The initiation of enzymatic browning is related to a loss of membrane integrity, due to the de-compartmenting of enzymes and substrates. The loss of membrane integrity was associated with the browning of fresh-cut potatoes (Jiang, Duan, Joyce, Zhang, & Li, 2004). However, in our experiment, the inhibition of browning in the curing sample is achieved even after blend to potato juice where the substrate and enzyme is mixed (Fig. 3B). The results imply that either higher antioxidant activity or less substrate, resulted from higher phenolic content during the curing, may serve as a main contributor for inhibiting browning in the fresh cut potato, while higher PPO activity in vitro may not indicate the high activity in vivo. In other words, the browning of potato fresh cut is not totally relied on PPO, especially compared with different treatment. Like other dietary polyphenols, chlorogenic acids are an excellent antioxidant. In vitro, it scavenges radicals generated in the aqueous phase, increases the resistance of LDL (Low Density Lipoproteins) to lipid peroxidation and inhibits DNA damage ( Gordon & Wishart, 2010). In vivo, when ingested with the diet, caffeic acid and chlorogenic acid increase the plasma antioxidant capacity, the concentrations of endogenous antioxidants such as vitamin E and the ex vivo resistance of lipoproteins to oxidation. Therefore, the membrane integrity and resistance to lipoproteins oxidation by phenolic compounds such as chlorogenic acid together contributed to the less browning of flesh from the curing treated potato during storage. A systematic investigation of browning mechanism is required from gene expression, enzyme activity and metabolic from curing treatment and control. Global RNA sequence analysis using RNA-seq technology is underway to understand the molecular mechanism of potato flesh browning.
The initiation of enzymatic browning is related to a loss of membrane integrity, due to the de-compartmenting of enzymes and substrates. The loss of membrane integrity was associated with the browning of fresh-cut potatoes (Jiang, Duan, Joyce, Zhang, & Li, 2004). However, in our experiment, the inhibition of browning in the curing sample is achieved even after blend to potato juice where the substrate and enzyme is mixed (Fig. 3B). The results imply that either higher antioxidant activity or less substrate, resulted from higher phenolic content during the curing, may serve as a main contributor for inhibiting browning in the fresh cut potato, while higher PPO activity in vitro may not indicate the high activity in vivo. In other words, the browning of potato fresh cut is not totally relied on PPO, especially compared with different treatment. Like other dietary polyphenols, chlorogenic acids are an excellent antioxidant. In vitro, it scavenges radicals generated in the aqueous phase, increases the resistance of LDL (Low Density Lipoproteins) to lipid peroxidation and inhibits DNA damage ( Gordon & Wishart, 2010). In vivo, when ingested with the diet, caffeic acid and chlorogenic acid increase the plasma antioxidant capacity, the concentrations of endogenous antioxidants such as vitamin E and the ex vivo resistance of lipoproteins to oxidation. Therefore, the membrane integrity and resistance to lipoproteins oxidation by phenolic compounds such as chlorogenic acid together contributed to the less browning of flesh from the curing treated potato during storage. A systematic investigation of browning mechanism is required from gene expression, enzyme activity and metabolic from curing treatment and control. Global RNA sequence analysis using RNA-seq technology is underway to understand the molecular mechanism of potato flesh browning.
การแปล กรุณารอสักครู่..
การเริ่มต้นของสีน้ำตาลที่เกี่ยวข้องกับการสูญเสียของเมมเบรนความสมบูรณ์ เนื่องจาก เดอ compartmenting ของเอนไซม์และสารอาหาร . การสูญเสียของความซื่อสัตย์เป็นเยื่อที่เกี่ยวข้องกับการตัดสด มันฝรั่ง ( เจียง , ด้วน , จอยซ์ , จาง , & Li , 2004 ) อย่างไรก็ตาม ในการทดลองของเราการยับยั้งการเกิดสีน้ำตาลในการบ่มตัวอย่างได้แม้หลังจากการผสมน้ำผลไม้มันฝรั่งที่พื้นผิวและเอนไซม์ผสม ( รูปที่ 3B ) ผลหมายความว่า อุดมฤทธิ์ต้านหรือพื้นผิวน้อยลง เป็นผลมาจากปริมาณฟีนอลสูงในระหว่างการบ่ม , อาจเป็นผู้สนับสนุนหลัก เพื่อยับยั้งการเกิดสีน้ำตาลในมันฝรั่งตัดสดในขณะที่กลุ่ม PPO กิจกรรมในหลอดทดลองอาจระบุกิจกรรมสูงในร่างกาย ในคำอื่น ๆสีน้ำตาลมันฝรั่งสดตัดไม่พึ่งพา PPO , โดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อเทียบกับการรักษาที่แตกต่างกัน . อาหารอื่น ๆเช่น โพลีฟีนอล , กรดคลอโรจีนิกเป็นสารต้านอนุมูลอิสระที่ดีเยี่ยม ในหลอดทดลอง มันอย่างมีนัยสำคัญที่สร้างขึ้นในเฟสน้ำอิสระ ,เพิ่มความต้านทานของ LDL ( lipoproteins ความหนาแน่นต่ำ ) การเกิด lipid peroxidation และยับยั้งความเสียหายของดีเอ็นเอ ( กอร์ดอน&วิเชิร์ต , 2010 ) ในร่างกาย เมื่อกินกับอาหาร , กรด Caffeic กรด chlorogenic พลาสมาและเพิ่มสารต้านอนุมูลอิสระ ความจุ ความเข้มข้นของสารต้านอนุมูลอิสระ เช่น วิตามินอีในร่างกายต้านทานของไลโปโปรตีนและอดีตการออกซิเดชัน ดังนั้นเมมเบรนความซื่อสัตย์และความต้านทานต่อสารฟีโนลิกออกซิเดชันไลโปโปรตีนโดยเช่น chlorogenic acid ด้วยกันมีส่วนร่วมน้อย สีน้ำตาล เนื้อจากการทำมันฝรั่งในระหว่างการเก็บรักษา การตรวจสอบระบบของบราวนิ่งกลไกจะต้องมาจากการแสดงออกของยีน , กิจกรรมของเอนไซม์ และสลายจากการรักษา การรักษา และการควบคุมการวิเคราะห์ลำดับอาร์เอ็นเอ ( RNA โดยใช้เทคโนโลยี seq เป็นกําลังให้เข้าใจกลไกระดับโมเลกุลของเนื้อมันฝรั่งสีน้ำตาล .
การแปล กรุณารอสักครู่..