The culture solution of CHM1 was pr

The culture solution of CHM1 was prepared by shaking LB liquid
culture at 30 C, 170 rpm for 36 h. It was further centrifuged at
6000  g for 5 min at 4 C and the supernatant collected and
passed through a 0.22-mm filter, yielding CHM1 culture filtrate. The
sterile culture filtrate was obtained by autoclaving the resultant
culture filtrate at 121 C for 30 min.
The effects in vitro of CHM1 on mycelial growth inhibition of
plant pathogens were studied according to the method reported
by Leroux et al. (2002). Two ml of CHM1 culture solution, culture
filtrate or sterile culture filtrate were spread on 18 ml of PDA
medium. Three 5.0 mm diameter mycelial plugs, cut randomly
from the margin of a 5 day-old colony, and a plug, containing only
2 ml LB agar as negative control, were placed on a medium on
which one of six fungi was spread. Each experiment was conducted
in triplicate and the experimental design was a CRD.
Eighteen of these Petri dishes were sealed with parafilm and
incubated at 27 C in darkness. The radial growth of mycelia (cm)
was measured in two perpendicular directions on each cultured
plate after 48 h of incubation, and the diameter (0.5 cm) of the
inoculation plug was subtracted. The resultant data were averaged.
The antifungal index was determined in comparison with
growth on non-amended medium, and calculated by the
following formula (Mu, 2000):
Antifungal index ð%Þ ¼ ½1  ðDa  0:5Þ=ðDb  0:5Þ  100
where Da is the diameter of the growth zone in the test plate, and
Db is the diameter of growth zone in the control plate.
At the same time, the effects of CHM1 on the growth and
configuration of fungal hyphae were observed under a microscope.
2.3. Control efficacy of CHM1 against rice sheath blight, southern
blight of maize and Rhizoctonia solani of horsebean under
greenhouse conditions
Maize seedlings (Liao No. 613) were cultivated under controllable
greenhouse conditions at a temperature of 20–25 C and
relative humidity of 80–90%. At the three leave stage, maize seedlings
were divided into three groups, each of which included thirty
seedlings. The conidiospores of Bipolaris maydis were collected and
diluted as 1 104 conidia ml1. A CHM1 culture solution
(1.6  107 cfu ml1) was obtained after incubation at 30 C,170 rpm
for 36 h, was diluted two fold (mixed with distilled water at 1:1 to
decrease the density to 8  106 cfu ml1) and then evenly sprayed
on the surface of maize leaves. After 6 h, the maize leaves were
inoculated by evenly spraying with the conidiospores of B. maydis.
The seedlings were first cultivated in the dark overnight at 24 C
and 98% relative humidity and then cultivated in a growth chamber
with 16-h-light and 8-h-darkness cycle at 24 C and 85% relative
humidity (Mu, 2000). Each treatment, in triplicate, was arranged in
a completely randomized block with 3  30 plants. Spraying with
diluted LB medium and conidiospores of B. maydis served as
a negative control, and spraying with distilled water served as
control. After pathogen challenge, the disease was observed every
2 days. Disease index and protection effect by CHM1 were visually
rated by assessing the percentage of leaf surface covered by disease
spots.
In another experiment, three fully expanded top leaves were
detached from a 7-week-old horsebean seedling (Juchan No. 2)
growing in the greenhouse. CHM1 culture, prepared as above, was
evenly sprayed on the surface of horsebean leaves. Then, horsebean
leaves were challenged by inoculating a 5 mm diameter disc
of R. solani mycelia. The leaves were placed on a filter paper,
wetted with sterile distilled water in a plastic Petri dish (150 mm
diameter). The Petri dish was placed in a growth chamber with
a 14-h-light and 10-h-darkness cycle at 26 C and 95% relative
humidity. Spraying with diluted LB medium and inoculating
mycelia of R. solani served as positive control, and spraying with
distilled water served as control. Each treatment, in triplicate, was
arranged in a completely randomized block with 3  30 horsebean
plants. After pathogen challenge, the disease was observed
every 2 days.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การแก้ปัญหาวัฒนธรรมของ CHM1 ถูกเตรียม โดยการสั่นของเหลวปอนด์วัฒนธรรมที่ 30 C, rpm 170 สำหรับ 36 h เพิ่มเติมถูก centrifuged ที่g 6000 ใน 5 นาทีที่ 4 C และ supernatant รวบรวม และผ่านตัวกรอง$ 0.22 มม. ผลผลิตสารกรองวัฒนธรรม CHM1 ที่วัฒนธรรมใส่สารกรองกล่าว โดย autoclaving resultant การวัฒนธรรมสารกรองที่ 121 C สำหรับ 30 นาทีผลการเพาะเลี้ยงของ CHM1 ในการยับยั้งการเจริญเติบโต mycelialมีศึกษาโรคพืชตามวิธีการรายงานโดย Leroux et al. (2002) Ml สองของ CHM1 วัฒนธรรม วัฒนธรรมสารกรองหรือวัฒนธรรมใส่สารกรองได้แพร่กระจายใน 18 ml ของ PDAสื่อ สาม 5.0 มม.เส้นผ่าศูนย์กลาง mycelial ปลั๊ก ตัดแบบสุ่มจากขอบของโคโลนีเก่า 5 และปลั๊ก ประกอบด้วยเท่านั้นagar ml 2 ปอนด์เป็นค่าลบควบคุม ใส่ในสื่อในการที่หนึ่งของเชื้อราที่หกถูกแพร่กระจาย ได้ดำเนินการทดลองแต่ละใน triplicate และการออกแบบการทดลองเป็นแบบ CRDเอททีน Petri อาหารเหล่านี้ได้ถูกปิดผนึก ด้วย parafilm และincubated ที่ 27 C ในที่มืด การเติบโตรัศมีของ mycelia (ซม.)ถูกวัดในทิศทางตั้งฉากทั้งสองในแต่ละอ่างจานหลัง 48 h ของคณะทันตแพทยศาสตร์ และขนาด (0.5 เซนติเมตร) ของการปลั๊ก inoculation ถูกลบออก ข้อมูลผลแก่มี averagedกำหนดเปรียบเทียบกับดัชนีต้านเชื้อราเจริญเติบโตในการแก้ไขไม่ใช่กลาง และที่คำนวณได้โดยการ(หมู่ 2000) สูตรต่อไปนี้:Ðอาการดัชนี%Þ¼ ½1 ðDa 0:5Þ = ðDb 0:5Þ 100ดา เส้นผ่าศูนย์กลางของโซนเจริญเติบโตในแผ่นทดสอบ และDb เป็นเส้นผ่าศูนย์กลางของโซนเจริญเติบโตในแผ่นควบคุมในเวลาเดียวกัน ผลของ CHM1 การเจริญเติบโต และตั้งค่าคอนฟิกของ hyphae เชื้อราถูกสังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์2.3 การควบคุมประสิทธิภาพของ CHM1 กับข้าว sheath โรค ภาคใต้โรคของข้าวโพดและ Rhizoctonia solani ของ horsebean ภายใต้สภาพเรือนกระจกกล้าไม้ข้าวโพด (เลี้ยวหมายเลข 613) ถูก cultivated ภายใต้การควบคุมสภาพเรือนกระจกที่อุณหภูมิ 20-25 C และความชื้นสัมพัทธ์ 80-90% ที่สามออกจากกล้าไม้ระยะ ข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ถูกแบ่งออกเป็นสามกลุ่ม ซึ่งรวมสามสิบกล้าไม้ Conidiospores ของ Bipolaris maydis ถูกเก็บรวบรวม และทำให้เจือจางเป็น 1 104 conidia ml 1 ปัญหาวัฒนธรรม CHM1(1.6 107 cfu ml 1) ได้รับหลังจากการบ่มที่ 30 C, 170 รอบต่อนาทีสำหรับ 36 h ถูกสองเท่า (ผสมกับน้ำกลั่น 1:1 จะแตกออกลดความหนาแน่นที่ 8 106 cfu ml 1) และจากนั้น ฉีดพ่นอย่างสม่ำเสมอบนพื้นผิวของใบข้าวโพด หลังจาก 6 h ใบข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ได้inoculated โดยการฉีดพ่นอย่างสม่ำเสมอด้วยการ conidiospores maydis เกิดกล้าไม้ได้ปลูกในแอร์พอร์ตโอเวอร์ไนท์เข้มที่ 24 C ก่อนและความชื้นสัมพัทธ์ 98% และปลูกแล้ว ในหอเจริญเติบโตมี 16 h แสง และความ มืด h 8 รอบที่ 24 C และสัมพัทธ์ 85%ความชื้น (หมู่ 2000) เป็นจัดทรีต triplicate ในในบล็อก randomized สมบูรณ์ ด้วยพืช 3 30 ฉีดพ่นด้วยป.กลางและ conidiospores maydis เกิดแตกออกให้บริการเป็นควบคุมค่าลบ และฉีดพ่น ด้วยน้ำกลั่นเป็นควบคุม หลังจากศึกษาความท้าทาย โรคนี้ถูกตรวจสอบทุกวันที่ 2 ผลดัชนีและการป้องกันของโรค โดย CHM1 ได้เห็นคะแนนประเมินเปอร์เซ็นต์ของพื้นผิวใบครอบคลุมโรคจุดในการทดลองอื่น สามใบบนขยายเต็มแยกออกจากแหล่ง horsebean อายุ 7 สัปดาห์ (Juchan หมายเลข 2)ปลูกในเรือนกระจก CHM1 วัฒนธรรม เตรียมไว้ด้านบน ถูกฉีดพ่นอย่างสม่ำเสมอบนพื้นผิวของใบ horsebean แล้ว horsebeanใบไม้ถูกท้าทาย โดย inoculating ดิสก์เส้นผ่าศูนย์กลาง 5 มม.ของ R. solani mycelia ใบถูกวางไว้บนกระดาษกรองwetted ด้วยน้ำกลั่นใส่ในจานเพาะเชื้อ (150 มมความพลาสติกเส้นผ่าศูนย์กลาง) จานเพาะเชื้อมีอยู่ในหอเจริญเติบโตด้วยรอบที่ 14 h แสง และความ มืด 10 h ที่ 26 C และสัมพัทธ์ 95%ความชื้น พ่น ด้วยสื่อปอนด์แตกออกและ inoculatingmycelia R. solani เป็นบวกควบคุม และฉีดพ่นด้วยกลั่นน้ำทำหน้าที่เป็นตัวควบคุม ทรีตเมนท์ ใน triplicate ถูกจัดบล็อก randomized สมบูรณ์ ด้วย 3 30 horsebeanรดน้ำต้นไม้ หลังจากศึกษาความท้าทาย โรคนี้ถูกตรวจสอบทุกวัน 2

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วิธีการแก้ปัญหาวัฒนธรรมของ CHM1 ได้ถูกจัดทำโดยการเขย่าเหลว LB
วัฒนธรรมวันที่ 30? C, 170 รอบต่อนาทีสำหรับ 36 ชั่วโมง มันถูกปั่นเพิ่มเติมได้ที่
6000 กรัมเป็นเวลา 5 นาทีที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสและใสเก็บรวบรวมและ
ส่งผ่านตัวกรอง 0.22 มมยอมกรองวัฒนธรรม CHM1
กรองวัฒนธรรมผ่านการฆ่าเชื้อได้จากการนึ่งฆ่าเชื้อผลลัพธ์
กรองวัฒนธรรมที่ 121 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที.
ผลกระทบในหลอดทดลองของ CHM1 ในการยับยั้งการเจริญเติบโตของเส้นใยของ
เชื้อสาเหตุโรคพืชได้รับการศึกษาตามวิธีการที่มีการรายงาน
โดย Leroux และคณะ (2002) สองมิลลิลิตรของสารละลาย CHM1 วัฒนธรรม
กรองหรือกรองวัฒนธรรมผ่านการฆ่าเชื้อกระจายอยู่ใน 18 มิลลิลิตร PDA
กลาง สาม 5.0 มมปลั๊กเส้นใยเส้นผ่าศูนย์กลางตัดสุ่ม
จากขอบของอาณานิคม 5 วันเก่าและปลั๊กที่มีเพียง
2 มิลลิลิตร LB agar การควบคุมเชิงลบถูกวางไว้บนกลางบน
ซึ่งหนึ่งในหกของเชื้อรากระจาย แต่ละการทดลองดำเนินการ
ในเพิ่มขึ้นสามเท่าและการออกแบบการทดลองเป็น CRD.
สิบแปดของเหล่านี้จานเลี้ยงเชื้อถูกปิดผนึกด้วย parafilm และ
บ่มที่อุณหภูมิ 27 องศาเซลเซียสในความมืด การเจริญเติบโตในแนวรัศมีจากเส้นใย (ซม.)
วัดในสองทิศทางตั้งฉากในแต่ละเลี้ยง
จานหลังจาก 48 ชั่วโมงของการบ่มและเส้นผ่าศูนย์กลาง (0.5 ซม.) ของ
ปลั๊กฉีดวัคซีนมาหักออก ข้อมูลผลถูกเฉลี่ย.
ดัชนีเชื้อราถูกกำหนดในการเปรียบเทียบกับ
การเจริญเติบโตในสื่อที่ไม่ได้แก้ไขเพิ่มเติมและคำนวณโดย
สูตรต่อไปนี้ (MU, 2000):
ดัชนีเชื้อรา% d Þ¼½1? DDA? 0: 5 = DDB? 0: 5? ? 100
ที่ดาเป็นเส้นผ่าศูนย์กลางของโซนการเจริญเติบโตในแผ่นทดสอบและ
Db คือเส้นผ่าศูนย์กลางของโซนการเจริญเติบโตในแผ่นควบคุม.
ในขณะเดียวกันผลกระทบของ CHM1 ในการเจริญเติบโตและ
การกำหนดค่าของเส้นใยเชื้อราถูกตั้งข้อสังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์ .
2.3 ประสิทธิภาพการควบคุมการ CHM1 กับโรคกาบใบแห้งข้าวภาคใต้
ทำลายข้าวโพดและ Rhizoctonia solani ของ horsebean ภายใต้
เงื่อนไขเรือนกระจก
ต้นกล้าข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ (ฉบับที่ 613 เหลียว) ได้รับการปลูกฝังภายใต้การควบคุม
สภาวะเรือนกระจกที่อุณหภูมิ 20-25 องศาเซลเซียสและ
ความชื้นสัมพัทธ์ 80 90% ในขั้นตอนการลาสามต้นกล้าข้าวโพด
ถูกแบ่งออกเป็นสามกลุ่มซึ่งแต่ละรวมสามสิบ
ต้นกล้า conidiospores ของ maydis Bipolaris ถูกเก็บรวบรวมและ
เจือจาง 1 104 มลสปอร์ 1 สารละลาย CHM1
(? 1.6 107 cfu มล 1) ที่ได้รับหลังจากการบ่มที่ 30 C, 170 รอบต่อนาที?
36 ชั่วโมงถูกเจือจางสองเท่า (ผสมกับน้ำกลั่นที่ 1: 1 ถึง
ลดความหนาแน่นถึง 8 106 cfu? มล? 1) และจากนั้นฉีดพ่นอย่างสม่ำเสมอ
บนพื้นผิวของใบข้าวโพด หลังจาก 6 ชั่วโมง, ใบข้าวโพดได้รับ
เชื้อโดยการฉีดพ่นอย่างเท่าเทียมกันกับ conidiospores ของบี maydis.
ต้นกล้าได้รับการปลูกฝังครั้งแรกในคืนมืดที่ 24 องศาเซลเซียส
และ 98% ความชื้นสัมพัทธ์และได้รับการปลูกฝังจากนั้นในห้องการเจริญเติบโต
กับ 16-H- แสงและรอบ 8-H-ความมืดที่ 24 องศาเซลเซียสและ 85% เมื่อเทียบ
ความชื้น (MU, 2000) การรักษาแต่ละคนในเพิ่มขึ้นสามเท่าได้รับการจัดให้อยู่ใน
บล็อกสุ่มสมบูรณ์ด้วย 3? 30 พืช การฉีดพ่นด้วย
เจือจางกลาง LB และ conidiospores ของบี maydis ทำหน้าที่เป็นผู้
ควบคุมเชิงลบและการฉีดพ่นด้วยน้ำกลั่นทำหน้าที่เป็นผู้
ควบคุม หลังจากการท้าทายเชื้อโรคโรคได้สังเกตทุก
2 วัน ดัชนีโรคและผลการป้องกันโดย CHM1 สายตาถูก
จัดอันดับโดยการประเมินร้อยละของผิวใบปกคลุมด้วยโรค
จุด.
ในการทดลองอีกสามขยายตัวได้เต็มที่ใบด้านบนถูก
ถอดออกจาก 7 สัปดาห์อายุต้นกล้า horsebean (Juchan ฉบับที่ 2)
ที่เพิ่มขึ้นใน เรือนกระจก วัฒนธรรม CHM1 เตรียมดังกล่าวได้รับการ
ฉีดพ่นอย่างสม่ำเสมอบนพื้นผิวของใบ horsebean จากนั้น horsebean
ใบถูกท้าทายโดยการฉีดวัคซีนแผ่นดิสก์ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 5 มม
จากเส้นใยเชื้อรา R. solani ใบถูกวางไว้บนกระดาษกรอง,
เปียกด้วยน้ำกลั่นปลอดเชื้อในจานเลี้ยงเชื้อพลาสติก (150 มิลลิเมตร
เส้นผ่าศูนย์กลาง) จานเลี้ยงเชื้อที่วางอยู่ในห้องที่มีการเจริญเติบโต
14 ชั่วโมงแสงและวงจร 10 ชั่วโมง-ความมืดที่อุณหภูมิ 26 องศาเซลเซียสและ 95% เมื่อเทียบ
ความชื้น การฉีดพ่นด้วยเจือจางกลาง LB และฉีดวัคซีน
เส้นใยของเชื้อรา R. solani ทำหน้าที่ควบคุมเป็นบวกและการฉีดพ่นด้วย
น้ำกลั่นทำหน้าที่เป็นผู้ควบคุม การรักษาแต่ละคนในเพิ่มขึ้นสามเท่าได้รับการ
จัดให้อยู่ในบล็อกสุ่มสมบูรณ์ด้วย 3? 30 horsebean
พืช หลังจากการท้าทายเชื้อโรคโรคได้สังเกต
ทุก 2 วัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัฒนธรรมการแก้ไข chm1 เตรียมเขย่าอาหารเหลว
ปอนด์ใน 30  C 170 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 36 ชั่วโมงมันก็อีกระดับที่
6000  G สำหรับ 5 นาทีที่ 4  C และนำข้อมูล
ผ่านแผ่นกรองกรอง 0.22-mm , วัฒนธรรม chm1 .
จากวัฒนธรรมเป็นหมันได้ โดยอัตราส่วนโฟกัสหนัก ผลลัพธ์ที่ 121  วัฒนธรรม

C เป็นเวลา 30 นาทีผลในหลอดทดลองของ chm1 ต่อการยับยั้งการเจริญของเชื้อโรคพืช
ศึกษาตามวิธีการรายงาน
โดยเลอรู et al . ( 2002 ) 2 มิลลิลิตรของสารละลาย chm1 วัฒนธรรม วัฒนธรรมจากวัฒนธรรมหรือเป็นหมันโดย
ถูกแพร่กระจายใน 18 ml ของ PDA
) สาม 5.0 มม. เส้นผ่าศูนย์กลางของปลั๊ก , ตัดสุ่ม
จากขอบของ 5 วันอาณานิคมเก่าและปลั๊ก ที่มีเพียง
2 ml ปอนด์วุ้นควบคุมลบ ถูกวางไว้บนกลางบน
ซึ่งหนึ่งในหกราถูกแพร่กระจาย แต่ละการทดลอง
ทั้งสามใบ และใช้แผนการทดลองแบบ CRD .
18 จาน Petri เหล่านี้ถูกผนึกด้วยพาราฟิล์มและ
 บ่มที่อุณหภูมิ 27 องศาเซลเซียสในที่มืด การเจริญเติบโตของเส้นใยแบบเรเดียล ( ซม. )
วัดในสองทิศทางตั้งฉากกับแต่ละจานเพาะเลี้ยง
หลังจากบ่ม 48 ชั่วโมง ,และเส้นผ่าศูนย์กลาง 0.5 ซม. )
( เสียบถูกหักออก ข้อมูลดังกล่าวได้จากเชื้อรา .
ดัชนีถูกกำหนดในการเปรียบเทียบกับการไม่แก้ไข

) และคำนวณด้วยสูตรต่อไปนี้ ( หมู่ที่ 2 ) :
% ในดัชนีðÞ¼½ 1  ðดา  0:5 Þ = ð dB  0:5 Þ   100
ที่ดาคือ เส้นผ่าศูนย์กลางของโซนของแผ่นทดสอบ และ
DB เป็นเส้นผ่าศูนย์กลางของเขตในการควบคุมจาน .
ในเวลาเดียวกัน ผลของ chm1 ต่อการเจริญเติบโตและองค์ประกอบของเส้นใยรา
พบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ .
2.3 การควบคุมประสิทธิภาพของ chm1 ต่อต้านทำลายฝักข้าวไหม้ภาคใต้
ของข้าวโพดและเชื้อรา ของ horsebean ภายใต้สภาวะเรือนกระจก

) ต้นกล้า ( เหลียวเลขที่ 613 ) ปลูกภายใต้ควบคุม
สภาวะเรือนกระจก อุณหภูมิ 20 - 25 องศาเซลเซียส และความชื้นสัมพัทธ์ 
80 – 90% ที่ 3 จากเวที ข้าวโพดต้นกล้า
แบ่งออกเป็นสามกลุ่มซึ่งแต่ละจำนวน 30
ต้นกล้า การ conidiospores ของ bipolaris maydis คือข้อมูล
เจือจางเป็น 1  104 โคนิ ml  1 เป็นโซลูชั่น chm1 วัฒนธรรม
( 1.6  107 CFU ml  1 ) ได้หลังจากบ่มที่ 30  C 170 รอบ
0 H ,สองพับ ( ผสมเจือจางด้วยน้ำกลั่นในอัตราส่วน 1 : 1

ลดความหนาแน่น 8  106 cfu ml  1 ) แล้วทั่วถึงพ่น
บนพื้นผิวของใบข้าวโพด . หลังจาก 6 ชั่วโมง ข้าวโพด ใบ
เชื้อทั่วถึงพ่นด้วย conidiospores พ. 20 .
ต้นกล้าก่อนปลูก ในที่มืด ค้างคืนที่ 24  C
และ 98% ความชื้นแล้วปลูกห้อง
เจริญกับ 16-h-light และวงจร 8-h-darkness ที่ 24  C และความชื้นสัมพัทธ์ 85 %
( หมู่ที่ 2 ) แต่ละการรักษาทั้งสามใบ ถูกจัดอยู่ในแบบ Completely Randomized Block
3  30 พืช การฉีดพ่นด้วย
4 ปอนด์ขนาดกลางและ conidiospores . maydis ทำหน้าที่
ควบคุมลบ และฉีดพ่นด้วยน้ำทำหน้าที่เป็น
ควบคุม หลังจากที่ท้าทายเชื้อโรค โรคที่พบทุก
2 วันดัชนีของโรคและการป้องกันผลกระทบ โดยมีสายตา chm1
คะแนนโดยการประเมินค่าร้อยละของพื้นผิวปกคลุมด้วยโรคใบจุด
.
ในการทดลองอีกสามใบเต็มขยายเป็น
แยกออกจาก 7-week-old horsebean ต้นกล้า ( juchan หมายเลข 2 )
ปลูกในเรือนกระจก วัฒนธรรม chm1 เตรียมข้างต้นคือ
ทั่วถึงพ่นบนพื้นผิวของ horsebean ใบ แล้ว horsebean
ใบที่ถูกท้าทายโดยการฉีดวัคซีน 5 มม. เส้นผ่าศูนย์กลางดิสก์
R . solani เส้นใย . ใบถูกวางไว้บนกระดาษกรอง
เปียกกับหมันน้ำในจาน Petri พลาสติก ( ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 150 มม.
) จานเลี้ยงเชื้อที่ถูกวางไว้ในห้องการเจริญเติบโตกับการ 14-h-light และวงจร 10-h-darkness ที่ 26  C และความชื้นสัมพัทธ์ 95 %
. ฉีดพ่นสารเคมีเจือจางกลางปอนด์และ ณ
เส้นใยของทำหน้าที่ควบคุมระดับที่เป็นบวก และฉีดพ่นด้วย
น้ำทำหน้าที่ควบคุม แต่ละการรักษาทั้งสามใบ ถูก
จัดใน Completely Randomized Block 3  30 horsebean
พืช หลังจากที่ท้าทายเชื้อโรค โรคที่พบ
ทุก 2 วัน