2.2. Biochar propertiesThree biocha

2.2. Biochar properties
Three biochars from different feedstock were chosen for the soil
microcosm experiment: grain husk and paper fibre sludge biochar
(code: A1), grain husk and paper fibre sludge biochar enriched with
nitrogen (sprayed with ammonium–sulphate) and post-treated with
10% rockstone powder and 40% compost, sieved with an 8 mm sieve
after 3 weeks (code: A2), biochar from wood screenings (code: B1).
A1 and B1 were among the biochars with the best results in the prescreening
experiments as ameliorants for acidic sandy soils (Feigl
et al., 2015) and had the best long-term availability (feedstock and
product available from Central-Europe). A2 was chosen for the experiments
to test a post-treated version of A1 (biochar products marked
with “A” originate from Sonnenerde Ltd., Austria). The A1 and the A2
biochars were pyrolyzed at 450–500 °C for 20 min, the B1 biochar at
600–700 °C for 15 min in a PYREG® type pyrolizer. The properties of
the three biochars are given in Table 2.
2.3. Experimental set-up
The experiment includes soil microcosms with three biochars (A1,
A2 and B1) mixed with the sandy soil at 0 w/w% (untreated control),
0.1 w/w%, 0.5 w/w% and 1 w/w% rate, respectively and soil microcosms
treated with fertilizer solution and compost as described in Table 3.
The NPK nutrient solution was made of NH4NO3, P2O5 and K2O, and
the addition rates were: 61 kg/ha nitrogen, 22 kg/ha phosphorous and
52 kg/ha potassium. Compost was added in 0.33 w/w%. Soil microcosms
with only NPK and compost treatments were also set up. A2 biochar was
not applied in combination with NPK or compost as it was the N
enriched and mineral post-treated version of A1.
Three kilogrammes of all treatment mixtures and the untreated soil
were placed into plastic plant pots (50 × 70 × 30 cm). The experiment
was performed in triplicate. The moisture content of the microcosms
was set to 60% of the maximum of their water holding capacity. The microcosms
were irrigated with tap water to their initial water content
every second week. They were maintained at room temperature
(25 °C ± 2 °C). To ensure aerobic conditions the microcosms were
kept open. Samples were taken on three occasions: at the start to assess
the properties of the mixtures, two weeks after and seven weeks after
the start of the experiment to get short term results prior to the start
of the field experiments.
2.4. Integrated methodology for monitoring
We monitored the effects of biochars on the soil system with an
integrated methodology that includes physico-chemical methods, biological
analysis and ecotoxicity testing (Gruiz et al., 2009).
The pH and the electrical conductivity (EC) was determined according
to the Hungarian Standard (HS 21470-2, 1981) in a 1:2.5 soil:water
suspension. Water holding capacity (WHC) was measured as described
by Öhlinger (1995). The available phosphorus and potassium content
were determined as described in HS 20135:1999.
To describe the microbiological status of the soils we determined
the number of aerobic heterotrophic living bacteria and fungi by colony
counting after cultivation on meat and malt media according to Ujaczki
et al. (2015). The number of developed colonies (Colony Forming
Units — CFU) was counted and the results were given in CFU/g soil.
For the ecotoxicity testing soil samples from the microcosms were
homogenized, air-dried and sieved (b2 mm). With the ecotoxicity
tests we measured the integrated adverse effects of the chosen biochars
on testorganisms from three trophic levels (Gruiz et al., 2015), bacterium
(Aliivibrio fischeri), plants (Sinapis alba and Triticum aestivum) and
animal (Folsomia candida) as described by Ujaczki et al. (2015).
A. fischeri is a marine bacterium whose light emission is inhibited
in the presence of toxic substances (Bulich and Isenberg, 1981). The A.
fischeri bioluminescence inhibition test was carried out according to
a modification of the protocol described by Leitgib et al. (2007). We
applied direct contact ecotoxicity test for solid phase samples to investigate
the effect on whole soil. The luminescence intensity was measured
with Fluostar Optima microplate reader after 30 min and
60 min of contact time. The evaluations of the results were carried out
as described by Ujaczki et al. (2015).
In the presence of toxic substances the elongation of the roots
of higher plants is inhibited (OECD 208, 2006). Both the S. alba and
T. aestivum root elongation test was carried out based on the OECD
208 (2006) and its modification by Leitgib et al. (2007). 20 S. alba
seeds or 16 T. aestivum seeds (with over 90% germination ability)
were placed onto 5 g dry powdered soil in a glass Petri-dish (10 cm in
diameter, 2 cm height), wetted to saturation and incubated at 23 ±

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2. Biochar คุณสมบัติBiochars สามจากวัตถุดิบต่าง ๆ ถูกเลือกสำหรับดินพิภพเล็ก ๆ ทดลอง: biochar ข้าวแกลบและกระดาษไฟเบอร์กากตะกอน(รหัส: A1), เม็ดแกลบ และกระดาษไฟเบอร์ biochar ตะกอนที่อุดมด้วยไนโตรเจน (พ่น ด้วยแอมโมเนีย – ซัลเฟต) หลังรักษาด้วย10% rockstone ผงและ 40% ปุ๋ยหมัก แหลกลาญ ด้วยตะแกรงมีขนาด 8 มม.หลังจากสัปดาห์ที่ 3 (รหัส: A2), biochar จากไม้คัดกรอง (รหัส: B1)A1 และ B1 ได้ระหว่าง biochars กับผลลัพธ์ในการ prescreeningการทดลองเป็น ameliorants สำหรับดินทรายที่เป็นกรด (Feiglet al. 2015) และมีความพร้อมใช้งานระยะยาวที่ดีที่สุด (วัตถุดิบ และผลิตภัณฑ์จากยุโรปกลาง) A2 เป็นทางเลือกสำหรับการทดลองการทดสอบ A1 รุ่นหลังบำบัด (biochar ผลิตภัณฑ์ทำเครื่องหมายกับ "A" มาจาก Sonnenerde จำกัด ออสเตรีย) A1 และ A2 การbiochars ได้ pyrolyzed 450-500 ° c 20 นาที biochar B1 ที่600-700 ° C 15 นาทีใน PYREG ®พิมพ์ pyrolizer คุณสมบัติของbiochars สามถูกกำหนดในตารางที่ 22.3. ทดลองการตั้งค่าการทดลองมีดิน microcosms กับ biochars สาม (A1A2 และ B1) ผสมกับดินทราย w/w% 0 (ไม่ผ่านควบคุม),0.1 w/w%, 0.5 w/w% และ 1 w/w% อัตรา ตามลำดับ และดิน microcosmsรักษา ด้วยวิธีการแก้ไขปัญหาของปุ๋ยและปุ๋ยหมักตามที่อธิบายไว้ในตารางที่ 3ทำการแก้ไขปัญหาธาตุอาหาร NPK NH4NO3, P2O5 และ K2O และอัตราการเพิ่ม: 61 กก./ฮา ไนโตรเจน 22 กก./ฮา ฟอสฟอรัส และ52 กก./ฮา โพแทสเซียม ปุ๋ยหมักถูกเพิ่มลงใน 0.33 w/w% Microcosms ดินปุ๋ยเกล็ดและปุ๋ยหมักทรีทเมนท์ถูกตั้งค่า ถูก A2 biocharไม่ใช้ร่วมกับปุ๋ยเกล็ดหรือปุ๋ยหมักเป็น Nอุดม และแร่หลังถือรุ่น A13 กิโลกรัมผสมรักษาทั้งหมดและดินไม่ผ่านถูกวางลงในกระถางพลาสติก (50 × 70 × 30 ซม.) การทดลองทำลข้อ ความชื้นของ microcosmsตั้ง 60% ของจำนวนของน้ำที่ความจุสูงสุด Microcosms การได้ล้างพีพีเอ็มกับน้ำประปาไปยังเนื้อหาเริ่มต้นน้ำทุกสองสัปดาห์ พวกเขาถูกเก็บรักษาไว้ที่อุณหภูมิห้อง(25 ° C ± 2 ° C) เพื่อให้สภาพแอโรบิก microcosms ถูกเก็บไว้เปิด ตัวอย่างที่ถ่าย 3 ครั้ง: เริ่มต้นการประเมินคุณสมบัติของส่วนผสม หลัง 2 สัปดาห์และหลังเจ็ดสัปดาห์การเริ่มต้นของการทดลองเพื่อให้ได้ผลลัพธ์ระยะสั้นก่อนที่จะเริ่มต้นการทดลองฟิลด์2.4. รวมระเบียบวิธีสำหรับการตรวจสอบเราตรวจสอบผลกระทบของ biochars บนระบบดินด้วยการวิธีการบูรณาการที่มีวิธีดิออร์ ชีวภาพการวิเคราะห์และทดสอบงแวดล้อม (Gruiz et al. 2009)ค่า pH และค่าการนำไฟฟ้า (EC) กำหนดตามฮังการีมาตรฐาน (HS 21470-2, 1981) ใน 1:2.5 ดิน: น้ำระงับ มีวัดน้ำความจุ (WHC) ตามที่อธิบายไว้โดย Öhlinger (1995) เนื้อหามีฟอสฟอรัสและโพแทสเซียมถูกกำหนดตามที่อธิบายไว้ใน HS 20135:1999อธิบายสถานะทางจุลชีววิทยาของดินที่เรากำหนดจำนวนชีวิต heterotrophic แอโรบิกแบคทีเรียและเชื้อรา โดยอาณานิคมนับหลังจากเพาะในเนื้อและมอลต์สื่อตาม Ujaczkiร้อยเอ็ด (2015) จำนวนพัฒนาอาณานิคม (อาณานิคมขึ้นรูปหน่วย — อาหรับ) ถูกนับ และผลได้รับในดิน อาหรับ/gงแวดล้อมการทดสอบตัวอย่างดินจากการ microcosms ได้homogenized, air-dried และแหลกลาญ (b2 มม) งแวดล้อมที่มีทดสอบที่เราวัดได้รวมผลกระทบของ biochars ท่านบน testorganisms จากสามชั้นอาหารระดับ (Gruiz et al. 2015), แบคทีเรีย(Aliivibrio fischeri), พืช (Sinapis alba และ Triticum aestivum) และสัตว์ (แคน Folsomia) ตามที่อธิบายไว้โดย Ujaczki et al. (2015)ก. fischeri เป็นแบคทีเรียทะเลที่ยับยั้งที่ปล่อยแสงในสารพิษ (Bulich และ Isenberg, 1981) ก.fischeri bioluminescence ยับยั้งการทดสอบดำเนินการตามมีการปรับเปลี่ยนของโพรโทคอที่อธิบายไว้โดย Leitgib et al. (2007) เรางแวดล้อมการติดต่อโดยตรงที่ใช้ทดสอบแข็งตัวอย่างการตรวจสอบผลทั้งดิน มีวัดความเข้มแสงเรืองตัวอ่าน microplate Fluostar Optima หลังจาก 30 นาที และติดต่อเวลา 60 นาที ประเมินผลการดำเนินการตามที่อธิบายไว้โดย Ujaczki et al. (2015)สารพิษในการยืดตัวของรากของพืชสูงจะยับยั้ง (OECD 208, 2006) Alba S. ทั้งสอง และT. aestivum รากยืดทดสอบดำเนินตาม OECD208 (2006) และการปรับเปลี่ยนโดย Leitgib et al. (2007) 20 S. albaเมล็ดหรือเมล็ด aestivum 16 T. (กว่า 90% ความสามารถในการงอก)วางอยู่บนดินผงแห้ง 5 กรัมในแก้วจานเพาะเชื้อ (10 ซม.เส้นผ่าศูนย์กลาง ความสูง 2 ซม.), เปียกอิ่มตัว และได้รับการกกที่ 23 ±

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2 คุณสมบัติ biochar
สาม biochars จากวัตถุดิบที่แตกต่างกันได้รับการแต่งตั้งสำหรับดิน
ทดลองพิภพ: แกลบข้าวและเส้นใยกระดาษตะกอน biochar
(รหัส: A1) แกลบข้าวและเส้นใยกระดาษตะกอน biochar อุดมไปด้วย
ไนโตรเจน (พ่นด้วยแอมโมเนียมซัลเฟต) และหลังการรักษาด้วย
ผง Rockstone 10% และปุ๋ยหมัก 40% ร่อนกับ 8 มมตะแกรง
หลังจาก 3 สัปดาห์ที่ผ่านมา (รหัส: A2) biochar จากการฉายไม้ (รหัส: B1).
A1 และ B1 เป็นหนึ่งในกลุ่ม biochars กับผลลัพธ์ที่ดีที่สุดใน prescreening
ทดลองเป็น ameliorants สำหรับดินทรายที่เป็นกรด (Feigl
et al., 2015) และมีความพร้อมที่ดีที่สุดในระยะยาว (วัตถุดิบและ
ผลิตภัณฑ์ที่มีจำหน่ายจากกลางยุโรป) A2 เป็นทางเลือกสำหรับการทดลอง
เพื่อทดสอบรุ่นหลังได้รับการรักษาใน A1 (ผลิตภัณฑ์ biochar ทำเครื่องหมาย
กับ "A" มาจาก Sonnenerde Ltd. , ออสเตรีย) A1 และ A2
biochars ถูกเผาที่ 450-500 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 20 นาทีที่ B1 biochar ที่
600-700 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 นาทีในประเภทPYREG® pyrolizer คุณสมบัติของ
สาม biochars จะได้รับในตารางที่ 2
2.3 การตั้งค่าการทดลอง
การทดลองรวมถึงจุลภาคดินที่มีสาม biochars (A1,
A2 และ B1) ผสมกับดินปนทรายที่ 0 w / W% (ควบคุมได้รับการรักษา)
0.1 W / w%, 0.5 W / w% และ 1 w / W อัตรา% ตามลำดับและจุลภาคดิน
รับการรักษาด้วยวิธีการแก้ปัญหาปุ๋ยและปุ๋ยหมักที่อธิบายไว้ในตารางที่ 3
การแก้ปัญหา NPK สารอาหารที่ทำจาก NH4NO3, P2O5 และ K2O และ
อัตรานอกจากนี้ได้: 61 กก. / ไร่ไนโตรเจน 22 กก. / ไร่ฟอสฟอรัส และ
52 กก. / ไร่โพแทสเซียม ปุ๋ยหมักที่ถูกเพิ่มเข้ามาใน 0.33 W / w% จุลภาคดิน
มีเพียง NPK และปุ๋ยหมักรักษายังถูกตั้งขึ้น A2 biochar ถูก
ไม่ได้นำมาใช้ในการรวมกันกับ NPK หรือปุ๋ยหมักที่มันเป็นเอ็น
อุดมและแร่ธาตุที่โพสต์ได้รับการรักษารุ่น A1.
สามกิโลกรัมของผสมและการรักษาดินได้รับการรักษา
ที่ถูกวางลงในกระถางพลาสติก (50 × 70 × 30 ซม.) . การทดลองที่
ได้ดำเนินการในการเพิ่มขึ้นสามเท่า ปริมาณความชื้นของจุลภาค
ถูกกำหนดให้ 60% ของความจุสูงสุดของน้ำโฮลดิ้งของพวกเขา จุลภาค
ถูกน้ำท่ากับน้ำประปาปริมาณน้ำครั้งแรกของพวกเขา
ทุกสัปดาห์ที่สอง พวกเขาจะถูกเก็บรักษาไว้ที่อุณหภูมิห้อง
(25 องศาเซลเซียส± 2 ° C) เพื่อให้แน่ใจว่าแอโรบิกจุลภาคที่ถูก
เก็บไว้เปิด ถูกนำตัวอย่างสามครั้ง: ที่จุดเริ่มต้นในการประเมิน
คุณสมบัติของผสมที่สองสัปดาห์หลังจากเจ็ดสัปดาห์หลังจากการ
เริ่มต้นของการทดลองที่จะได้รับผลในระยะสั้น ๆ ก่อนที่จะมีการเริ่มต้น
ของการทดลองภาคสนาม.
2.4 วิธีการแบบบูรณาการสำหรับการตรวจสอบ
เราตรวจสอบผลกระทบของ biochars ในระบบดินด้วย
วิธีการแบบบูรณาการที่มีวิธีการทางกายภาพและทางเคมีชีววิทยา
การวิเคราะห์และการทดสอบพิษต่อระบบนิเวศ (Gruiz et al., 2009).
ค่า pH และการนำไฟฟ้า (EC) ถูกกำหนด ตาม
ให้ฮังการีมาตรฐาน (HS 21470-2, 1981) ใน 1: ดิน 2.5: น้ำ
ระงับ ถือน้ำความจุ (WHC) วัดตามที่อธิบายไว้
โดยÖhlinger (1995) ที่มีฟอสฟอรัสและโพแทสเซียมเนื้อหา
ได้รับการพิจารณาตามที่อธิบายใน HS 20135:. 1999
เพื่ออธิบายถึงสถานะทางจุลชีววิทยาของดินที่เรากำหนด
จำนวนของแบคทีเรียที่อาศัยอยู่ heterotrophic แอโรบิกและเชื้อราโดยอาณานิคม
นับหลังจากปลูกในเนื้อสัตว์และมอลต์สื่อตาม Ujaczki
et al, . (2015) จำนวนอาณานิคมพัฒนา (การขึ้นรูปอาณานิคม
หน่วย - CFU) นับและผลที่ได้รับในโคโลนี / กรัมดิน.
สำหรับการทดสอบพิษต่อระบบนิเวศตัวอย่างดินจากจุลภาคได้
หดหายอากาศแห้งและร่อน (B2 มิลลิเมตร) ที่มีต่อระบบนิเวศน์
ทดสอบเราวัดผลกระทบแบบบูรณาการของ biochars ได้รับการแต่งตั้ง
ใน testorganisms จากสามระดับชั้นอาหาร (Gruiz et al., 2015), แบคทีเรีย
(Aliivibrio fischeri) พืช (Sinapis Alba และ Triticum aestivum) และ
สัตว์ (Folsomia Candida) ในฐานะ อธิบายโดย Ujaczki et al, (2015).
เอ fischeri เป็นแบคทีเรียทะเลที่มีปล่อยแสงยับยั้ง
ในการปรากฏตัวของสารพิษ (Bulich และ Isenberg 1981) เดอะ เอ
fischeri ทดสอบการยับยั้งชีวิตเรืองแสงได้ดำเนินการตาม
การเปลี่ยนแปลงของโปรโตคอลอธิบายโดย Leitgib et al, (2007) เรา
นำมาใช้ทดสอบการติดต่อโดยตรงต่อระบบนิเวศน์สำหรับตัวอย่างของแข็งในการตรวจสอบ
ผลกระทบต่อดินทั้งหมด ความเข้มของแสงเรืองวัด
กับผู้อ่าน microplate Fluostar Optima หลังจาก 30 นาทีและ
60 นาทีของเวลาการติดต่อ ประเมินผลได้ดำเนินการ
ตามที่อธิบาย Ujaczki et al, (2015).
ในการปรากฏตัวของสารพิษการยืดตัวของราก
ของพืชสูงยับยั้ง (OECD 208, 2006) ทั้งเอสอัลบ้าและ
ตัน aestivum ทดสอบรากยืดตัวได้ดำเนินการบนพื้นฐานของ OECD
208 (2006) และการปรับเปลี่ยนโดยการ Leitgib et al, (2007) 20 เอสอัลบ้า
เมล็ดหรือ 16 เมล็ดตัน aestivum (มีความสามารถในการงอกมากกว่า 90%)
ถูกวางลงบนดิน 5 กรัมผงแห้งในแก้วจาน Petri (10 เซนติเมตร
เส้นผ่าศูนย์กลาง 2 ซม. สูง), เปียกอิ่มตัวและบ่มที่ 23 ±

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . คุณสมบัติของไบโอชาร์3 biochars จากต่างบริษัทถูกเลือกสำหรับดินการทดลองทางเศรษฐศาสตร์จุลภาค : แกลบและตะกอนเม็ดไบโอชาร์กระดาษไฟเบอร์( รหัส : A1 ) แกลบและตะกอนเม็ดไบโอชาร์อุดมไปด้วยเส้นใยกระดาษไนโตรเจน ( แอมโมเนียซัลเฟต และฉีดพ่นเพื่อรักษาด้วย ) โพสต์ผง rockstone 10% และ 40% ปุ๋ยหมักด้วยตะแกรงขนาด 8 มม.หลังจากสัปดาห์ที่ 3 ( รหัสสินค้า : A2 ) , ไบโอชาร์จากตะแกรงไม้ ( รหัส : B1 )A1 และ B1 ใน biochars กับผลลัพธ์ที่ดีที่สุดใน prescreeningการทดลองเป็น ameliorants สำหรับดินทรายที่เป็นกรด ( feiglet al . , 2015 ) และมีความพร้อมใช้งานระยะยาวที่ดีที่สุด ( วัตถุดิบ และสินค้าจากยุโรป ) A2 ถูกเลือกสำหรับการทดลองทดสอบการโพสต์การรักษารุ่น A1 ( ผลิตภัณฑ์ไบโอชาร์เครื่องหมาย" A " มาจาก sonnenerde จำกัด ออสเตรีย ) A1 และ A2biochars เคยถูกเผาในบรรยากาศที่ 450 และ 500 ° C นาน 20 นาที ที่ 1 ไบโอชาร์600 - 700 องศา C เป็นเวลา 15 นาที ใน pyreg ®ประเภท pyrolizer . คุณสมบัติของ3 biochars จะได้รับในตารางที่ 22.3 ทดลองตั้งการทดลองประกอบด้วยดิน microcosms กับสาม biochars ( A1 ,A2 และ B1 ) ผสมกับดิน ทราย ที่ 0 w / w ( ควบคุมไม่ได้ )0.1 0.5 % w / w , w / w ) และ 1 w / w % คะแนน ตามลำดับ และดิน microcosmsการรักษาด้วยสารละลายปุ๋ยและปุ๋ยหมักตามที่อธิบายไว้ใน ตารางที่ 3โดยให้สารละลายธาตุอาหารเป็น nh4no3 , P2O5 และ k2o , และเพิ่มอัตรากำลัง : 61 กก. / เฮกตาร์ ไนโตรเจน ฟอสฟอรัส และ 22 กิโลกรัม / ไร่52 กก. / เฮกตาร์โพแทสเซียม ปุ๋ยหมักเป็น 0.33 w / w ) microcosms ดินกับง่ายเท่านั้น และการรักษาปุ๋ยหมักยังตั้งขึ้น A2 ไบโอชาร์ คือไม่ใช้ร่วมกับปุ๋ยหมัก NPK หรือตามที่มันเป็น คำว่าที่อุดมด้วยแร่และโพสต์การรักษารุ่น A1สามชั่งผสมดินดิบและการรักษาทั้งหมดถูกวางลงในหม้อโรงงานพลาสติก ( 50 ×× 30 70 ซม. ) การทดลองแสดงทั้งสามใบ ความชื้นของ microcosmsถูกตั้งค่าให้ 60% ของความจุน้ำสูงสุดของพวกเขาถือ . การ microcosmsมีปริมาณน้ำชลประทานกับน้ำประปาในเริ่มแรกทุกสองสัปดาห์ พวกเขาถูกเก็บรักษาไว้ที่อุณหภูมิห้อง( 25 ° C ± 2 ° C ) เพื่อให้แน่ใจว่าเงื่อนไข microcosms เป็นแอโรบิกเก็บไว้เปิด ตัวอย่างถ่ายสามครั้งที่เริ่มต้นเพื่อประเมินคุณสมบัติของส่วนผสมสองสัปดาห์หลังจากที่เจ็ดสัปดาห์หลังจากเริ่มต้นของการทดลองได้รับผลในระยะสั้นก่อนที่จะเริ่มการทดลองภาคสนาม2.4 . วิธีการแบบบูรณาการเพื่อตรวจสอบเราติดตามผลของ biochars บนดินระบบกับบูรณาการวิธีวิทยาที่ประกอบด้วยวิธีการทางกายภาพและทางเคมีชีวภาพการวิเคราะห์และ ecotoxicity การทดสอบ ( gruiz et al . , 2009 )ความเป็นกรด - ด่างและค่าการนำไฟฟ้า ( EC ) ได้ถูกกำหนดตามมาตรฐานของฮังการี ( HS 21470-2 , 1981 ) ใน 1:2.5 ดิน : น้ำระงับ น้ำความจุถือ ( SPM ) วัดตามที่อธิบายไว้โดยÖ hlinger ( 1995 ) การใช้ประโยชน์ได้ของฟอสฟอรัสและโพแทสเซียมเป็นตามที่อธิบายไว้ใน HS 20135:1999 .อธิบายถึงสถานะทางจุลชีววิทยาของดินที่เรากำหนดหมายเลขของแอโรบิกแบบอาศัยแบคทีเรียและเชื้อราโดยอาณานิคมนับหลังจากการเพาะปลูกในเนื้อและข้าวมอลต์สื่อตาม ujaczkiet al . ( 2015 ) จำนวนโคโลนี ( Colony สร้างพัฒนาหน่วย - CFU ) คือการนับและผลลัพธ์ที่ได้รับใน cfu / กรัมของดินสำหรับ ecotoxicity การทดสอบตัวอย่างดินจาก microcosms คือบด , เครื่องอบแห้ง และขนาด B2 ( มิลลิเมตร ) กับ ecotoxicityเราได้ทดสอบผลกระทบของการเลือก biochars แบบบูรณาการใน testorganisms จากสามระดับอันดับ ( gruiz et al . , 2015 ) , แบคทีเรีย( aliivibrio fischeri ) , พืช ( sinapis และข้าวสาลี ) และสัตว์ ( folsomia Candida ) ตามที่อธิบายไว้โดย ujaczki et al . ( 2015 )1 . fischeri เป็นแบคทีเรียทางทะเลที่มีการเปล่งแสงเป็น ยับยั้งในการแสดงตนของสารพิษ ( bulich และ ไอเซนเบิร์ก , 1981 ) Aไบโอลูมิเนสเซนต์ทดสอบการยับยั้ง fischeri ได้ดําเนินตามการเปลี่ยนแปลงของโปรโตคอลที่อธิบายโดย leitgib et al . ( 2007 ) เราที่ใช้ติดต่อ ecotoxicity ทดสอบตัวอย่างเฟสของแข็งเพื่อตรวจสอบผลกระทบต่อดินทั้ง วัดที่ความเข้มแสงกับพื้นที่ภาคเหนือของประเทศไทย fluostar อ่าน Optima หลังจาก 30 นาทีและ60 นาทีของเวลาที่ติดต่อ การประเมิน ผลทดลองตามที่อธิบายไว้โดย ujaczki et al . ( 2015 )ในการแสดงตนของสารพิษการยืดตัวของรากของพืชที่สูงขึ้นถูกยับยั้ง ( OECD 208 , 2006 ) ทั้ง เอส แอล และทดสอบการยืดตัวราก ต. aestivum ดำเนินการตามหรือ208 ( 2549 ) และการ leitgib et al . ( 2007 ) 20 . อัลบาเมล็ดหรือ 16 ต. aestivum เมล็ด ( มีมากกว่าความสามารถในการงอก 90 % )ถูกวางลงบนที่แห้ง 5 กรัม ผงดินในแก้วจานแก้ว ( 10 ซม.ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 2 ซม. สูง ) เปียกเพื่อความอิ่มตัวของสีและบ่มที่อุณหภูมิ 23 ±