vegetable fermentation for producti

vegetable fermentation for production of functional foods utilize mainly
single substrates for potentially probiotic LAB growth (Angelov et al.,
2006; Charalampopoulos et al., 2003; Helland et al., 2004).
It is known that the use of probiotic cultures requires a large fermentation
period to reach low pH values. However, the food industries
always prefer short fermentation periods in order to increase plant output
and reduce microbial contamination. The potential solution to this
problem is the use of mixed cultures or co-cultures (Macedo et al.,
1998). Mixed culture fermentations provide complex growth patterns
that can also considerably affect the organoleptic and functional properties
of the food. No information is available regarding the growth of
probiotic bacteria in mixed cultures and how mixed LAB, and yeasts
with probiotics will behave in PSM.
The development of a fermented PSM containing probiotic microorganisms
in co-culture requires a strain selection showing ability to grow
in the substrate, ability to compete, and/or establish a synergistic growth
between strains. The aimof thisworkwas to study the growth and acidification
of PSM by Lactobacillus rhamnosus (LR 32), Lactobacillus
acidophilus (LACA 4), Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus (LB
340), Pediococcus acidilactici (UFLA BFFCX 27.1), Lactococcus lactis
(CCT 0360), and Saccharomyces cerevisiae (UFLA YFFBM 18.03); to
select strains better adapted and with best characteristics for the
fermented mixed milk; and to describe the development of an inoculum
that rapidly ferments peanut and soy maintaining significant
probiotic yields after refrigerated storage.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ใช้หมักผักสำหรับการผลิตอาหารทำงานส่วนใหญ่เดี่ยวพื้นผิวสำหรับการเติบโตแล็บโปรไบโอติกส์อาจ (Angelov et al.,ปี 2006 Charalampopoulos และ al., 2003 Helland et al., 2004)เป็นที่รู้จักกันว่า การใช้โปรไบโอติกส์วัฒนธรรมต้องหมักใหญ่ระยะเวลาถึงค่า pH ต่ำ อย่างไรก็ตาม อุตสาหกรรมอาหารต้องรอบระยะเวลาในการหมักสั้นเสมอเพื่อเพิ่มผลผลิตพืชและลดการปนเปื้อนจุลินทรีย์ การแก้ปัญหาที่อาจเกิดขึ้นนี้ปัญหาคือ การใช้วัฒนธรรมแบบผสมหรือวัฒนธรรมร่วม (Macedo et al.,1998) การผสมหมักแหนมให้รูปแบบการเจริญเติบโตความซับซ้อนที่มีผลต่อคุณสมบัติ organoleptic และทำงานยังมากของอาหาร ไม่มีข้อมูลเกี่ยวกับการเจริญเติบโตของแบคทีเรียโปรไบโอติกส์ในวัฒนธรรมรวม และห้องปฏิบัติการผสม และ yeastsด้วย probiotics จะประพฤติใน PSMการพัฒนาของ PSM หมักที่ประกอบด้วยจุลินทรีย์โปรไบโอติกส์ในวัฒนธรรมร่วมต้องเลือกต้องใช้แสดงความสามารถในการเจริญเติบโตในพื้นผิว ความสามารถในการแข่งขัน และ/หรือสร้างการเจริญเติบโตของพลังระหว่างสายพันธุ์ Thisworkwas aimof เพื่อศึกษาการเจริญเติบโตและยูของ PSM โดยแลคโตบาซิลลัส rhamnosus (LR 32), แลคโตบาซิลลัสacidophilus (LACA 4), แลคโตบาซิลลัส delbrueckii ถั่ว bulgaricus (ปอนด์340), Pediococcus acidilactici (UFLA BFFCX 27.1), Lactococcus lactis(CCT 0360), และ Saccharomyces cerevisiae (UFLA YFFBM 18.03); ถึงเลือกสายพันธุ์ดีกว่าดัดแปลง และ มีลักษณะดีที่สุดสำหรับการร้านมผสม การอธิบายการพัฒนาของ inoculumถั่วลิสงและถั่วเหลืองรักษาสำคัญที่ ferments อย่างรวดเร็วโปรไบโอติกส์ทำให้หลังจากการจัดเก็บควบคุมอุณหภูมิ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การหมักผักสำหรับการผลิตอาหารทำงานใช้ส่วนใหญ่เป็น
พื้นผิวที่เดียวสำหรับการเจริญเติบโต LAB โปรไบโอติกที่อาจเกิดขึ้น (Angelov, et al.
2006; Charalampopoulos et al, 2003;.. Helland, et al, 2004).
เป็นที่ทราบกันว่าการใช้โปรไบโอติกวัฒนธรรมต้อง หมักขนาดใหญ่
ระยะเวลาที่จะไปถึงค่าพีเอชต่ำ อย่างไรก็ตามอุตสาหกรรมอาหาร
มักจะชอบช่วงเวลาหมักสั้นเพื่อเพิ่มผลผลิตพืช
และลดการปนเปื้อนของเชื้อจุลินทรีย์ วิธีการแก้ปัญหาที่อาจเกิดขึ้นนี้
ปัญหาคือการใช้เชื้อผสมหรือร่วมวัฒนธรรม (โด et al.,
1998) หมักวัฒนธรรมผสมให้รูปแบบการเจริญเติบโตที่ซับซ้อน
ที่ยังสามารถส่งผลกระทบต่อมากคุณสมบัติทางประสาทสัมผัสและการทำงาน
ของอาหาร ไม่มีข้อมูลเกี่ยวกับการเจริญเติบโตของ
เชื้อแบคทีเรียโปรไบโอติกในวัฒนธรรมผสมและวิธีการผสม LAB และยีสต์
ที่มีโปรไบโอติกจะทำงานใน PSM.
พัฒนา PSM หมักที่มีจุลินทรีย์โปรไบโอติก
ร่วมวัฒนธรรมต้องเลือกสายพันธุ์ที่แสดงให้เห็นความสามารถในการเติบโต
ใน พื้นผิว, ความสามารถในการแข่งขันและ / หรือสร้างการเจริญเติบโตของการทำงานร่วมกัน
ระหว่างสายพันธุ์ aimof thisworkwas เพื่อศึกษาการเจริญเติบโตและความเป็นกรด
ของ PSM โดย Lactobacillus rhamnosus (LR 32), แลคโตบาซิลลัส
acidophilus (LACA 4), แลคโตบาซิลลัส delbrueckii subsp bulgaricus (LB
340), Pediococcus acidilactici (UFLA BFFCX 27.1), Lactococcus lactis
(CCT 0360) และ Saccharomyces cerevisiae (UFLA YFFBM 18.03); การ
เลือกสายพันธุ์ที่ปรับตัวดีขึ้นและมีลักษณะที่ดีที่สุดสำหรับ
นมผสมหมัก และเพื่ออธิบายการพัฒนาของเชื้อ
ที่รวดเร็วกระบวนการหมักถั่วลิสงและถั่วเหลืองที่สำคัญการรักษา
อัตราผลตอบแทนโปรไบโอติกหลังการเก็บรักษาในตู้เย็น

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ผักหมักเพื่อผลิตอาหารการทำงานใช้ส่วนใหญ่
พื้นผิวเดียวสำหรับการเจริญเติบโตแล็บอาจโปรไบโอติกส์ ( angelov et al . ,
2006 ; charalampopoulos et al . , 2003 ; helland et al . , 2004 ) .
มันเป็นที่รู้จักกันว่า การใช้ต้องใช้ระยะเวลาหมักโปรไบโอติกวัฒนธรรม
ขนาดใหญ่ถึงค่า pH ต่ำ อย่างไรก็ตาม อุตสาหกรรมอาหาร
เสมอชอบระยะเวลาการหมักสั้นเพื่อเพิ่มผลผลิตพืช และลดการปนเปื้อนของจุลินทรีย์
. โซลูชั่นที่มีศักยภาพที่จะแก้ไขปัญหานี้คือการใช้วัฒนธรรม
ผสมหรือ Co วัฒนธรรม (
macedo et al . , 1998 ) ผสมวัฒนธรรม fermentations ให้ซับซ้อนรูปแบบการเจริญเติบโต
ที่สามารถมากยังมีผลต่อคุณสมบัติทางประสาทสัมผัสและการทำงาน
ของอาหารยังไม่มีข้อมูลเกี่ยวกับการเจริญเติบโตของแบคทีเรียโปรไบโอติกในวัฒนธรรม
ผสมและวิธีการผสม Lab , และยีสต์ Probiotics จะทำ PSM ด้วย
.
การพัฒนาที่มีโพรไบโอติกจุลินทรีย์หมัก PSM
ในวัฒนธรรม Co ต้องมีการคัดเลือกสายพันธุ์ที่แสดงความสามารถเพิ่มขึ้น
ในพื้นผิว , ความสามารถในการแข่งขัน และ / หรือสร้าง มีเพิ่มการเจริญเติบโต
ระหว่างสายพันธุ์การ aimof thisworkwas เพื่อศึกษาการเจริญเติบโตและกรด
ของ PSM โดย rhamnosus แลคโตบาซิลลัส ( Lactobacillus acidophilus , LR 32 )
( laca 4 ) , Lactobacillus delbrueckii subsp . bulgaricus ( LB
3 acidilactici ( 340 ) ufla ทั้ง bffcx ) , แลคโตค คัส lactis
( CCT 0360 ) และ Saccharomyces cerevisiae ( ufla yffbm 18.03 ) ;

เลือกสายพันธุ์ที่มีลักษณะดีให้ดีที่สุดสำหรับ
นมหมักผสม และอธิบายถึงการพัฒนาสายพันธุ์ถั่วลิสงและถั่วเหลืองหมักที่อย่างรวดเร็ว

โปรไบโอติกรักษาผลผลิตอย่างมีนัยสำคัญหลังตู้เย็นกระเป๋า .