2.5. Microbiological analysisFor ea

2.5. Microbiological analysis
For each treatment ten olives were aseptically removed from fermentation
brine, drained and placed into a flask containing 100 ml of
sterile saline water. Flasks were shaken in a rotary shaker incubator at
25 °C (Lab Line Orbit-Environ Shaker, Lab-Line Instr., Melrose Park, IL,
USA) at 100 rpm for 1 min to remove “loosely attached” microorgan-
isms to olive skin. Then the olives of each sample were removed,
drained in Laminar air flow cabinet, pitted under sterile conditions
and 20 g of the pulp transferred to a sterile bag containing 180 ml of
sterile diluent containing NaCl (8.5 g/l) and Tween 80 (1 ml/l). The mixture
was homogenized for 60 s using a Stomacher Lab-Blender 400
(Seward Medical, London, UK). Microorganisms remaining after rinsing
were considered to be “strongly attached” microorganisms in olives and
enumerated as CFU/g.
Appropriate dilutions of the above samples were prepared in sterile
peptone water (1 g/l) and inoculated in duplicate in growth media to
estimate microbial counts.
Lactic acid bacteria (LAB) were counted by cultivating the suitable
dilutions of the sample on MRSA supplemented with 200 ppm cyclo-
heximide and 0.02% w/v NaN
grown anaerobically (GasPak, BBL,
Cockeysville, MD) at 30 °C for 72 h. Yeasts and molds were counted
on potato dextrose agar (PDA, Merck, Darmstadt, Germany) adjusted
to pH 3.5 with tartaric acid incubated at 25 °C for 48 h (for yeast enumeration)
and for 3 additional days for mold enumeration. Enterobacteriaceae
counts were enumerated on violet red bile dextrose agar
3
(Merck, Darmstadt, Germany) at 37 °C for 18 h. Detection of E. coliO157 and L. monocytogenes after enrichment was carried out as described
by Kotzekidou (2013).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.5 การทางจุลชีววิทยาวิเคราะห์ในแต่ละทรีทเม้นต์ มะกอกสิบ aseptically ออกจากการหมักน้ำเกลือ ระบายออก และอยู่ใน flask ที่ประกอบด้วย 100 ml ของน้ำเกลือฆ่าเชื้อ น้ำถูกเขย่าใน incubator เชคเกอร์โรตารี่ที่25 ° C (Lab บรรทัด Environ โคจรเชคเกอร์ ห้องปฏิบัติการสาย Instr. เมลโรพาร์ค ILสหรัฐอเมริกา) ที่ 100 rpm สำหรับการลบ "ซึ่งแนบ" microorgan - 1 นาทีisms ผิวมะกอก แล้ว มะกอกของแต่ละอย่างถูกเอาออกระบายออกในตู้ flow อากาศ Laminar pitted ภายใต้เงื่อนไขกอซและ 20 กรัมของเนื้อเยื่อจะประกอบด้วย 180 ml ของถุงใส่กอซ diluent ที่ประกอบด้วย NaCl (8.5 g/l) และ Tween 80 (1 ml/l) ส่วนผสมมี homogenized เป็นกลุ่ม 60 ใช้ 400 แล็บ Blender เป็นแผงประดับหน้าอก(เวิร์ดแพทย์ ลอนดอน สหราชอาณาจักร) จุลินทรีย์ที่เหลือหลังจากการล้างได้ถือเป็น "ขอแนบ" จุลินทรีย์ในมะกอก และระบุเป็น CFU/gDilutions ที่เหมาะสมของตัวอย่างข้างต้นเตรียมไว้ในกระบอกน้ำ peptone (1 g/l) และ inoculated ในซ้ำในสื่อที่เติบโตประเมินการตรวจนับจุลินทรีย์แบคทีเรียกรดแลกติก (LAB) นับได้ โดยการเพาะปลูกที่เหมาะสมdilutions ของตัวอย่างบน MRSA ที่เสริม ด้วย 200 ppm cyclo-heximide และ 0.02% w/v น่านโต anaerobically (GasPak มหาชนCockeysville, MD) ที่ 30 ° C สำหรับ 72 h. Yeasts และ molds จึงนับได้ในมันฝรั่งขึ้น ปรับ agar (PDA เมอร์ค ดาร์มส เยอรมนี)การ pH 3.5 กับกรด tartaric incubated ที่ 25 ° C สำหรับ h 48 (การแจงนับยีสต์)และ สำหรับ 3 วันเพิ่มเติมสำหรับแม่แจงนับ Enterobacteriaceaeจำนวนที่ระบุใน agar ขึ้นน้ำดีสีแดงอมม่วง3(เมอร์ค ดาร์มส เยอรมนี) ที่ 37 ° C 18 h. coliO157 ตรวจ E. และ L. monocytogenes หลังจากทำบ่อออกตามที่อธิบายไว้โดย Kotzekidou (2013)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.5
การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาสำหรับการรักษาแต่ละสิบมะกอกถูก aseptically ลบออกจากน้ำเกลือหมัก
, ระบาย และใส่เข้าไปในflถาม ( 100 มล.
น้ำเกลือปลอดเชื้อ ขวดสั่นสะเทือนใน rotary shaker incubator ที่
25 ° C ( Lab เส้นโคจรล้อมรอบปั่น Lab สาย INSTR . , Melrose Park , IL ,
USA ) ที่ 100 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 1 นาทีเพื่อลบ " หลวมๆแนบ " microorgan -
ISMS เพื่อมะกอกผิวแล้วมะกอกของแต่ละตัวอย่างโดนเอาออก
ระบายในแบบอากาศflโอ้วตู้ , หลุมใต้
สภาพปลอดเชื้อและ 20 กรัมของกากไปฆ่าเชื้อถุงบรรจุ 180 มิลลิลิตรที่มี NaCl เจือจาง
ปลอดเชื้อ ( 8.5 กรัม / ลิตร ) และ Tween 80 ( / L 1 มิลลิลิตร ) ส่วนผสม
เป็นโฮโม 60 s โดยใช้แผงประดับหน้าอก Lab ปั่น 400
( ซีเวิร์ดทางการแพทย์ , ลอนดอน , UK ) จุลินทรีย์ที่เหลือหลังจากล้าง