Generally, molecular approaches pro

Generally, molecular approaches proposed for the identification of staphylococci can be divided into those based on the detection of species-specific sequences and those based on the detection of sequence variations in ubiquitous elements such as rRNA and tRNA operons or chaperonin-encoding genes (3). To the best of our knowledge, species-specific primers have been published only for S. sciuri (of all the staphylococci in the S. sciuri group) (7). All the strains were tested by PCR using species-specific primers for S. sciuri based on previously published primers and methods (7). Bright bands indicating a positive reaction were obtained for all 23 S. sciuri strains (Table ​(Table1)1) and agreed with the identification by API Staph and ID32 STAPH. However, the fact that strong or weak hybridization signals were obtained for all S. lentus and S. vitulinus strains suggests that this set of primers may not be reliable in the identification of S. sciuri. PCR amplification of the 16S-23S rRNA intergenic spacer region was performed in accordance with the protocols previously described by Couto et al. (4) and Shittu et al. (16). This PCR method enabled identification of all isolates to the species or subspecies level. Out of the 28 isolates, 8 strains were identified as S. sciuri subsp. sciuri, 15 were identified as S. sciuri subsp. rodentium, 3 were identified as S. lentus, and 2 were identified as S. vitulinus by the 16S-23S rRNA PCR method.

In conclusion, our study showed that the members of the S. sciuri group can be identified and differentiated from other staphylococci from human clinical samples on the basis of the oxidase test. Only the recently described Staphylococcus fleurettii is also novobiocin resistant, coagulase negative, and oxidase positive as well (24). It should be noted that this bacterium has not been isolated from clinical samples of humans. However, certain problems could arise in the identification of these bacteria to the species level by use of API Staph and ID32 STAPH, since S. vitulinus is not included in the database for these tests.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

โดยทั่วไป แนวทางโมเลกุลที่เสนอสำหรับการระบุของสแตฟฟิลสามารถแบ่งได้เป็นผู้ใช้การตรวจหาลำดับสายและผู้ใช้ในการตรวจหาการเปลี่ยนแปลงลำดับในองค์ประกอบที่อยู่ทุกหนแห่งเช่น operons rRNA และป้องกันสลายหรือ chaperonin-เข้ารหัสยีน (3) ที่สุดความรู้ของเรา ไพรเมอร์สายถูกประกาศสำหรับ S. sciuri (ของหมดสแตฟฟิลในกลุ่ม sciuri S.) (7) สายพันธุ์ได้รับการทดสอบ โดย PCR ที่ใช้ไพรเมอร์สาย S. sciuri ที่เผยแพร่ก่อนหน้านี้ไพรเมอร์และวิธีการ (7) รับวงดนตรีสดที่แสดงปฏิกิริยาเชิงบวกสำหรับ 23 S. sciuri สายพันธุ์ทั้งหมด (ตาราง (Table1) 1) และตกลงกับรหัส API สมและสม ID32 อย่างไรก็ตาม ได้รับมาจริงที่แข็งแกร่งหรืออ่อนแอ hybridization สัญญาณสำหรับทุก S. lentus และสายพันธุ์ S. vitulinus แนะนำว่า ชุดนี้ของไพรเมอร์อาจไม่เชื่อถือในการระบุของ S. sciuri ปลักของภูมิภาค 16S 23S rRNA intergenic แผ่นรองทำตามโปรโตคอลที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ โดย Couto ร้อยเอ็ด (4) และ Shittu et al. (16) วิธี PCR นี้เปิดใช้งานรหัสแยกระดับสายพันธุ์หรือชนิดย่อยทั้งหมด จาก 28 แยก สายพันธุ์ 8 ระบุเป็น S. sciuri subsp. sciuri, 15 ระบุเป็น S. sciuri subsp. rodentium, 3 ระบุเป็น S. lentus และ 2 ระบุเป็น S. vitulinus โดย 16S 23S rRNA PCR วิธีนี้ในการสรุป การศึกษาของเราพบว่า สมาชิกของกลุ่ม sciuri S. สามารถระบุ และแตกต่างจากอื่น ๆ สแตฟฟิลตัวอย่างทางคลินิกของมนุษย์บนพื้นฐานของการทดสอบ oxidase เพียง Staphylococcus fleurettii อธิบายไว้เมื่อเร็ว ๆ นี้ก็ coagulase novobiocin ทน ลบ และ oxidase บวกด้วย (24) ควรสังเกตว่า แบคทีเรียนี้ไม่ได้แยกจากตัวอย่างที่ทางคลินิกของมนุษย์ อย่างไรก็ตาม ปัญหาบางปัญหาอาจเกิดขึ้นในรหัสของแบคทีเรียเหล่านี้ระดับสายพันธุ์ โดยใช้ API สมและสม ID32 เนื่องจาก S. vitulinus ไม่รวมอยู่ในฐานข้อมูลสำหรับการทดสอบเหล่านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

โดยทั่วไปวิธีโมเลกุลเสนอสำหรับบัตรประจำตัวของเชื้อที่สามารถแบ่งออกเป็นผู้ที่อยู่บนพื้นฐานของการตรวจสอบของลำดับสายพันธุ์เฉพาะและผู้ที่อยู่บนพื้นฐานของการตรวจสอบของการเปลี่ยนแปลงลำดับองค์ประกอบแพร่หลายเช่น rRNA และ tRNA operons หรือยีน chaperonin เข้ารหัสที่ (3) . ที่ดีที่สุดของความรู้ของเราไพรเมอร์สายพันธุ์เฉพาะที่ได้รับการตีพิมพ์เฉพาะสำหรับเอส sciuri (จากทั้งหมดเชื้อในกลุ่มเอส sciuri) ใน (7) ทุกสายพันธุ์ที่ถูกทดสอบโดยวิธี PCR โดยใช้ไพรเมอร์ชนิดที่เฉพาะเจาะจงสำหรับเอส sciuri ขึ้นอยู่กับไพรเมอร์เผยแพร่ก่อนหน้านี้และวิธีการ (7) วงดนตรีที่สดใสบ่งบอกถึงปฏิกิริยาบวกที่ได้รับทั้งหมด 23 สายพันธุ์เอส sciuri (ตาราง (ตารางที่ 1) 1) และตกลงที่มีการระบุโดย API Staph และ ID32 Staph แต่ความจริงที่ว่าแข็งแรงหรืออ่อนแอสัญญาณการผสมข้ามพันธุ์ที่ได้รับทั้งหมดของเอส lentus และ S. vitulinus สายพันธุ์ที่แสดงให้เห็นว่าชุดของไพรเมอร์นี้อาจไม่เป็นที่น่าเชื่อถือในตัวของเอส sciuri ขยาย PCR ของ 16S-23S rRNA ภูมิภาค spacer intergenic ได้ดำเนินการให้สอดคล้องกับโปรโตคอลที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้โดย Couto et al, (4) และชิตตู, et al (16) วิธี PCR นี้เปิดใช้งานบัตรประจำตัวทุกแยกสายพันธุ์หรือชนิดย่อยระดับ ออกจาก 28 สายพันธุ์, 8 สายพันธุ์ที่ถูกระบุว่าเป็นเอส sciuri subsp sciuri 15 ถูกระบุว่าเป็นเอส sciuri subsp rodentium 3 ถูกระบุว่าเป็นเอส lentus และ 2 ถูกระบุว่าเป็นเอส vitulinus โดยวิธี 16S-23S rRNA PCR. โดยสรุปการศึกษาของเราแสดงให้เห็นว่าสมาชิกของกลุ่มเอส sciuri สามารถระบุและแตกต่างจากเชื้ออื่น ๆ จากตัวอย่างทางคลินิกของมนุษย์บนพื้นฐานของการทดสอบ oxidase ที่ เฉพาะที่อธิบายไว้เมื่อเร็ว ๆ นี้ Staphylococcus fleurettii ยังเป็น Novobiocin ทน coagulase เชิงลบและเชิงบวก oxidase เช่นกัน (24) มันควรจะตั้งข้อสังเกตว่าแบคทีเรียนี้ยังไม่ได้รับการแยกจากตัวอย่างทางคลินิกของมนุษย์ แต่ปัญหาบางอย่างอาจเกิดขึ้นในตัวของแบคทีเรียเหล่านี้ให้อยู่ในระดับสายพันธุ์โดยการใช้ API Staph และ ID32 Staph, ตั้งแต่เอส vitulinus ไม่รวมอยู่ในฐานข้อมูลสำหรับการทดสอบเหล่านี้