2.1. Study siteThe study was carrie

2.1. Study site
The study was carried out in the period March–July 2011 at the
Laboratory of Aquaculture Nutrition, Faculty of Agriculture and Natural
Resources, An Giang University, in An Giang province in the Mekong
Delta of Vietnam.
2.2. Experimental fish
Striped catfish (P. hypophthalmus) fingerlings were bought fromthe
Research Center of Aquaculture Seed Production in An Giang province.
The fish were treated with a 3% NaCl solution for 15 min on arrival to
eliminate ectoparasite infection, and were reared and quarantined in a
composite tank (3m3 of water) for one month to acclimatise to indoor
conditions. Fishwere selected randomly fromthe rearing tank,weighed
and then transferred to the experimental tanks one week before the
start of the experiment for acclimatisation to experimental conditions
2.3. Experimental design
The experimentwas set up as a factorial design with seven different
diets fed in triplicate. At the beginning and end of the experiment, each
acclimatised fish was individually weighed using a digital scale. Thirty
homogeneous fish with an average initial body weight (BW) of 16.3±
4.0 gfish−1 were selected and distributed into each tank for each
treatment.
2.4. Experimental diets
The experimental diets consisted of one reference diet and six test
diets, andwere formulated tomeet the nutrient requirements of striped
catfish (Hung et al., 2002). The reference diet contained fish meal as the main crude protein (CP) source, whilst in the six test diets 20–100% of
the fish meal CPwas replacedwith CP fromalternative local ingredients
(Table 1).
2.5. Test feed ingredients
The chemical composition of the test feed ingredients is shown in
Table 2. Groundnut cake was purchased from Vinh Long province and
shrimp head meal from Kien Giang province. Soybean meal and fish
meal were purchased from the local market (AFIEX plant) in Long
Xuyen city, An Giang province. Cassava leaves and sweet potato leaves
were collected during the harvest period from farms in the Tri Ton and
Cho Moi districts of An Giang province, respectively. The leaves were
cleaned with freshwater, sun-dried for 2–3 days and then milled to a
meal. Golden apple snails were purchased from farmers in Cho Moi
district, An Giang province, and TamNong district, Dong Thap province.
Only the meat of the golden apple snails was collected and it was
cleaned with freshwater and sun-dried for 3 days before use.2.6. Diet preparation and feeding
The feed was produced by careful mixing of the dry ingredients
before adding squid oil and distilled water. The amount of distilled
waterwas adjusted to get the mixture to forma stiff dough. The pelleted
feed wasmade using an electronic meat grinder (Quoc Hung company,
Vietnam), with diameter and length of pelleted feed in the range of
1–2 mm. All diets were sun-dried for two to three days, and then
weighed and stored in sealed plastic bags in small portions at 5 °C until
use. New batches of experimental feeds were made bi-weekly. The fish
were fed by hand to apparent satiety with about 3–5% of body weight
per day at 9.00 h and 14.00 h and uneaten feed was collected after
feeding using a fish racket for floating material and by opening the valve
at the bottom of the sediment collection tube of each tank to flush out
sedimented feed material.
2.7. Experiment facilities
The experiment was carried out in a closed re-circulation culture
system in a series of 21 composite settlement tanks (3 per treatment)
with a volume of about 500 L per tank. The settlement tanks were
connected to a sedimentation tank which contained sand and stones
(1–2 mm) as a biological filter. Tap freshwater was aerated for 24 h to
allow chlorine to evaporate and fed into each tank at a flow rate of
3 L min−1. Aeration with one air-stone diffuser was provided to
individual tanks via a low pressure electrical blower. In addition, the 2.8. Chemical analysis
Samples of feed ingredients, diets and fish fillet, liver and kidney
were analysed in duplicate using standard methods (AOAC, 1997). Dry
matterwas determined by drying in an oven at 105 °C for 24 h.Nitrogen
(N) was determined by the Kjeldahl method and crude protein (CP)
was calculated as N×6.25. Crude fat (EE) content was analysed using
the Soxhlet method after acid hydrolysis of the sample. Crude fibre (CF)
content was determined by standard methods (AOAC, 1997) and
neutral detergent fibre (NDF) was determined according to Van Soest et
al. (1991). Ash content was determined by incineration in a muffle
furnace at 550 °C for 12 h. Amino acid content of ingredients and diets
was analysed by high-performance liquid chromatography according to
Vázquez-Ortiz et al. (1995). Gross energy (MJ kg−1) was determined
with a bomb calorimeter (Calorimeter Parr 6300, Parr Instrument
Company, Moline, IL, USA).
2.9. Water quality monitoring
Temperature (T °C) was recorded daily with a temperature meter at
8.00 h and 14.00 h. Dissolved oxygen (DO mg L−1) was measured by
Winkler titration (Stirling, 1985) twice a month. Nitrite nitrogen
(mg L−1), nitrate nitrogen (mg L−1) and total ammonia nitrogen
(mg L−1) were measured twice a month using the Hach Lange cuvette
test method (DR2800 visual spectrophotometer, Hach Lange Gmbh,
Germany). The pH was recorded twice amonthwith a pHmeter (Schott
Greate, USA). Plankton species in each tank were monitored and
determined twice a month as described by Bellinger and Sigee (2010).
The density of plankton was calculated by the following formula:
N=(P×C×100)/V, where N is the number of plankton per litre of water
in the tank, P is the number of planktonic organisms counted in different tanks of different treatments, C is the volume of theplastic bottle holding
the sample (100 mL) and V is the volume of water sample from each
tank. The identification of zooplankton and phytoplankton species was
based on Suthers and Rissik (2008).
2.10. Calculations
The following calculations were made:
Specific growth rate (SGR%)=[(ln Wf−ln Wi)/T]×100 and daily
weight gain (DWG)=(Wf−Wi)/T, where Wf and Wi refer to the
mean final weight and the mean initial weight, respectively, and T
is the feeding trial period in days.
Survival rate [(SR%)=(TFf /TFi)×100], where the TFf is total
number of fish at finish (harvest) and TFi is total number of fish
at start.
Total feed intake per fish (FI)=[total feed intake (g)/number of fish].
Protein intake (PI)=[feed intake (g)]×[protein in the diet (%)].
Feed conversion ratio (FCR)=[total feed intake (g)/total wetweight
gain (g)].
Hepato-somatic index (HSI%)=[100×(liver weight (g) /body
weight (g))].
Intra-peritoneal fat (IPF%)=[100×(intra-peritoneal fat weight
(g)/body weight (g))].
Viscera-somatic weight (VSI%)=[100×(viscera-somatic weight
(g)/body weight (g))].
Kidney index (KI)=[100×(kidney weight (g)/body weight (g))].2.11. Statistical analysis
All data on fish growth performance, feed utilisation and carcass traits
were statistically analysed by one-way analysis of variance (ANOVA),
using Tukey's post hoc ANOVA test for individual comparisons (P≤0.05
level of significance). All statistical analyses were carried out using the
IBM SPSS STATISTIC (2011) programme, version 19.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.1 การศึกษาเว็บไซต์การศึกษาได้ดำเนินการในช่วงเดือนมีนาคม – 2011 กรกฎาคมที่การห้องปฏิบัติการโภชนาการการเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำ คณะเกษตรและธรรมชาติทรัพยากร อันเกียงมหาวิทยาลัย ในจังหวัดอันยางในแม่น้ำโขงเดลต้าของเวียดนาม2.2 การทดลองปลาลาย (P. hypophthalmus) ชนิดที่ซื้อจากงานวิจัยศูนย์เพาะเลี้ยงสัตว์น้ำเมล็ดผลิตในอันเกียงปลาได้รับการรักษา ด้วย 3% NaCl ทางแก้ไข 15 นาทีในการเดินทางไปกำจัดเชื้อ ectoparasite และผลิตภัณฑ์ และตรวจสอบในการถังคอมโพสิต (3m 3 น้ำ) สำหรับการ acclimatise การภายในหนึ่งเดือนเงื่อนไขการ Fishwere เลือกสุ่มจากถัง rearing ชั่งน้ำหนักแล้ว โอนย้ายไปยังถังทดลองหนึ่งสัปดาห์ก่อนจุดเริ่มต้นของการทดลอง acclimatisation เงื่อนไขการทดลอง2.3 การทดลองออกแบบExperimentwas ตั้งค่าเป็นแบบแฟกกับเจ็ดแตกต่างกันอาหารเลี้ยงใน triplicate ที่เริ่มต้นและจุดสิ้นสุดของการทดลอง แต่ละปลา acclimatised ทีถูกชั่งน้ำหนักโดยใช้เครื่องชั่งดิจิตอล สามสิบมีน้ำหนักตัวเฉลี่ยเริ่มต้น (BW) ของ 16.3± เหมือนปลาเลือก และกระจายลงในถังแต่ละแต่ละ 4.0 gfish−1รักษา2.4 การทดลองอาหารประกอบด้วยอาหารทดลองอาหารอ้างอิงที่หนึ่ง และหกทดสอบอาหาร andwere สูตร tomeet ความต้องการธาตุอาหารของลายปลาดุก (ฮังและ al., 2002) อาหารปลาอาหารที่ประกอบด้วยการอ้างอิงเป็นแหล่งหลักโปรตีนหยาบ (CP) ในขณะที่ในการทดสอบ 6 อาหาร 20 – 100% ของปลาอาหาร CPwas replacedwith CP fromalternative ท้องถิ่นส่วนผสม(ตาราง 1)2.5 การทดสอบวัตถุดิบอาหารแสดงองค์ประกอบทางเคมีของการทดสอบวัตถุดิบอาหารตารางที่ 2 ร้านเค้กถั่วลิสงวินห์ลองจังหวัด และกุ้งหัวอาหารจากจังหวัดเกียนยาง กากถั่วเหลืองและปลาอาหารที่ซื้อจากท้องตลาด (โรงงาน AFIEX) ยาวเกวียนเมือง จังหวัดอันยาง ใบมันสำปะหลังและมันเทศใบถูกรวบรวมไว้ช่วงเก็บเกี่ยวจากฟาร์มในตันตรี และช่ออยอำเภอของจังหวัดอันยาง ตามลำดับ ใบไม้ได้ความสะอาด ด้วยน้ำจืด ซันแห้ง 2 – 3 วันแล้ว ปลายจะมีมื้ออาหาร ซื้อจากเกษตรกรในช่ออยหอยแอปเปิ้ลทองคำอำเภอ จังหวัดอันยาง และที่ ย่าน TamNong ทับดงจ.รวบรวมไว้เฉพาะเนื้อหอยแอปเปิ้ลทองคำ และก็ทำความสะอาด ด้วยปลาแดดเดียว 3 วันก่อน use.2.6 เตรียมอาหารและการให้อาหารตัวดึงข้อมูลถูกผลิต โดยผสมส่วนผสมแห้งระวังก่อนที่จะเพิ่มปลาหมึกน้ำมันและน้ำกลั่น จำนวนกลั่นwaterwas ปรับปรุงจะได้รับส่วนผสมให้ forma แป้งแข็ง การ pelletedอาหารโดยใช้เครื่องบดเนื้ออิเล็กทรอนิกส์ (บริษัทฮังก๊วก wasmadeเวียดนาม), มีเส้นผ่าศูนย์กลางและความยาวของตัวดึงข้อมูล pelleted ในช่วง1 – 2 มม. อาหารทั้งหมดถูกแดดเดียวสองถึงสามวัน และชั่งน้ำหนัก และเก็บไว้ในปิดผนึกถุงพลาสติกเราะที่ 5 ° C จนถึงuse. New batches of experimental feeds were made bi-weekly. The fishwere fed by hand to apparent satiety with about 3–5% of body weightper day at 9.00 h and 14.00 h and uneaten feed was collected afterfeeding using a fish racket for floating material and by opening the valveat the bottom of the sediment collection tube of each tank to flush outsedimented feed material.2.7. Experiment facilitiesThe experiment was carried out in a closed re-circulation culturesystem in a series of 21 composite settlement tanks (3 per treatment)with a volume of about 500 L per tank. The settlement tanks wereconnected to a sedimentation tank which contained sand and stones(1–2 mm) as a biological filter. Tap freshwater was aerated for 24 h toallow chlorine to evaporate and fed into each tank at a flow rate of3 L min−1. Aeration with one air-stone diffuser was provided toindividual tanks via a low pressure electrical blower. In addition, the 2.8. Chemical analysisSamples of feed ingredients, diets and fish fillet, liver and kidneywere analysed in duplicate using standard methods (AOAC, 1997). Drymatterwas determined by drying in an oven at 105 °C for 24 h.Nitrogen(N) was determined by the Kjeldahl method and crude protein (CP)was calculated as N×6.25. Crude fat (EE) content was analysed usingthe Soxhlet method after acid hydrolysis of the sample. Crude fibre (CF)content was determined by standard methods (AOAC, 1997) andneutral detergent fibre (NDF) was determined according to Van Soest etal. (1991). Ash content was determined by incineration in a mufflefurnace at 550 °C for 12 h. Amino acid content of ingredients and dietswas analysed by high-performance liquid chromatography according toVázquez-Ortiz et al. (1995). Gross energy (MJ kg−1) was determinedwith a bomb calorimeter (Calorimeter Parr 6300, Parr InstrumentCompany, Moline, IL, USA).2.9. Water quality monitoringTemperature (T °C) was recorded daily with a temperature meter at8.00 h and 14.00 h. Dissolved oxygen (DO mg L−1) was measured byWinkler titration (Stirling, 1985) twice a month. Nitrite nitrogen(mg L−1), nitrate nitrogen (mg L−1) and total ammonia nitrogen(mg L−1) were measured twice a month using the Hach Lange cuvettetest method (DR2800 visual spectrophotometer, Hach Lange Gmbh,Germany). The pH was recorded twice amonthwith a pHmeter (SchottGreate, USA). Plankton species in each tank were monitored anddetermined twice a month as described by Bellinger and Sigee (2010).The density of plankton was calculated by the following formula:N=(P×C×100)/V, where N is the number of plankton per litre of waterin the tank, P is the number of planktonic organisms counted in different tanks of different treatments, C is the volume of theplastic bottle holdingthe sample (100 mL) and V is the volume of water sample from eachtank. The identification of zooplankton and phytoplankton species wasbased on Suthers and Rissik (2008).
2.10. Calculations
The following calculations were made:
Specific growth rate (SGR%)=[(ln Wf−ln Wi)/T]×100 and daily
weight gain (DWG)=(Wf−Wi)/T, where Wf and Wi refer to the
mean final weight and the mean initial weight, respectively, and T
is the feeding trial period in days.
Survival rate [(SR%)=(TFf /TFi)×100], where the TFf is total
number of fish at finish (harvest) and TFi is total number of fish
at start.
Total feed intake per fish (FI)=[total feed intake (g)/number of fish].
Protein intake (PI)=[feed intake (g)]×[protein in the diet (%)].
Feed conversion ratio (FCR)=[total feed intake (g)/total wetweight
gain (g)].
Hepato-somatic index (HSI%)=[100×(liver weight (g) /body
weight (g))].
Intra-peritoneal fat (IPF%)=[100×(intra-peritoneal fat weight
(g)/body weight (g))].
Viscera-somatic weight (VSI%)=[100×(viscera-somatic weight
(g)/body weight (g))].
Kidney index (KI)=[100×(kidney weight (g)/body weight (g))].2.11. Statistical analysis
All data on fish growth performance, feed utilisation and carcass traits
were statistically analysed by one-way analysis of variance (ANOVA),
using Tukey's post hoc ANOVA test for individual comparisons (P≤0.05
level of significance). All statistical analyses were carried out using the
IBM SPSS STATISTIC (2011) programme, version 19.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.1 เว็บไซต์การศึกษาการศึกษาได้ดำเนินการในช่วงเดือนมีนาคมถึงเดือนกรกฎาคม 2011 ที่ห้องปฏิบัติการเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำโภชนาการคณะเกษตรธรรมชาติและทรัพยากรGiang มหาวิทยาลัยในจังหวัด Giang ในแม่น้ำโขงเดลต้าเวียดนาม. 2.2 ปลาทดลองปลาดุกลาย (พี hypophthalmus) ลูกปลาถูกซื้อ fromthe ศูนย์วิจัยผลิตเมล็ดพันธุ์เพาะเลี้ยงสัตว์น้ำในจังหวัด Giang. ปลาที่ได้รับการรักษาด้วยวิธีการแก้ปัญหาโซเดียมคลอไรด์ 3% เป็นเวลา 15 นาทีเมื่อเดินทางมาถึงที่จะกำจัดการติดเชื้อectoparasite และได้รับการเลี้ยงดูและกักกันในถังคอมโพสิต (3M3 น้ำ) เป็นเวลาหนึ่งเดือนเพื่อที่จะ acclimatise ร่มเงื่อนไข Fishwere เลือกถังสุ่ม fromthe เลี้ยงชั่งน้ำหนักและจากนั้นก็ย้ายไปที่ถังทดลองหนึ่งสัปดาห์ก่อนที่จะมีการเริ่มต้นของการทดลองสำหรับเคยชินกับสภาพการทดลอง2.3 การออกแบบการทดลองexperimentwas ตั้งขึ้นเป็นปัจจัยการออกแบบที่แตกต่างกันกับเจ็ดอาหารที่เลี้ยงในเพิ่มขึ้นสามเท่า ที่จุดเริ่มต้นและจุดสิ้นสุดของการทดลองแต่ละปลา acclimatised ได้รับการชั่งน้ำหนักเป็นรายบุคคลโดยใช้ระดับดิจิตอล สามสิบปลาเป็นเนื้อเดียวกันกับน้ำหนักตัวเริ่มต้นเฉลี่ย (BW) 16.3 ± 4.0 gfish-1 ได้รับการคัดเลือกและการกระจายลงไปในถังแต่ละสำหรับแต่ละการรักษา. 2.4 อาหารทดลองอาหารที่ทดลองของอาหารอ้างอิงหกทดสอบอาหารandwere สูตร tomeet ความต้องการสารอาหารของลายปลาดุก(Hung et al., 2002) อาหารการอ้างอิงที่มีปลาป่นเป็นโปรตีนหลัก (CP) แหล่งที่มาในขณะที่ในช่วงหกอาหารทดสอบ 20-100% ของCPwas ปลาป่น replacedwith CP วัตถุดิบในท้องถิ่น fromalternative (ตารางที่ 1). 2.5 วัตถุดิบอาหารทดสอบองค์ประกอบทางเคมีของวัตถุดิบอาหารทดสอบแสดงในตารางที่2 เค้กถั่วลิสงที่ซื้อมาจากจังหวัด Vinh ยาวและอาหารจากหัวกุ้งKien Giang จังหวัด กากถั่วเหลืองและปลาอาหารที่ซื้อมาจากตลาดในประเทศ (AFIEX พืช) ในลองเมืองXuyen, จังหวัด Giang ใบมันสำปะหลังและใบมันเทศที่ถูกเก็บรวบรวมในช่วงระยะเวลาการเก็บเกี่ยวจากฟาร์มใน Ton Tri และหัวเมืองโชม่อยของจังหวัดGiang ตามลำดับ ใบถูกทำความสะอาดด้วยน้ำจืดตากแห้ง 2-3 วันและแป้งแล้วไปเป็นอาหาร หอยเชอรี่ที่ซื้อจากเกษตรกรในโชม่อยอำเภอจังหวัด Giang และอำเภอ TamNong จังหวัด Dong Thap. เฉพาะเนื้อหอยทากแอปเปิ้ลสีทองที่ถูกเก็บรวบรวมและมันก็ทำความสะอาดด้วยน้ำจืดและตากแห้งเป็นเวลา 3 วันก่อนการใช้งาน 2.6 การเตรียมอาหารและการให้อาหารอาหารที่ผลิตโดยการผสมระมัดระวังของส่วนผสมแห้งก่อนที่จะเพิ่มน้ำมันปลาหมึกและน้ำกลั่น ปริมาณกลั่นwaterwas ปรับเพื่อให้ได้ส่วนผสมที่จะ Forma แป้งแข็ง เม็ดฟีด wasmade ใช้เครื่องบดเนื้ออิเล็กทรอนิกส์ (บริษัท ฮุนก๊วก, เวียดนาม) ที่มีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางและความยาวของอาหารเม็ดในช่วงของ1-2 มม อาหารทั้งหมดถูกแดดเป็นเวลาสองถึงสามวันแล้วชั่งน้ำหนักและเก็บไว้ในถุงพลาสติกที่ปิดสนิทในส่วนเล็ก ๆ ที่ 5 องศาเซลเซียสจนการใช้งาน สำหรับกระบวนการใหม่ของฟีดทดลองทำรายปักษ์ ปลาที่ได้รับการเลี้ยงดูด้วยมือเพื่อความเต็มอิ่มชัดมีประมาณ 3-5% ของน้ำหนักตัวต่อวันเวลา9.00 ชั่วโมงและ 14.00 ชั่วโมงและอาหารกะหรี่เก็บหลังจากให้อาหารโดยใช้ไม้ปลาสำหรับวัสดุที่ลอยและโดยการเปิดวาล์วที่ด้านล่างของหลอดเก็บตะกอนของแต่ละถังล้างออกป้อนวัสดุตกตะกอน. 2.7 สิ่งอำนวยความสะดวกการทดลองการทดลองที่ได้ดำเนินการในการไหลเวียนของวัฒนธรรมใหม่ปิดระบบในชุดของการตั้งถิ่นฐาน21 ถังคอมโพสิต (3 ต่อการรักษา) มีปริมาณประมาณ 500 ลิตรต่อถัง ถังนิคมถูกเชื่อมต่อกับถังตกตะกอนที่มีทรายและหิน(1-2 มิลลิเมตร) เป็นตัวกรองชีวภาพ น้ำจืดแตะถูกมวลเบาเป็นเวลา 24 ชั่วโมงเพื่อช่วยให้คลอรีนระเหยและเลี้ยงในถังแต่ละที่อัตราการไหลของ3 นาที L-1 เติมอากาศด้วยการกระจายอากาศหินให้กับรถถังของแต่ละบุคคลผ่านแรงดันต่ำเป่าลมไฟฟ้า นอกจากนี้ 2.8 การวิเคราะห์ทางเคมีตัวอย่างของวัตถุดิบอาหาร, อาหารและเนื้อปลาตับและไตได้รับการวิเคราะห์ในที่ซ้ำกันโดยใช้วิธีการมาตรฐาน(AOAC, 1997) แห้งmatterwas กำหนดโดยการอบแห้งในเตาอบที่อุณหภูมิ 105 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 h.Nitrogen (N) ถูกกำหนดโดยวิธี Kjeldahl และโปรตีน (CP) ที่คำนวณได้เป็นไม่มี× 6.25 ไขมันดิบ (EE) เนื้อหาการวิเคราะห์โดยใช้วิธีการวิธีการสกัดแบบหลังจากการย่อยสลายกรดของกลุ่มตัวอย่าง เยื่อใย (CF) เนื้อหาถูกกำหนดโดยวิธีการมาตรฐาน (AOAC, 1997) และเส้นใยผงซักฟอกที่เป็นกลาง(NDF) ถูกกำหนดตาม Van Soest et al, (1991) ปริมาณเถ้าถูกกำหนดโดยการเผาในเผาเตาที่ 550 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 12 ชั่วโมง อะมิโนกรดของวัตถุดิบและอาหารที่ได้รับการวิเคราะห์โดยโคของเหลวที่มีประสิทธิภาพสูงตามVázquez-et al, ออร์ติซ (1995) พลังงานรวม (MJ kg-1) ถูกกำหนดด้วยความร้อนระเบิด(Calorimeter พาร์ 6300, พาร์ตราสารบริษัท Moline, IL, USA). 2.9 การตรวจสอบคุณภาพน้ำอุณหภูมิ (T ° C) ได้รับการบันทึกประจำวันกับเครื่องวัดอุณหภูมิที่ 8.00 ชั่วโมงและ 14.00 ชั่วโมง ปริมาณออกซิเจนละลายน้ำ (DO mg L-1) โดยวัดจากการไตเตรทเคลอร์(สเตอร์ลิง, 1985) เดือนละสองครั้ง ไนโตรเจนไนไตรท์(มก. L-1), ไนโตรเจนไนเตรต (มก. L-1) และไนโตรเจนแอมโมเนียรวม(มก. L-1) วัดสองครั้งต่อเดือนโดยใช้ cuvette มีเหตุมีผล Hach วิธีการทดสอบ (spectrophotometer DR2800 ภาพ Hach มีเหตุมีผล Gmbh, เยอรมนี) . พีเอชที่ถูกบันทึกไว้เป็นครั้งที่สอง amonthwith pHmeter (ที่ชอตต์Greate สหรัฐอเมริกา) ชนิดแพลงก์ตอนในแต่ละถังได้รับการตรวจสอบและกำหนดเดือนละสองครั้งตามที่อธิบาย Bellinger และ Sigee (2010). ความหนาแน่นของแพลงก์ตอนที่คำนวณได้จากสูตรต่อไปนี้: N = (P × C × 100) / V ที่ N คือจำนวน ของแพลงก์ตอนต่อลิตรของน้ำในถังP คือจำนวนของสิ่งมีชีวิต planktonic นับในถังที่แตกต่างกันของการรักษาที่แตกต่างกัน, C คือปริมาตรของขวด theplastic ถือตัวอย่าง(100 มิลลิลิตร) และ V คือปริมาตรของตัวอย่างน้ำจากแต่ละถัง. บัตรประจำตัวของแพลงก์ตอนสัตว์และแพลงก์ตอนพืชสายพันธุ์ที่ได้รับการขึ้นอยู่กับ Suthers และ Rissik (2008). 2.10 การคำนวณการคำนวณดังต่อไปนี้ถูกสร้างขึ้นมา: อัตราการเจริญเติบโตเฉพาะ (SGR%) = [(LN Wi WF-LN) / T] × 100 และในชีวิตประจำวันการเพิ่มน้ำหนัก(DWG) = (WF-Wi) / T ที่ Wf และ Wi อ้างถึงน้ำหนักสุดท้ายค่าเฉลี่ยและค่าเฉลี่ยน้ำหนักเริ่มต้นตามลำดับและ T คือระยะเวลาการทดลองให้อาหารในวัน. อัตราการรอดตาย [(อา%) = (ฉิบหาย / TFI) × 100] ที่ฉิบหายคือผลรวมจำนวนของปลาที่จบ( การเก็บเกี่ยว) และ TFI เป็นจำนวนรวมของปลาในช่วงเริ่มต้น. ปริมาณอาหารที่กินทั้งหมดต่อปลา (FI) = [ปริมาณอาหารที่กินรวม (กรัม) / จำนวนของปลา]. การบริโภคโปรตีน (PI) = [ปริมาณอาหารที่กิน (ช)] × [โปรตีน ในอาหาร (%)]. ฟีดอัตราการแปลงสภาพ (FCR) = [ปริมาณอาหารที่กินรวม (กรัม) / wetweight รวมกำไร(ช)]. ดัชนีตับร่างกาย (HSI%) = [100 × (น้ำหนักตับ (g) / ร่างกายน้ำหนัก(ช))]. ไขมันภายในช่องท้อง (IPF%) = [100 × (น้ำหนักไขมันภายในช่องท้อง(g) / น้ำหนักตัว (ช))]. น้ำหนักพุง-ร่างกาย (VSI%) = [100 × (น้ำหนักอวัยวะภายในร่างกาย-(g) / น้ำหนักตัว (ช))]. ดัชนีไต (KI) = [100 × (น้ำหนักไต (g) / น้ำหนักตัว (ช))]. 2.11 การวิเคราะห์ทางสถิติข้อมูลทั้งหมดในการเจริญเติบโตของปลาการใช้อาหารสัตว์และลักษณะซากวิเคราะห์ทางสถิติโดยการวิเคราะห์ทางเดียวความแปรปรวน(ANOVA) โดยใช้โพสต์ทูกีของคณะกรรมการทดสอบ ANOVA สำหรับการเปรียบเทียบของแต่ละบุคคล (P≤0.05ระดับนัยสำคัญ) การวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมดถูกดำเนินการโดยใช้IBM SPSS สถิติ (2011) โปรแกรมรุ่น 19

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.1 . การศึกษาเว็บไซต์
ได้ดำเนินการในช่วงเดือนมีนาคม - กรกฎาคม 2554 ณห้องปฏิบัติการ
โภชนาการการเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำ คณะเกษตรศาสตร์และทรัพยากรธรรมชาติ
, มหาวิทยาลัย Giang ใน Giang ในแม่น้ำโขงเดลต้าของเวียดนาม
.
2.2 . ทดลอง ปลาสวาย ปลา
( หน้า Hypophthalmus ) ลูกปลาถูกซื้อจากศูนย์วิจัย
การผลิตเมล็ดพันธุ์เพาะเลี้ยงสัตว์น้ำในจังหวัด Giang .
ปลาที่ได้รับการรักษาด้วย 3% NaCl สารละลาย 15 นาทีเมื่อมาถึง
กำจัดการติดเชื้อ ectoparasite และถูกเลี้ยงและกักกันใน
ถังคอมโพสิต ( 3m3 น้ำ ) สำหรับ 1 เดือน acclimatise สภาพร่ม

fishwere สุ่มเลือกจาก 1 ถังชั่ง
แล้วโอนไปยังถังทดลอง 1 สัปดาห์ก่อน
เริ่มต้นของการทดลองสำหรับ Acclimatisation เงื่อนไข
2.3 ทดลอง ทดลองออกแบบ
กระทำตั้งเป็นคลองระบายน้ำกับเจ็ดแตกต่างกัน
อาหารเลี้ยงทั้งสามใบ ที่จุดเริ่มต้นและจุดสิ้นสุดของการทดลองแต่ละ
acclimatised ปลาแบบหนักการใช้เครื่องชั่งดิจิตอล เป็นเนื้อเดียวกันกับสามสิบ
ปลาน้ำหนักเริ่มต้นเฉลี่ย ( BW ) 16.3 ±
40 gfish − 1 ถูกเลือกและการกระจายในแต่ละถังสำหรับการรักษาแต่ละ
.
2.4 . อาหารทดลองทุกสูตรอาหารทดลอง จำนวนหนึ่ง

6 อาหารอ้างอิงและทดสอบและสูตรอาหารกับความต้องการสารอาหารของลาย
ปลาดุก ( แขวน et al . , 2002 ) การอ้างอิงในอาหารที่มีปลาป่นเป็นแหล่งโปรตีนหลัก ( CP ) ขณะที่ในหกทดสอบอาหาร 20 – 100 %
ปลาป่น cpwas replacedwith CP fromalternative ท้องถิ่นส่วนผสม
( ตารางที่ 1 ) .
2.5 ส่วนผสมอาหารทดสอบ
องค์ประกอบทางเคมีของการทดสอบวัตถุดิบอาหารสัตว์จะแสดงใน
โต๊ะ 2 เค้กถั่วซื้อมาจากจังหวัดหวิงลอง และอาหารกุ้งจากหัว
เกียนยาง จังหวัด ปลาป่นและกากถั่วเหลือง
ซื้อจากตลาดท้องถิ่น ( อาฟิเ กซ์พืช ) ในเมือง Xuyen นาน
, จังหวัด .ใบมันสำปะหลัง และมันเทศใบ
ถูกเก็บในช่วงการเก็บเกี่ยว จากฟาร์มใน ไทรตัน
โช Moi เขตของจังหวัด Giang ตามลำดับ ใบเป็น
ล้างปลา ตากแดด 2 - 3 วัน แล้วบดกับ
อาหาร หอยแอปเปิ้ลสีทองซื้อจากเกษตรกรใน โช มท.
ตำบล , จังหวัด และ tamnong อำเภอด่งท้าปจังหวัด .
แต่เนื้อของหอยแอปเปิ้ลสีทองที่ถูกเก็บรวบรวมและมัน
ทำความสะอาดน้ำจืดและตากแดดเป็นเวลา 3 วัน ก่อนใช้ 2.6 การเตรียมอาหารและการให้อาหาร
อาหารถูกผลิตโดยระมัดระวังการผสมส่วนผสมแห้ง
ก่อนที่จะเพิ่มน้ำมันปลาหมึก และน้ำกลั่น ปริมาณกลั่น
waterwas ปรับเพื่อให้ได้ส่วนผสมที่เริ่มแข็งแป้ง การอัดเม็ด
wasmade อาหารโดยใช้เครื่องบดเนื้ออิเล็กทรอนิกส์ ( ก๊วกแขวนบริษัท
เวียดนาม ) , ที่มีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางและความยาวของอาหารเม็ดในช่วง
1 - 2 มิลลิเมตร อาหารทั้งหมดถูกตากแดดสองถึงสามวันแล้ว
ชั่งและเก็บไว้ในถุงพลาสติกปิดผนึกไว้ในส่วนเล็ก ๆที่ 5 ° C จนกระทั่ง
ใช้ . ชุดใหม่ของอาหารทดลองทำบีรายสัปดาห์ ปลา
ป้อนด้วยมือเพื่อความเต็มอิ่มชัดเจนด้วยประมาณ 3 - 5 % ของน้ำหนักตัว ต่อวัน เวลา 9.00
H และ 14.00 H และ uneaten ฟีดรวบรวมหลังจากให้อาหารปลา
ใช้แร็กเก็ตวัสดุ ลอยตัว และ โดยการเปิดวาล์ว
ที่ด้านล่างของชุดตะกอน ท่อของแต่ละถังล้างออก
sedimented วัตถุดิบอาหารสัตว์ .
2.7 . เครื่องทดลอง
ทำการทดลองในเรื่องการปิดระบบในวัฒนธรรม
ชุด 21 ถังคอมโพสิตะ ( 3 ต่อรักษา )
ที่มีปริมาณประมาณ 500 ลิตร ต่อถัง การตั้งถิ่นฐานรถถังถูก
เชื่อมกับถังตกตะกอน ซึ่งบรรจุทรายและหิน
( 1 – 2 มม. ) เป็นตัวกรองทางชีวภาพ แตะที่น้ำจืด คือ 24 H

อากาศช่วยให้คลอรีนระเหยและเลี้ยงในแต่ละถังที่อัตราการ ไหลของ
3 L มิน− 1 การเติมอากาศด้วยเครื่องหินกระจายให้แก่
รถถังแต่ละคนผ่านแรงดันต่ำไฟฟ้าโบลเวอร์ นอกจากนี้ , 2.8 . ตัวอย่างของการวิเคราะห์
เคมี อาหารสัตว์ อาหาร และ เนื้อปลา ตับ และไต
วิเคราะห์ในซ้ำโดยใช้วิธีมาตรฐาน ( โปรตีน , 1997 ) บริการ
matterwas กำหนดโดยการอบแห้งในเตาอบที่ 105 ° C เป็นเวลา 24 h.nitrogen
( n ) ถูกกำหนดโดยวิธีเจลดาห์ลและโปรตีน ( CP )
คำนวณเป็น n × 6.25 . ไขมันดิบ ( EE ) เนื้อหาวิเคราะห์โดยใช้วิธี Soxhlet
หลังจากกรดของตัวอย่าง ดิบไฟเบอร์ ( CF )
) มีการกำหนดโดยวิธีมาตรฐาน ( โปรตีน , 1997 ) และ
ผงซักฟอกเป็นกลางไฟเบอร์ ( NDF ) ถูกกำหนดตาม Van Soest et
อัล ( 1991 ) ปริมาณเถ้าที่ถูกตัดสินใจโดยการเผาในเตาเผา Muffle
ที่ 550 องศา C นาน 12 ชั่วโมง ปริมาณกรดอะมิโนของวัตถุดิบและอาหาร
วิเคราะห์โดยวิธีโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูงตาม
วาสเควซ Ortiz et al . ( 1995 ) พลังงานทั้งหมด ( เมกกะจูลต่อกิโลกรัม− 1 ) ตั้งใจ
ด้วยระเบิด แคลอริมิเตอร์วัดความร้อน 6300 ( พาร์ ,พาร์เครื่องดนตรี
บริษัทโมลิน , IL , USA ) .
2.9 . การตรวจสอบคุณภาพน้ำ
อุณหภูมิ ( T / C ) เป็นบันทึกประจำวันกับเครื่องวัดที่
2 H และจำนวนชั่วโมง ปริมาณออกซิเจน ( DO mg L − 1 ) วัดจาก
Winkler การไทเทรต ( Stirling , 1985 ) เดือนละ 2 ครั้ง ไนไตรท์
( mg L − 1 ) ไนเตรท ( mg L − 1 ) และแอมโมเนีย
ไนโตรเจนทั้งหมด( mg L − 1 ) วัดเดือนละสองครั้งโดยใช้ HACH Lange พิทยาพล
วิธีการทดสอบ ( dr2800 ภาพ Spectrophotometer HACH Lange GmbH ,
เยอรมนี ) pH ที่ถูกบันทึกไว้สองครั้ง amonthwith เป็นพีเ มิเตอร์ ( Schott
greate สหรัฐอเมริกา ) แพลงก์ตอนชนิดในแต่ละถังมีการติดตามและ
กำหนดเดือนละสองครั้งตามที่อธิบายไว้โดยเบลลิงเงอร์ และ sigee ( 2553 ) .
ความหนาแน่นของแพลงก์ตอน คำนวณตามสูตรต่อไปนี้ :
N = ( P ×× 100 C / V ) โดยที่ n คือจำนวนของแพลงก์ตอนต่อลิตรของน้ำ
ในถัง , p คือจำนวนของสิ่งมีชีวิตขนาดเล็กมากในน้ำ สิ่งมีชีวิตนับในถังที่แตกต่างกันของการรักษาที่แตกต่างกัน C คือ ปริมาตรของขวดที่ถือ theplastic
ตัวอย่าง ( 100 มล. ) และ V คือปริมาตรของ ตัวอย่างน้ำจากแต่ละ
ถัง ตัวของสัตว์ และแพลงก์ตอนพืชชนิดคือ
ตามและ suthers rissik ( 2551 ) .
2.10 .