง

CS ในโคนมเมื่อแทนที่ในอาหาร นี้เกี่ยวข้องกับ
ลดและ pH ลดลงเท่ากับตัวเลขและ
เพิ่มขึ้น propionate สัดส่วนค่าใช้จ่ายของอะซิเตท ,
แนะนำไปได้กะในกลุ่มประชากรจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องในการหมักและ

( การก่อรูปร่างภายในกระเพาะ ดังนั้นวัตถุประสงค์ของการศึกษานี้เพื่อศึกษาผลของ

เปลี่ยนเป็น CS ในอาหารโคนมใน metabolically ปราดเปรียวและจุลินทรีย์ ( แบคทีเรียอาร์เคีย
ชุมชน โปรโตซัว ) .
การศึกษานี้ยังมีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินความน่าเชื่อถือของความยาว
ผิดพวกผิดพ้อง PCR ( lh-pcr ) ลายนิ้วมือแบคทีเรียและอาร์เคีย
ภายในชุมชน

กระเพาะ วัสดุและวิธีการสัตว์ทุกขั้นตอนได้ดำเนินการภายใต้การอนุมัติ
ของการดูแลสัตว์ของคณะกรรมการโคนม และสุกร ศูนย์วิจัยและพัฒนา (

Sherbrooke , แคนาดา ) และสอดคล้องกับแนวทางของ
สภาแคนาดาดูแลสัตว์ ( 2536 ) .
รายละเอียดการทดลอง ( วัว , อาหาร , อาหารเนื้อหา
คอลเลกชันสำหรับความมุ่งมั่น ลดลงของ pH และร่าง
,การวัด ) จากการศึกษาครั้งนี้ได้ถูกอธิบายไว้ในกระดาษ
เพื่อน ( hassanat et al . , 2013 )
และ , จึง , จะสั้น ๆที่อธิบายไว้ในส่วนนี้

9 สูตรอาหารโคนมโฮลสไตน์และเลี้ยงโครีดนมติดตั้ง
และ cannulas ( 10 ซม. เพชรบาร์อิงค์ , ปาร์มา ,
ID ) ใช้แบบ 3 × 3 ลาตินสแควร์ ( 31-d
ระยะเวลา ) วัวอยู่ ( หมายถึง± SD ) แต่± 66 กก
ของ น้ำหนักตัว