Being a cash crop for several rural people, currently mango production has been affected by different biotic and abiotic factors. Among the biotic factors, diseases take a heavy toll on production due to fungal pathogens, of which, Colletotrichum gloeosporioides, a pathogen of mango anthracnose, is the most important biological constraint which restricts mango production in the Southeast Asia ( Ploetz, 1999 and Charles et al., 2012). The ubiquitous fungus C. gloeosporioides Penz. and Sacc. is the anamorph stage (asexual stage of the pathogenic fungus). C. gloeosporiodes is responsible for many diseases in different crops and it is also referred to as ‘anthracnose’ on tropical and subtropical fruits including banana, avocado, papaya, coffee, passion fruit and others. Pathogen causes the infections on stems, leaves and young inflorescences are manifested as sub-circular or angular black lesions which enlarged and coalesced frequently to destroy leaf edges or entire inflorescences (Jeffries et al., 1990). Lesions often coalesce to form large necrotic areas frequently along the leaf margins severely affecting the growth of the leaves which often become dry and fall out giving the older leaves a ‘shot hole’ appearance. Under favorable conditions conidia are dispersed that invade young twigs causing twig dieback in some cases ( Ploetz, 1999). Relative humidity above 95 per cent and temperature ranging from 20 to 30 °C for 12 h are essential for infection and development of C. gloeosporioides on mango fruit. Infection progresses faster in wounded tissues and in ripe fruits ( Prakash, 1996 and Pandey et al., 2012a). Association of C. gloeosporioides to the infection has been proved through histopathogical analysis by using in vitro artificial inoculation of pathogen to the leaves of seedling plants ( Pandey et al., 2012b). The variation of C. gloeosporioides was confirmed in several experiments through molecular polymorphism generated by RAPD ( Gupta et al., 2010). C. gloeosporioides was found to be highly pathogenic on the fruits of mango and also affects mango production both in the pre- and post-harvest stages particularly when attempting to extend storage life resulting in huge economic losses of about 5–20% in the form of damage on the stems, leaves, fruit decay and damage ( Dodd et al., 1997). However, the pathogen C. gloeosporioides causes the same disease in other fruit crops like grape ( Leu and Chang, 1985), avocado ( Coates et al., 1993), strawberry ( Xiao et al., 2004) and olive ( Talhinhas et al., 2011). This study identified the fungus responsible for fruit anthracnose in mango and its sequence homology with the other countries' isolates of anthracnose based phylogenetic analysis by using multiple sequence alignments tools.
During a routine survey of mango growing areas of Eastern Uttar Pradesh symptoms of anthracnose disease were observed. The incidence of the disease within crops was significant (30–50%) and symptoms consisted of lesion and black spots on leaf, inflorescence, apical tip and fruits (Fig. 1). The characteristic symptoms of the diseased plants indicate the possibility of anthracnose disease. Microscopic study was performed by the isolated pure pathogen culture and on the basis of the spore identification it was confirmed that the isolated pathogen from mango leaf, fruit or stem is C. gloeosporioides ( Mullar, 1940). Later, genomic DNA from the isolated plant pathogen is isolated using the Fast DNA Extraction Kit (MP Bio, Inc.) following the manufacturer's instructions. Genomic DNA is visualized under UV light on 0.8% (w/v) agarose gel stained with ethidium bromide and stored at –20 °C. The ITS rDNA region includes ITS1, 5.8S and ITS4 primers which were used to amplify 11 isolates of C. gloeosporioides selected from different places using the universal primers ITS1/ITS4 ( White et al., 1990). Each PCR reaction contained 1× PCR buffer, 2.5 mM MgCl2, 200 µM of each dNTP, 0.2 µM of each primer, 0.7U of Taq DNA polymerase (Biochem) and 1 µl (30 ng) of template DNA. The PCR reaction mix was adjusted to a final volume of 25 µl with nuclease free water. PCR amplifications were performed on a Thermal Cycler (Eppendorf, India Limited). The program consisted of an initial step of 1 min at 94 °C for 1 min, followed by 30 cycles of 60 s at 94 °C, 2 min at 58 °C, and 60 s at 72 °C; and a final extension step of 5 min at 72 °C. PCR products were analyzed in 1.5% agarose gel, stained with ethidium bromide and visualized under UV light. 100-bp DNA ladder was used as a molecular weight marker (Biochem). The sequencing reactions were performed in an ABI prism sequencer (ABI Advanced Biotechnological Institute, Perkin-Elmer Corporation, Foster City, USA). 602 bp consensus sequences without ambiguities were obtained from the sequence of isolates of C. gloeosporioides from mango which are deposited at NCBI GenBank under Accession reference id no.—HM102505 for C. gloeosporioides from mango anthracnose.
เป็นพืชเศรษฐกิจในชนบทหลายคน กำลังผลิตมะม่วงได้รับผลกระทบจากปัจจัย biotic และ abiotic ระหว่างปัจจัย biotic โรคใช้โทรหนักในการผลิตเนื่องจากโรคเชื้อรา ที่ Colletotrichum gloeosporioides ศึกษาของมะม่วง anthracnose มีข้อจำกัดทางชีวภาพสำคัญที่จำกัดการผลิตมะม่วงในเอเชียตะวันออกเฉียงใต้ (Ploetz, 1999 และชาร์ลส์ et al., 2012) เชื้อราสมบูรณ์ C. gloeosporioides Penz และ Sacc เป็นระยะ anamorph (asexual ระยะของเชื้อรา pathogenic) Gloeosporiodes ค.รับผิดชอบสำหรับโรคต่าง ๆ ในพืชแตกต่างกันและยังเรียกว่า 'anthracnose' บน ร้อนผลไม้รวมทั้งอะโวคาโด กล้วย มะละกอ กาแฟ ผลไม้ และอื่น ๆ การศึกษาทำให้ติดเชื้อในลำต้น ใบ และช่อเขียวอ่อนเป็นที่ประจักษ์เป็นวงกลมย่อย หรือแองกูลาร์ดำได้ขยาย และ coalesced บ่อย ๆ จะทำลายขอบใบหรือช่อเขียวทั้งหมด (Jeffries et al., 1990) ได้รวม coalesce ฟอร์มใหญ่ necrotic พื้นที่ตามขอบใบไม้อย่างรุนแรงส่งผลกระทบต่อการเติบโตของใบซึ่งมักจะแห้ง และร่วงให้ใบไม้เก่าลักษณะหลุมยิง บ่อยบ่อย ภายใต้เงื่อนไขที่ดีที่ออก conidia ที่บุกสาวกิ่งสาเหตุ twig dieback ในบางกรณี (Ploetz, 1999) ความชื้นสัมพัทธ์สูงกว่าร้อยละ 95 และอุณหภูมิตั้งแต่ 20 ถึง 30 ° C สำหรับ 12 h จะจำเป็นสำหรับการติดเชื้อและการพัฒนาของ C. gloeosporioides ในมะม่วง ดำเนินไปติดเชื้อเร็ว ในเนื้อเยื่อได้รับบาดเจ็บ และ ในผลไม้สุก (ช 1996 และ Pandey et al., 2012a) สมาคม C. gloeosporioides การติดเชื้อที่ได้รับการพิสูจน์ผ่านการวิเคราะห์ของ histopathogical โดย inoculation ประดิษฐ์เครื่องมือของการศึกษาไปใบของพืชแหล่ง (Pandey et al., 2012b) ความผันแปรของ C. gloeosporioides ได้รับการยืนยันในการทดลองหลายผ่านโพลิมอร์ฟิซึมโมเลกุลที่สร้างขึ้น โดยอาร์เอพีดี (กุปตา et al., 2010) C. gloeosporioides พบจะสูง pathogenic บนผลไม้มะม่วง และยัง มีผลต่อการผลิตมะม่วงทั้งในระยะก่อน และหลังการเก็บเกี่ยวโดยเฉพาะเมื่อพยายามที่จะยืดอายุการเก็บที่เกิดขึ้นในการสูญเสียทางเศรษฐกิจขนาดใหญ่ประมาณ 5 – 20% ในรูปแบบของความเสียหายบนลำต้น ใบ พรมผลไม้ผุและความเสียหาย (Dodd et al., 1997) อย่างไรก็ตาม ศึกษา C. gloeosporioides สาเหตุเดียวกันกับโรคในพืชอื่น ๆ ผลไม้เช่นองุ่น (ลัวและช้าง 1985), อะโวคาโด (Coates et al., 1993), สตรอเบอร์รี่ (เสี่ยว et al., 2004) และมะกอก (Talhinhas et al., 2011) การศึกษานี้ระบุเชื้อราที่ชอบผลไม้ anthracnose ในมะม่วง และ homology ลำดับความพร้อมของประเทศอื่น ๆ ที่แยกได้ของ anthracnose ตาม phylogenetic วิเคราะห์ โดยใช้เครื่องมือการจัดแนวลำดับต่าง ๆในระหว่างการสำรวจตามปกติของมะม่วงเจริญเติบโตของรัฐอุตตรประเทศตะวันออกอาการของโรค anthracnose สุภัค อุบัติการณ์ของโรคในพืชได้อย่างมีนัยสำคัญ (30 – 50%) และอาการประกอบด้วยรอยโรคและจุดดำบนใบไม้ inflorescence คำแนะนำที่ปลายยอด และผลไม้ (Fig. 1) โรคพืชเส้นลักษณะบ่งชี้ของโรค anthracnose ทำการศึกษาด้วยกล้องจุลทรรศน์ โดยวัฒนธรรมศึกษาแยกบริสุทธิ์ และตามรหัสสปอร์ จะถูกยืนยันว่า การศึกษาแยกจากใบมะม่วง ผลไม้ หรือก้าน C. gloeosporioides (Mullar, 1940) ภายหลัง genomic DNA จากการศึกษาพืชแยกเป็นแยกใช้รวดเร็วดีเอ็นเอแยกชุด (MP ชีวภาพ Inc.) ตามคำแนะนำของผู้ผลิต Genomic DNA จะ visualized ภายใต้แสง UV ใน agarose 0.8% (w/v) เจสีกับโบรไมด์ ethidium และเก็บไว้ที่ –20 องศาเซลเซียส ภูมิภาคของ rDNA รวม ITS1, 5.8S และไพรเมอร์ ITS4 ซึ่งใช้ขยายแยก 11 ของ C. gloeosporioides เลือกจากสถานแตกต่างกันโดยใช้ไพรเมอร์สากล ITS1/ITS4 (สีขาวและ al., 1990) แต่ละปฏิกิริยา PCR ประกอบด้วยบัฟเฟอร์ PCR 1 × 2.5 มม. MgCl2, 200 µM ของแต่ละ dNTP, 0.2 µM แต่ละพื้น 0.7U Taq DNA พอลิเมอเรส (Biochem) และ 1 µl (30 ng) ของดีเอ็นเอแม่แบบ ผสมปฏิกิริยา PCR ถูกปรับปริมาตรสุดท้ายของ 25 µl nuclease ฟรีน้ำ PCR amplifications ถูกดำเนินบน Cycler ร้อน (Eppendorf อินเดีย จำกัด) โปรแกรมประกอบด้วยขั้นตอนการเริ่มต้นของ 1 นาทีที่ 94 องศาเซลเซียสใน 1 นาที ตาม ด้วยรอบ 30 60 s ที่ 94 ° C, 2 นาทีที่ 58 ° C และ 60 s ที่ 72 ° C และขั้นสุดท้ายต่อ 5 นาทีที่ 72 องศาเซลเซียส ผลิตภัณฑ์ PCR ถูกวิเคราะห์ใน agarose 1.5% เจล สีกับโบรไมด์ ethidium และ visualized ภายใต้แสง UV บันได 100 bp DNA ถูกใช้เป็นเครื่องหมายโมเลกุลน้ำหนัก (Biochem) ปฏิกิริยาลำดับถูกดำเนินใน sequencer การปริซึม ABI (ขั้นสูง สถาบัน Biotechnological ABI บริษัทเอลเมอเพอร์ ฟอสเตอร์ซิตี้ สหรัฐอเมริกา) ลำดับมติ bp 602 โดย ambiguities ได้รับมาจากลำดับของแยกของ gloeosporioides C. จากมะม่วงที่ฝากที่ NCBI GenBank ภายใต้หมายเลขรหัสอ้างอิงทะเบียน — HM102505 สำหรับ C. gloeosporioides จาก anthracnose มะม่วง
การแปล กรุณารอสักครู่..

เป็นพืชเศรษฐกิจสำหรับคนในชนบทหลายแห่งในปัจจุบันการผลิตมะม่วงได้รับผลกระทบจากสิ่งมีชีวิตที่แตกต่างกันและปัจจัย abiotic ปัจจัยทางชีววิทยาโรคใช้โทรหนักในการผลิตอันเนื่องมาจากเชื้อโรคเชื้อราซึ่ง Colletotrichum gloeosporioides เชื้อโรคของแอนแทรกโนมะม่วงเป็นข้อ จำกัด ทางชีวภาพที่สำคัญที่สุดที่จะ จำกัด การผลิตมะม่วงในเอเชียตะวันออกเฉียงใต้ (Ploetz, ปี 1999 และชาร์ลส์เอต al., 2012) เชื้อรา C. gloeosporioides แพร่หลาย Penz และ Sacc เป็นขั้นตอน anamorph (กะเทยขั้นตอนของการที่ทำให้เกิดโรคเชื้อรา) ซี gloeosporiodes เป็นผู้รับผิดชอบสำหรับหลายโรคในพืชที่แตกต่างกันและยังจะเรียกว่า 'แอนแทรกโน' ในผลไม้เขตร้อนและกึ่งเขตร้อนรวมทั้งกล้วยอะโวคาโด, มะละกอ, กาแฟ, เสาวรสและอื่น ๆ เชื้อโรคที่ทำให้เกิดการติดเชื้อในลำต้นใบและช่อดอกหนุ่มประจักษ์เป็นแผลสีดำย่อยกลมหรือเหลี่ยมซึ่งขยายและรวมตัวกันบ่อยครั้งเพื่อทำลายขอบใบหรือทั้งช่อดอก (เจฟฟรีส์ et al., 1990) แผลมักจะรวมตัวกันในรูปแบบพื้นที่ขนาดใหญ่เศษบ่อยตามขอบใบอย่างรุนแรงส่งผลกระทบต่อการเจริญเติบโตของใบซึ่งมักจะกลายเป็นแห้งและหลุดออกมาให้พี่ใบ 'หลุมยิง' ลักษณะที่ปรากฏ ภายใต้เงื่อนไขที่ดีสปอร์ที่จะแยกย้ายกันไปบุกกิ่งอ่อนที่ก่อให้เกิด dieback กิ่งไม้ในบางกรณี (Ploetz, 1999) ความชื้นสัมพัทธ์เหนือร้อยละ 95 และอุณหภูมิตั้งแต่ 20-30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 12 ชั่วโมงมีความจำเป็นสำหรับการติดเชื้อและการพัฒนาของ C. gloeosporioides ผลไม้มะม่วง การติดเชื้อได้เร็วขึ้นเรื่อยในเนื้อเยื่อได้รับบาดเจ็บและในผลไม้สุก (Prakash, 1996 และ Pandey et al., 2012a) สมาคม C. gloeosporioides การติดเชื้อที่ได้รับการพิสูจน์แล้วว่าผ่านการวิเคราะห์โดยใช้ histopathogical ในหลอดทดลองฉีดวัคซีนเทียมของเชื้อโรคใบของพืชต้นกล้า (Pandey et al., 2012b) รูปแบบของ gloeosporioides ซีได้รับการยืนยันในการทดลองหลายหลายรูปแบบผ่านโมเลกุลที่สร้างขึ้นโดยอาร์เอพี (ที่ Gupta et al., 2010) C. gloeosporioides พบว่าทำให้เกิดโรคมากในผลไม้มะม่วงและยังมีผลต่อการผลิตมะม่วงทั้งในช่วงก่อนและหลังการเก็บเกี่ยวโดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อพยายามที่จะขยายอายุการเก็บรักษาผลในการสูญเสียทางเศรษฐกิจมากประมาณ 5-20% ในรูปแบบ ของความเสียหายในลำต้นใบผลไม้ผุและความเสียหาย (Dodd et al., 1997) อย่างไรก็ตามการติดเชื้อ C. gloeosporioides ทำให้เกิดโรคเดียวกันในพืชผลไม้อื่น ๆ เช่นองุ่น (ลื้อและช้าง, 1985), อะโวคาโด (โคตส์ et al., 1993), สตรอเบอร์รี่ (Xiao et al., 2004) และมะกอก (Talhinhas et al, . 2011) การศึกษาครั้งนี้ระบุเชื้อรารับผิดชอบในการแอนแทรกโนผลไม้มะม่วงและลำดับที่คล้ายคลึงกันกับไอโซเลทประเทศอื่น ๆ ของแอนแทรกโนตาม phylogenetic วิเคราะห์โดยใช้ลำดับหลายการจัดแนวเครื่องมือ. ในระหว่างการสำรวจประจำพื้นที่ปลูกมะม่วงของอาการตะวันออกอุตตรของโรคแอนแทรกโนเป็น สังเกต อุบัติการณ์ของโรคภายในพืชอย่างมีนัยสำคัญ (30-50%) และอาการประกอบด้วยจุดแผลและสีดำบนใบช่อดอกปลายยอดและผลไม้ (รูปที่ 1). ลักษณะอาการของโรคพืชบ่งบอกถึงความเป็นไปได้ของการเกิดโรคแอนแทรกโน กล้องจุลทรรศน์การศึกษาได้ดำเนินการโดยการเพาะเลี้ยงเชื้อที่แยกบริสุทธิ์และบนพื้นฐานของประชาชนสปอร์ที่ได้รับการยืนยันว่าติดเชื้อที่แยกได้จากใบมะม่วงผลไม้หรือลำต้นเป็น C. gloeosporioides (Mullar, 1940) ต่อมาดีเอ็นเอจากเชื้อโรคพืชที่แยกถูกแยกออกโดยใช้การสกัดดีเอ็นเออย่างรวดเร็ว Kit (MP ไบโอ, Inc) ตามคำแนะนำของผู้ผลิต ดีเอ็นเอคือมองเห็นภายใต้แสงยูวีใน 0.8% (w / v) เจล agarose ย้อมด้วย ethidium bromide และเก็บไว้ที่ -20 ° C ภูมิภาค ITS rDNA รวม ITS1, 5.8S และไพรเมอร์ ITS4 ซึ่งถูกนำมาใช้เพื่อขยาย 11 สายพันธุ์ซี gloeosporioides เลือกจากสถานที่ที่แตกต่างกันโดยใช้ไพรเมอร์สากล ITS1 / ITS4 (สีขาว et al., 1990) แต่ละปฏิกิริยา PCR ที่มีอยู่ 1 ×บัฟเฟอร์ PCR 2.5 มิลลิ MgCl2 200 ไมครอนของแต่ละ dNTP 0.2 ไมครอนของแต่ละไพรเมอร์, 0.7U ของดีเอ็นเอโพลิเมอร์ Taq (Biochem) และ 1 ไมโครลิตร (30 นาโนกรัม) ของดีเอ็นเอแม่แบบ ปฏิกิริยาผสม PCR ปรับปริมาณสุดท้ายของ 25 ไมโครลิตรกับ Nuclease น้ำฟรี เครื่องขยายเสียง PCR ได้ดำเนินการในการระบายความร้อน Cycler (Eppendorf อินเดีย จำกัด ) โปรแกรมประกอบด้วยขั้นตอนเริ่มต้นของ 1 นาทีที่ 94 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1 นาทีตามด้วย 30 รอบ 60 s ที่ 94 ° C, 2 นาทีที่ 58 องศาเซลเซียสและ 60 s ที่ 72 ° C; และขั้นตอนสุดท้ายของการขยาย 5 นาทีที่ 72 องศาเซลเซียส ผลิตภัณฑ์ PCR วิเคราะห์ 1.5% agarose เจล, ย้อมด้วย ethidium bromide และมองเห็นภายใต้แสงยูวี บันไดดีเอ็นเอ 100 bp ถูกใช้เป็นเครื่องหมายที่มีน้ำหนักโมเลกุล (Biochem) ปฏิกิริยาลำดับถูกดำเนินการในซีเควนปริซึม ABI (ABI ขั้นสูงเทคโนโลยีชีวภาพสถาบันเพอร์กินเอลเมอคอร์ปอเรชั่นฟอสเตอร์ซิตี, สหรัฐอเมริกา) 602 bp ลำดับฉันทามติโดยไม่ต้องงงงวยได้รับจากลำดับของเชื้อ C. gloeosporioides ของจากมะม่วงที่มีการฝาก NCBI GenBank ภายใต้รหัสอ้างอิงเลข-HM102505 สำหรับ gloeosporioides ซีจากแอนแทรกโนมะม่วง
การแปล กรุณารอสักครู่..

เป็นพืชหลายๆ คนในชนบท ปัจจุบันมะม่วงการผลิตได้รับผลกระทบจากปัจจัยทางชีวภาพ และสิ่งมีชีวิตต่าง ๆ ระหว่างองค์ประกอบทางชีวภาพ โรคใช้โทรหนักในการผลิตเนื่องจากเชื้อราเชื้อโรค , ที่ , Colletotrichum gloeosporioides , เชื้อโรคโรคแอนแทรคโนสของมะม่วง ,สำคัญที่สุดแท้ๆ ข้อจำกัดที่ทำหน้าที่ผลิตมะม่วงในเอเชียตะวันออกเฉียงใต้ ( ploetz , 1999 และชาร์ล et al . , 2012 ) เชื้อรา C . gloeosporioides Penz แพร่หลาย . และ sacc . เป็น anamorph ( ระยะที่ไม่มีเพศ ระยะของโรคเชื้อรา ) C .gloeosporiodes รับผิดชอบหลายโรคในพืชที่แตกต่างกันและมันเป็นยังเรียกว่า ' โรค ' ในเขตร้อนและกึ่งเขตร้อน ผลไม้ ได้แก่ กล้วย มะละกอ อะโวคาโด , กาแฟ , เสาวรส และคนอื่น ๆ เชื้อสาเหตุเชื้อบนต้น ,ใบและช่อดอกจะปรากฏเป็นวงกลมเล็กย่อยหรือเชิงมุมดำแผลซึ่งขยาย และรวมตัวกันบ่อยทำลายขอบใบหรือทั้งดอก ( เจฟฟรีย์ et al . , 1990 )แผลมักจะเชื่อมต่อกันเป็นรูปพื้นที่ที่ใหญ่บ่อยตามขอบแผ่นใบอย่างรุนแรงส่งผลกระทบต่อการเจริญเติบโตของใบซึ่งมักจะกลายเป็นแห้งและตกออก ให้แก่ใบยิงรู ' ลักษณะที่ปรากฏ ภายใต้เงื่อนไขอันเดียจะแพร่กระจายที่บุกยังกิ่งไม้กิ่ง dieback ทำให้ในบางกรณี ( ploetz , 1999 )ความชื้นสัมพัทธ์สูงกว่า 95 เปอร์เซ็นต์ อุณหภูมิตั้งแต่ 20 ถึง 30 ° C เป็นเวลา 12 ชั่วโมงเป็นสิ่งจำเป็นสำหรับการติดเชื้อและการพัฒนาของ C . gloeosporioides ได้ดีที่สุดในมะม่วงผลไม้ การติดเชื้อที่เร็วขึ้นในเนื้อเยื่อที่บาดเจ็บ และในผลไม้สุก ( Prakash , 1996 และเดย์ et al . , 2012a ) สมาคมของเชื้อรากับการติดเชื้อได้รับการพิสูจน์ผ่านการวิเคราะห์ histopathogical โดยใช้หลอดเทียมเชื้อเชื้อโรคกับใบของพืช ต้นกล้า ( เดย์ et al . , 2012b ) การเปลี่ยนแปลงของ C . gloeosporioides ยืนยันในการทดลองหลายผ่านโมเลกุล ) ที่สร้างขึ้นโดย RAPD ( Gupta et al . , 2010 ) C .เชื้อราที่พบเป็นอย่างสูงที่ก่อโรคในผลไม้มะม่วงและยังมีผลต่อการผลิตมะม่วง ทั้งก่อนและหลังการเก็บเกี่ยวขั้นตอนโดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อพยายามที่จะยืดอายุการเก็บรักษาผลในการสูญเสียทางเศรษฐกิจขนาดใหญ่ประมาณ 5 - 20 % ในรูปของความเสียหายบนลำต้น ใบไม้ผุ ผลไม้และความเสียหาย ( Dodd et al . , 1997 ) อย่างไรก็ตาม เชื้อ C .gloeosporioides สาเหตุโรคเดียวกันในไม้ผลอื่น ๆเช่นองุ่น ( ลิวชาง , 1985 ) , อะโวคาโด ( โคตส์ et al . , 1993 ) สตรอเบอร์รี่ ( เสี่ยว et al . , 2004 ) และมะกอก ( talhinhas et al . , 2011 )การศึกษานี้ระบุเชื้อราแอนแทรคโนสในมะม่วงและผลไม้รับผิดชอบเป็นลำดับกับประเทศอื่น ๆ พบว่า โรคแอนแทรคโนส ซึ่งจากการวิเคราะห์โดยลำดับ การใช้หลายเครื่องมือ
ในระหว่างการสำรวจตามปกติของพื้นที่ปลูกมะม่วงภาคตะวันออก อุตตรอาการของโรคแอนแทรคโนสพบ .
การแปล กรุณารอสักครู่..
