2. Materials and methods2.1. Raw ma

2. Materials and methods
2.1. Raw material
Sweet potato (Ipomoea batatas Lam cv. Sinhwangmi) was purchased
from a local farm. Roots were washed with tap water to remove
dirt and soil, and after drying its surface, the washed sweet
potato was stored at 14 C for 15 days without curing.
2.2. Sample preparation and treatment
Sweet potato roots were divided into two groups. In the first
group, sweet potatoes were peeled with a hand peeler (Han Sung
27 stainless Gwangju, Korea). Peeled samples were kept in tap
water to prevent enzymatic darkening. Peeled and unpeeled samples
were then cut into slices (1 mm thickness) using a slicing machine
(HFS 350G, Fujee, Korea). For the second group, peeled and
unpeeled slices were dipped in aqueous 0.5% (w/v) sodium hydrogen
sulphite (NaHSO3) at room temperature for 2 min.
2.3. Preparation of sweet potato flour
The slices were dried using a convection drying oven (Dasol Scientific
Co. Ltd., Seoul, Korea) at different temperatures 55, 60, and
65 C for 7–8 h. The flour (moisture content 6–7%) was obtained by
milling the dried slices using a blender (FM-681C, Hanil, Gwangju,
Korea), and sieved through an 80-mesh (Chung gye sang gongsa,
Seoul, Korea) screen to obtain sweet potato flour.
2.4. Proximate composition of sweet potato flour
Moisture, crude protein, fat, ash, and crude fibre content of
flours were determined by official methods (AOAC, 1998). The total
sugar content of the samples was determined using the phenol–
sulphuric acid method (Dubois, Gilles, Hamilton, Rebers, & Smith,
1956). Total starch content was determined using Megazyme assay
Kits (Megazyme Int., Wicklow, Ireland). Carbohydrate was expressed
as the difference from moisture, protein, fat, and ash.
2.5. Determination of b-carotene
Total carotene content was determined using the modified
method of Park (1987). Dehydrated sweet potato flour (0.5 g)
was extracted with a mixture of hexane and acetone (7:3,
25 mL). The extracts were filtered through a Buchner funnel with
Whatman No. 1 filter paper. The residue was re-extracted until it
became colourless. The filtrates were combined in a separatory
funnel and washed with 50 mL of distilled water. The water phase
was discarded and a pinch of Na2SO4 was added as desiccant. The
hexane phase was transferred to a volumetric flask. The concentration
of carotene in the solution was determined from the absorbance
at 450 nm (UV-1201, Shimadzu, Kyoto, Japan). The bcarotene
content was determined from the standard curve for prepared
b-carotene.
2.6. Hunter colour values
The colour attributes (Hunter L*, a*, and b* values) were measured
with a spectrophotometer (CM-3500d, Minolta, Japan). Colour
change was calculated as DE = [(DL*)
2 + (Da*)
2 + (Db*)
2
]
1/2
2.7. Browning index
Browning index was determined using the method described by
Youn and Choi (1996). One gram of dehydrated sweet potato flour
was extracted with 40 mL of distilled water and 10 mL of 10% trichloroacetic
acid solution in a beaker. The extract was filtered
through a Buchner funnel with Whatman No. 2 filter paper. After
the solution stood for 2 h at room temperature, its concentration
was determined from absorbance readings at 420 nm (UV-1201,
Shimadzu, Kyoto, Japan).
2.8. Water solubility index (WSI) and water absorption index (WAI)
WSI and WAI were determined according to the method described
by Anderson (1982). Two and a half grams of sweet potato
flour and 30 mL of water were vigorously mixed in a 50-mL centrifuge
tube; the mixture was incubated in a water bath at 30 C for
30 min and centrifuged at 2090g for 15 min. The supernatant
was collected in a pre-weighed Petri dish and the residue was
weighed after oven-drying overnight at 105 C. The amount of solids
in the dried supernatant as a percentage of the total dry solids
in the original 2.5 g sample was an indicator of water solubility index.
WAI was calculated as the mass of the solid pellet remaining
after centrifugation divided by the mass of dry sample.
2.9. Swelling capacity (SWC)
Swelling capacity was determined according to Lai and Cheng
(2004) using the equation
SWC = weight of sediment/[dry weight of sample (1 ws%/
100)].
2.10. Determination of total phenolics
Total phenolics in the sweet potato flours were determined
with Folin–Ciocalteu reagent according to a slightly modified
method described by Swain and Hills (1959). The sample (0.1 g)
was extracted 3 times with 20 mL of 75% methanol and filtered
through Whatman No. 2 filter paper. Extracts were combined
and concentrated in a rotary vacuum evaporator (Rikakikai Co.
Ltd., Tokyo, Japan) at 40 C; the volume was adjusted to 20 mL with
75% methanol. One millilitre of extract, 5 mL of distilled water and
2 mL of 10% Folin–Ciocalteau reagent were added into a Falcon
tube. After 3 min at room temperature, 2 mL of 7.5% Na2CO3 solution
were added and the sample was diluted to 20 mL with distilled
water. Each sample was allowed to stand for 1 h at room
temperature and absorbance measured at 76

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2. วัสดุและวิธีการ2.1. ดิบซื้อมันเทศ (นาพัล batatas พันธุ์ลำ Sinhwangmi)จากฟาร์มท้องถิ่น รากถูกล้าง ด้วยน้ำประปาการเอาสิ่งสกปรกและดิน และหลัง จากพื้นผิวของมัน หวานซักแล้วแห้งมันฝรั่งถูกเก็บไว้ที่ 14 C 15 วันโดยไม่ต้องบ่ม2.2. ตัวอย่างการจัดทำและรักษารากมันเทศถูกแบ่งออกเป็น 2 กลุ่ม ในครั้งแรกมันฝรั่งหวาน กลุ่มถูกปอกเปลือก ด้วยการปอกมือ (Han Sung27 สแตนเลสกวางจู เกาหลี) ปอกเปลือกตัวอย่างถูกเก็บไว้ในน้ำเพื่อป้องกันไม่ให้เอนไซม์เข้ม ปอกเปลือก และทำตัวอย่างแล้วถูกตัดเป็นชิ้น (ความหนา 1 มิลลิเมตร) โดยใช้เครื่องหั่น(HFS 350 กรัม Fujee เกาหลี) สำหรับกลุ่มที่สอง ปอกเปลือก และทำชิ้นถูกจุ่มลงในสารละลาย 0.5% (w/v) โซเดียมไฮโดรเจนซัลไฟต์ (NaHSO3) ที่อุณหภูมิห้อง 2 นาที2.3. เตรียมแป้งมันเทศชิ้นที่แห้งโดยใช้การพาความร้อนแบบแห้งเตาอบ (Dasol วิทยาศาสตร์จำกัด โซล เกาหลี) ที่อุณหภูมิต่าง ๆ 55, 60 และC 65 สำหรับ 7-8 ชม แป้ง (ความชื้น 6-7%) ได้รับโดยกัดชิ้นแห้งโดยใช้เครื่องปั่น (FM - 681C, Hanil กวางเกาหลี), และแหลกลาญผ่าน 80 ตาข่าย (Chung เจ้ากเย sang gongsaโซล เกาหลี) หน้าจอจะได้รับแป้งมันเทศ2.4. ธนบุรีองค์ประกอบของแป้งมันเทศความชื้น โปรตีน ไขมัน เถ้า และเนื้อหาของดิบไฟเบอร์แป้งถูกกำหนด โดยวิธีการอย่างเป็นทางการ ( 1998 aoac () ผลรวมน้ำตาลเนื้อหาตัวอย่างกำหนดโดยใช้ฟีนอล –วิธีกรดซัลฟูริก (Dubois, Gilles แฮมิลตัน Rebers, & Smith1956) กำหนดปริมาณรวมแป้งใช้ทดสอบ Megazymeชุด (ของดอกเบี้ย Megazyme วิคโลว์ ไอร์แลนด์) คาร์โบไฮเดรตได้แสดงออกเป็นความแตกต่าง จากความชื้น โปรตีน ไขมัน เถ้า2.5 การกำหนด b-แคโรทีนแคโรทีนที่รวมเนื้อหากำหนดใช้การแก้ไขวิธีการจอด (1987) แป้งมันเทศอบแห้ง (0.5 กรัม)ถูกสกัด ด้วยเฮกเซนและอะซีโตน (7:325 mL) กรองผ่านปล่อง Buchner ด้วยสารสกัดกระดาษกรอง Whatman เลข 1 สารตกค้างถูกแยกอีกครั้งจนกว่าจะกลายเป็นสีใส การ filtrates ถูกรวมในการ separatoryกรวย และล้าง ด้วยน้ำกลั่น 50 mL ขั้นตอนการน้ำถูกละทิ้ง และเหน็บแนมของ Na2SO4 ถูกเพิ่มเป็นชื้น การเฮกเซนเฟสถูกถ่ายโอนไปในขวดแก้ววัดปริมาตร ความเข้มข้นแคโรทีนในการแก้ปัญหาถูกกำหนดจากค่าที่ที่ 450 nm (UV-1201, Shimadzu เกียวโต ญี่ปุ่น) Bcarotene การเนื้อหาที่กำหนดจากกราฟมาตรฐานสำหรับเตรียมb-แคโรทีน2.6. ฮันเตอร์สีค่าแอตทริบิวต์สี (ฮันเตอร์ L * เป็น *, และค่า b *) ถูกวัดมีสเปค (CM - 3500d, Minolta ญี่ปุ่น) สีคำนวณเปลี่ยนเป็น DE = [(DL*)2 + (Da *)2 + (Db *)2]1/22.7. ดัชนีสีน้ำตาลกำหนดดัชนีสีน้ำตาลโดยใช้วิธีการอธิบายโดยYoun และชอย (1996) หนึ่งกรัมของแป้งมันเทศอบแห้งถูกสกัด ด้วย 40 mL ของน้ำกลั่น และ trichloroacetic 10% 10 mLแก้ปัญหากรดในบีกเกอร์ สารสกัดที่ถูกกรองผ่านปล่อง Buchner ด้วยกระดาษกรอง Whatman No. 2 หลังจากการแก้ปัญหาที่ยืน 2 ชม.ที่อุณหภูมิห้อง ความเข้มข้นกำหนดจากการอ่านค่าที่ 420 nm (UV-1201Shimadzu เกียวโต ญี่ปุ่น)2.8. น้ำละลายดัชนี (WSI) และดัชนีการดูดซึมน้ำ (หวาย)WSI และหวายดำเนินการตามวิธีการอธิบายไว้โดยแอนเดอร์สัน (1982) สอง และครึ่งกรัมของมันเทศแป้งและน้ำ 30 มล.แรง ๆ ถูกผสมในเครื่องหมุนเหวี่ยง 50 มิลลิลิตรหลอด ส่วนผสมมี incubated ในอ่างน้ำที่ 30 C สำหรับ30 นาที และเหวี่ยงที่ 2090g 15 นาที การ supernatantรวบรวมในจานเพาะชั่งน้ำหนักก่อน และสารตกค้างชั่งน้ำหนักหลังอบแห้งที่ 105 c ค้างคืน ปริมาณของแข็งใน supernatant แห้งเป็นเปอร์เซ็นต์ของของแข็งแห้งรวมในเดิม 2.5 กรัม ตัวอย่างเป็นตัวบ่งชี้ของดัชนีการละลายน้ำหวายได้คำนวณเป็นมวลของแข็งเม็ดที่เหลือหลังจากหมุนเหวี่ยงหาร ด้วยมวลของตัวอย่างแห้ง2.9. บวมความจุ (SWC)บวมความจุถูกกำหนดตามลายและเฉิงใช้สมการ (2004)SWC =น้ำหนักของตะกอน รีด [น้ำหนักของตัวอย่าง (1 ws%/100)]2.10. กำหนด phenolics รวมกำหนด phenolics รวมในแป้งมันเทศด้วยรีเอเจนต์ท่อง – Ciocalteu ตามแก้ไขเล็กน้อยวิธีที่อธิบาย โดย Swain และฮิลล์ (1959) ตัวอย่าง (0.1 g)3 ครั้งกับเมทานอล 75% 20 มิลลิลิตรสกัด และกรองผ่านกระดาษกรอง Whatman เลข 2 ได้รวมสารสกัดจากและเข้มข้นในระเหยสุญญากาศโรตารี่ (Rikakikai จำกัดจำกัด โตเกียว ญี่ปุ่น) ที่ 40 C ไดรฟ์ข้อมูลถูกปรับปรุงถึง 20 mL ด้วยเมทานอล 75% Millilitre หนึ่งของสารสกัด น้ำกลั่น 5 มิลลิลิตร และ2 mL ของรีเอเจนต์ท่อง – Ciocalteau 10% เพิ่มเป็นเหยี่ยวหลอด หลังจาก 3 นาทีที่อุณหภูมิห้อง 2 mL ของโซลูชัน 7.5% Na2CO3เพิ่ม และแก้ไขเจือจางตัวอย่างถึง 20 mL กับกลั่นน้ำ แต่ละอย่างที่ได้รับอนุญาตให้ยืนสำหรับ h 1 ห้องวัดอุณหภูมิและค่าที่ 76

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 วัตถุดิบ
มันเทศ (Ipomoea batatas ลำ CV. Sinhwangmi) ถูกซื้อ
จากฟาร์มท้องถิ่น รากถูกล้างด้วยน้ำประปาเพื่อเอา
​​สิ่งสกปรกและดินและหลังจากการอบแห้งพื้นผิวของมันหวานล้าง
มันฝรั่งถูกเก็บไว้ที่ 14 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 วันโดยไม่ต้องบ่ม.
2.2 การเตรียมตัวและการรักษา
มันเทศรากถูกแบ่งออกเป็นสองกลุ่ม ในครั้งแรกที่
กลุ่มมันฝรั่งหวานถูกปอกเปลือกมีดปอกผลไม้มือ (Han Sung
27 สแตนเลสกวางจูประเทศเกาหลี) ตัวอย่างปอกเปลือกจะถูกเก็บไว้ในประปา
น้ำเพื่อป้องกันไม่ให้หมองคล้ำของเอนไซม์ ปอกเปลือกและตัวอย่าง unpeeled
ถูกตัดเป็นชิ้นแล้ว (1 มิลลิเมตรหนา) โดยใช้เครื่องหั่น
(HFS 350G, Fujee เกาหลี) สำหรับกลุ่มที่สองปอกเปลือกและ
หั่น unpeeled ถูกจุ่มลงในน้ำ 0.5% (w / v) โซเดียมไฮโดรเจน
ซัลไฟต์ (NaHSO3) ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 2 นาที.
2.3 การเตรียมแป้งมันฝรั่งหวาน
ชิ้นแห้งโดยใช้การพาความร้อนเตาอบแห้ง (Dasol วิทยาศาสตร์
จำกัด กรุงโซลประเทศเกาหลี) ที่อุณหภูมิที่แตกต่างกัน 55, 60 และ
65 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 7-8 ชั่วโมง แป้ง (ความชื้น 6-7%) ได้มาจากการ
กัดชิ้นแห้งโดยใช้เครื่องปั่น (FM-681C, Hanil, กวางจู,
เกาหลีใต้) และร่อนผ่าน 80 ตาข่าย (Chung Gye ร้องเพลง gongsa,
กรุงโซลประเทศเกาหลี) หน้าจอ เพื่อให้ได้แป้งมันเทศ.
2.4 องค์ประกอบทางเคมีของแป้งมันฝรั่งหวาน
ความชื้นโปรตีนไขมันเถ้าและเนื้อหาเยื่อใยของ
แป้งได้รับการพิจารณาโดยวิธีการอย่างเป็นทางการ (AOAC, 1998) รวม
ปริมาณน้ำตาลของกลุ่มตัวอย่างถูกกำหนดโดยใช้ phenol-
วิธีกรดกำมะถัน (บัวกิลส์แฮมิลตัน Rebers และสมิ ธ ,
1956) ปริมาณแป้งทั้งหมดถูกกำหนดโดยใช้ Megazyme ทดสอบ
ชุด (Megazyme Int., วิกโคลว์ไอร์แลนด์) คาร์โบไฮเดรตถูกแสดงออกมา
เป็นความแตกต่างจากความชื้นโปรตีนไขมันและเถ้า.
2.5 ความมุ่งมั่นของ B-แคโรทีน
เนื้อหาแคโรทีนทั้งหมดถูกกำหนดโดยใช้การปรับเปลี่ยน
วิธีการของพาร์ค (1987) แป้งอบแห้งมันฝรั่งหวาน (0.5 กรัม)
เป็นสารสกัดที่มีส่วนผสมของเฮกเซนและอะซิโตน (7: 3,
25 มิลลิลิตร) สารสกัดถูกกรองผ่านช่องทาง Buchner กับ
Whatman ฉบับที่ 1 กระดาษกรอง ที่เหลือเป็นอีกครั้งที่สกัดจนกว่ามันจะ
กลายเป็นไม่มีสี กรองถูกรวมกันใน separatory
ช่องทางและล้างด้วย 50 มิลลิลิตรของน้ำกลั่น เฟสน้ำ
ทิ้งและหยิกของ Na2SO4 ถูกบันทึกเป็นสารดูดความชื้น
เฟสเฮกเซนถูกย้ายไปขวดปริมาตร ความเข้มข้น
ของแคโรทีนในการแก้ปัญหาที่ถูกกำหนดจากดูดกลืนแสง
ที่ 450 นาโนเมตร (UV-1201 Shimadzu เกียวโตญี่ปุ่น) bcarotene
เนื้อหาถูกกำหนดจากโค้งมาตรฐานสำหรับการเตรียม
ขแคโรทีน.
2.6 ฮันเตอร์ค่าสี
คุณลักษณะสี (Hunter L *, a * ​​และค่า b *) เป็นวัด
ที่มีสเปก (CM-3500D, Minolta, ญี่ปุ่น) สี
เปลี่ยนแปลงที่คำนวณได้เป็น DE = [(DL *)
2 + (ดา *)
2 + (DB *)
2
]
1/2
2.7 ดัชนีบราวนิ่ง
ดัชนีบราวนิ่งถูกกำหนดโดยใช้วิธีการอธิบายโดย
Youn และชอย (1996) หนึ่งกรัมของแป้งมันเทศแห้ง
ถูกสกัดด้วย 40 มิลลิลิตรของน้ำกลั่น 10 มิลลิลิตรไตรคลอโร 10%
สารละลายกรดในถ้วยแก้ว สารสกัดถูกกรอง
ผ่านช่องทาง Buchner กับ Whatman ฉบับที่ 2 กระดาษกรอง หลังจาก
แก้ปัญหาการยืนเป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้องความเข้มข้น
ถูกกำหนดจากการอ่านการดูดกลืนแสงที่ 420 นาโนเมตร (UV-1201
Shimadzu เกียวโตญี่ปุ่น).
2.8 ดัชนีการละลายน้ำ (WSI) และดัชนีการดูดซึมน้ำ (WAI)
WSI และ WAI ได้รับการพิจารณาตามวิธีการที่อธิบายไว้
โดยเดอร์สัน (1982) กรัมสองและครึ่งหนึ่งของมันเทศ
แป้งและ 30 มิลลิลิตรของน้ำถูกผสมอย่างจริงจังในการปั่นแยก 50 มิลลิลิตร
หลอด; ส่วนผสมที่ถูกบ่มในอ่างน้ำวันที่ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา
30 นาทีและหมุนเหวี่ยงที่ 2090g นาน 15 นาที ใส
ถูกรวบรวมไว้ในก่อนชั่งน้ำหนักจานเลี้ยงเชื้อและสารตกค้างได้รับการ
ชั่งน้ำหนักหลังเตาอบแห้งค้างคืนที่ 105 องศาเซลเซียสปริมาณของของแข็ง
ในสารละลายแห้งเป็นร้อยละของของแข็งแห้งรวม
ในตัวอย่างเดิม 2.5 กรัมถูกตัวบ่งชี้ ดัชนีการละลายน้ำ.
WAI ที่คำนวณได้เป็นมวลของเม็ดของแข็งที่เหลือ
หลังจากการหมุนเหวี่ยงหารด้วยมวลของตัวอย่างแห้ง.
2.9 ความจุ (SWC) บวม
จุบวมถูกกำหนดตามลายและเฉิง
(2004) โดยใช้สมการ
SWC = น้ำหนักของตะกอน / [น้ำหนักแห้งของกลุ่มตัวอย่าง (1 WS% /
100)].
2.10 ความมุ่งมั่นของฟีนอลรวม
ฟีนอลรวมในแป้งมันเทศได้รับการพิจารณา
ด้วย Folin-Ciocalteu น้ำยาตามการแก้ไขเล็กน้อย
วิธีการอธิบายโดยคู่รักและฮิลส์ (1959) กลุ่มตัวอย่าง (0.1 กรัม)
ถูกสกัด 3 ครั้งมี 20 มลเมทานอล 75% และกรอง
ผ่าน Whatman ฉบับที่ 2 กระดาษกรอง สารสกัดมารวมกัน
และความเข้มข้นในสูญญากาศแบบโรตารี่ระเหย (Rikakikai Co.
Ltd. , กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ที่ 40 C; ไดรฟ์ได้รับการปรับให้ 20 มลกับ
เมทานอล 75% หนึ่งมิลลิลิตรของสารสกัดจาก 5 มิลลิลิตรของน้ำกลั่นและ
2 มิลลิลิตร 10% Folin-Ciocalteau น้ำยาถูกเพิ่มเข้าไปในเหยี่ยว
หลอด หลังจาก 3 นาทีที่อุณหภูมิห้อง 2 มิลลิลิตรของการแก้ปัญหา Na2CO3 7.5%
มีการเพิ่มและตัวอย่างที่ถูกปรับลดถึง 20 มิลลิลิตรกลั่น
น้ำ แต่ละตัวอย่างได้รับอนุญาตให้ยืนเป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่ห้อง
อุณหภูมิและการดูดกลืนแสงวัดที่ 76