2. Materials and methods2.1. Banana

2. Materials and methods
2.1. Bananas and chemicals

Unripe bananas (Musa spp.) derived from the Philippines were purchased at a local market. The bananas were immediately sent to the laboratory and washed with tap water. The bananas were selected based on uniformity of weight and colour (green). Bradford reagent, bovine serum albumin, catechol, and polyvinyl polypyrrolidone were purchased from Sigma–Aldrich Chemical Co. (St. Louis, MO, USA) and the other chemicals for the analyses were high-purity grade.

2.2. Sample preparation

To compare the degree of browning among peels, the bananas were divided into the following 3 treatment groups: Cont, no treatment and normal packaging; CO, CO2 gas exchange packaging (AZS-300, Airzero CO., Seoul, Republic of Korea); ET, normal packaging with an ethylene generator (Topfresh Co., Seoul, Republic of Korea). All samples were packed in a 0.04-mm polyethylene film and stored at 20 °C for 9 days.

2.3. Sensory test

Sensory test of the degree of browning peel browning was conducted by 30 panellists who study Food Science and Technology at Kyungpook National University. The panellists were trained using the banana colour chart (Isopan Insulation Pvt. Ltd., Gurgaon, India) and evaluated banana peel browning (particularly black spots and colour changes from green to yellow) using a 9-point scale ranging from 1 (least browned) to 9 (most browned).

2.4. Enzyme activity assay

2.4.1. Extraction of crude enzyme

Extraction and enzyme activity assays were used following the methods of Huang et al. (2013), with some modifications. Five grams of frozen peel tissue were homogenised in 25 mL of 0.05 mol/L sodium phosphate buffer (pH 7.0) containing 0.5 g polyvinyl polypyrrolidone for 2 min. The homogenate was centrifuged at 12,000×g for 20 min. All steps of the extraction and assay were carried out at 4 °C. The supernatant was used as a crude enzyme solution to estimate polyphenol oxidase (PPO) activity and peroxidase (POD) activity.

2.4.2. Determination of PPO activity

The reaction mixture consisted of 0.5 mL of crude enzyme and 2.5 mL of 0.2 mol/L catechol dissolved in 0.05 mol/L sodium phosphate buffer (pH 7.0). Enzyme activity was measured by the increase in absorbance at 398 nm. The increase in absorbance at 398 nm was recorded every 1 min for 3 min using a spectrophotometer (Evolution 201, Thermo Fisher Scientific Inc., Madison, WI, USA). One unit of PPO activity was defined as an increase in absorbance at 0.001/min. The specific PPO activity was expressed as units of enzyme/mg protein.

2.4.3. Determination of peroxidase activity

The reaction mixture consisted of 0.1 mL of 0.4% guaiacol, 0.1 mL of 0.46% H2O2, 2 mL of buffered substrate (0.05 M sodium phosphate buffer, pH 7.0), and 1 mL of crude enzyme extract. Enzyme activity was measured by the increase in absorbance at 470 nm. The increase in absorbance at 470 nm was recorded every 1 min for 3 min using a spectrophotometer. One unit of POD activity was defined as an increase in absorbance at 0.001/min. The specific POD activity was expressed as units of enzyme/mg protein.

2.4.4. Protein determination

Protein contents were measured according to the Bradford method (Bradford, 1976) using bovine serum albumin (BSA) as a standard. Bradford reagent and crude enzyme extract were reacted for 2 min. The reactant was measured at 595 nm using a spectrometer.

2.5. Determination of the browning degree of banana peels

2.5.1. Image analysis

To capture the sample images, a digital camera (NEX-5N, Sony, Tokyo, Japan) was positioned approximately 30 cm above a black mat. Each banana sample was placed on the black mat and subsequently photographed. All of the experiments were conducted in a darkroom that was maintained at room temperature. The acquired picture files were saved in JPEG format (600 × 400 pixels) and analysed using the MATLAB image processing toolbox (version 8.3, Mathworks, Natick, MA, USA) to analyse the degree of browning.

The browning degree of banana peels was estimated using 2 methods. Firstly, the changes in RGB colour value were analysed for each channel (R, G, and B). Secondly, the changes in the CIE L∗a∗b∗ colour values were analysed using algorithms associated with colour space conversion based on RGB colour space. The RGB value represented red, green, and blue, and the CIE L∗, a∗, b∗ value represented lightness, redness, and yellowness, respectively. The colour values ranged from 0 to 255.

2.5.2. Colorimeter

For the manual inspection, colour values of the surfaces of banana peels were measured using a colorimeter (CR-400, Minolta Co., Osaka, Japan) calibrated using a standard white plate (L∗ = 97.79, a∗ = −0.38, b∗ = 2.05). Each sample was measured 20 times. The colour values ranged from 0 to 100 (L∗ value), and from −128 to 127 (a∗ and b∗ values).

2.6. Statistical analysis

The data were subjected to analysis of variance using the SPSS statistical package (ver. 14.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA). Differences among means were established using the Duncan’s multiple range test (P 

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2. วัสดุและวิธีการ2.1. กล้วยและเคมีภัณฑ์โยเกิร์ตกับกล้วย (Musa โอ) มาจากประเทศฟิลิปปินส์ถูกซื้อในตลาดท้องถิ่น กล้วยถูกส่งไปยังห้องปฏิบัติการทันที และล้าง ด้วยน้ำประปา กล้วยได้เลือกตามใจน้ำหนักและสี (สีเขียว) รีเอเจนต์แบรดฟอร์ด วัว serum albumin, catechol และโพลีไวนิล polypyrrolidone ซื้อจาก บริษัทเคมี Aldrich – ซิก (St. Louis, MO สหรัฐอเมริกา) และเคมีภัณฑ์อื่น ๆ สำหรับการวิเคราะห์มีเกรดความบริสุทธิ์สูง2.2. ตัวอย่างเพื่อเปรียบเทียบระดับของ browning ระหว่าง peels กล้วยถูกแบ่งออกเป็นกลุ่มบำบัดที่ 3 ต่อไปนี้: Cont ไม่รักษาและบรรจุภัณฑ์ปกติ บรรจุภัณฑ์ (AZS-300, Airzero CO. โซล เกาหลี), CO แลกเปลี่ยนก๊าซ CO2 ร้อยเอ็ด ปกติบรรจุการสร้างเอทิลีน (Topfresh Co. โซล เกาหลี) ตัวอย่างทั้งหมดถูกบรรจุในฟิล์ม 0.04 มม. และเก็บไว้ที่ 20 ° C 9 วัน2.3 การทดสอบที่รับความรู้สึกทดสอบทางประสาทสัมผัสของระดับของเปลือก browning browning ถูกดำเนิน โดยกั้น 30 ศึกษาวิทยาศาสตร์อาหารและเทคโนโลยีที่มหาวิทยาลัยแห่งชาติเคียงพุ๊ก มีฝึกที่กั้นโดยใช้กล้วยสีแผนภูมิ (Isopan ฉนวน pvt. จำกัด โกน อินเดีย) และค่ากล้วยเปลือก browning (โดยเฉพาะอย่างยิ่งจุดดำและเปลี่ยนสีจากสีเขียวเหลือง) ใช้จุด 9 ขนาดตั้งแต่ 1 (น้อย browned) 9 (browned สุด)2.4 ทดสอบกิจกรรมเอนไซม์2.4.1 การสกัดเอนไซม์ดิบสกัดและเอนไซม์กิจกรรม assays ถูกใช้ตามวิธีการของหวง et al. (2013), มีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง 5 กรัมของเนื้อเยื่อเปลือกแช่แข็งถูก homogenised ใน 25 mL ของ L 0.05 โมลโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) ที่มี 0.5 g โพลีไวนิล polypyrrolidone ใน 2 นาที Homogenate ถูก centrifuged ที่ 12, 000 ซื้อ g สำหรับ 20 นาที ทุกขั้นตอนของการสกัดและวิเคราะห์ได้ดำเนินการที่ 4 องศาเซลเซียส Supernatant ถูกใช้เป็นโซลูชันเอนไซม์ดิบเพื่อประเมินกิจกรรม polyphenol oxidase (PPO) และกิจกรรม peroxidase (POD)2.4.2 การกำหนดกิจกรรม PPOส่วนผสมปฏิกิริยาประกอบด้วย 0.5 mL ของเอนไซม์ดิบและ 2.5 mL ของ 0.2 โมล/L catechol ละลายใน 0.05 โมล/L โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) เอนไซม์ถูกวัด โดยเพิ่ม absorbance ที่ 398 nm เพิ่ม absorbance ที่ 398 nm ถูกบันทึกทุก ๆ 1 นาทีใน 3 นาทีโดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (วิวัฒนาการ 201 เทอร์โม Fisher วิทยาศาสตร์ Inc. เมดิสัน WI สหรัฐอเมริกา) กิจกรรม PPO หน่วยหนึ่งถูกกำหนดเป็นการเพิ่ม absorbance ที่ 0.001/min กิจกรรม PPO ถูกแสดงเป็นหน่วยของโปรตีนเอนไซม์/มิลลิกรัม2.4.3 การกำหนดกิจกรรม peroxidaseส่วนผสมปฏิกิริยาประกอบด้วย 0.1 mL ของ guaiacol 0.4%, 0.1 mL 0.46% H2O2, 2 mL ของพื้นผิวถูกบัฟเฟอร์ (0.05 M โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0), และสารสกัดจาก 1 mL ของเอนไซม์ดิบ เอนไซม์ถูกวัด โดยเพิ่ม absorbance ที่ 470 nm เพิ่ม absorbance ที่ 470 nm ถูกบันทึกทุก ๆ 1 นาทีใน 3 นาทีโดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่างการ หน่วยหนึ่งของ POD กิจกรรมถูกกำหนดเป็นการเพิ่ม absorbance ที่ 0.001/min กิจกรรมเท่านั้นที่ถูกแสดงเป็นหน่วยของโปรตีนเอนไซม์/มิลลิกรัม2.4.4 การโปรตีนกำหนดโปรตีนเนื้อหาถูกวัดตามวิธีการแบรดฟอร์ด (แบรดฟอร์ด 1976) โดยใช้วัว serum albumin (บีเอสเอ) เป็นมาตรฐาน รีเอเจนต์แบรดฟอร์ดและสารสกัดเอนไซม์ดิบได้ปฏิกิริยาที่เกิดขึ้นในนาที 2 ตัวทำปฏิกิริยาถูกวัดที่ 595 nm โดยใช้สเปกโตรมิเตอร์2.5 การกำหนดปริญญา browning ของกล้วยมักหลุดลอก2.5.1 รูปวิเคราะห์การจับภาพตัวอย่าง กล้องดิจิตอล (NEX 5N, Sony โตเกียว ญี่ปุ่น) ตำแหน่งประมาณ 30 ซม.ด้านบนพรมสีดำ แต่ละอย่างกล้วยวางบนเสื่อสีดำ และถ่ายภาพในเวลาต่อมา การทดลองทั้งหมดได้ดำเนินการในห้องมืดที่ถูกเก็บรักษาที่อุณหภูมิห้อง รูปภาพซื้อมาที่แฟ้มถูกบันทึกไว้ใน JPEG รูปแบบ (600 × 400 พิกเซล) และ analysed ใช้ MATLAB ภาพประมวลผลกล่องเครื่องมือ (เวอร์ชัน 8.3, Mathworks, Natick, MA สหรัฐอเมริกา) เพื่อวิเคราะห์ระดับของ browningระดับ browning peels กล้วยถูกประเมินโดยใช้วิธีที่ 2 ประการแรก เปลี่ยนแปลงค่าสีในระบบ RGB มี analysed สำหรับแต่ละช่องสัญญาณ (R, G และ B ประการที่สอง การเปลี่ยนแปลงค่าสี CIE L∗a∗b∗ ได้ analysed โดยใช้อัลกอริทึมที่สัมพันธ์กับสีพื้นที่แปลงตามพื้นที่สี RGB ค่า RGB แสดงสีแดง เขียว และสี น้ำเงิน และ CIE L∗, a∗, b∗ แสดงค่าความสว่าง แดง และ yellowness ตามลำดับ ค่าสีที่อยู่ในช่วงจาก 0 ถึง 2552.5.2. เครื่องสำหรับการตรวจสอบด้วยตนเอง ค่าสีของพื้นผิวของ peels กล้วยถูกวัดโดยใช้ตัวเครื่อง (CR 400, Minolta Co. โอซาก้า ญี่ปุ่น) ปรับเทียบโดยใช้จานสีขาวมาตรฐาน (L∗ = 97.79, a∗ = −0.38, b∗ = 2.05) แต่ละตัวอย่างที่วัด 20 ครั้ง ค่าสีที่อยู่ในช่วง จาก 0 ถึง 100 (L∗ ค่า), และ −128 ถึง 127 (ค่า a∗ และ b∗)2.6. สถิติวิเคราะห์ข้อมูลถูกต้องวิเคราะห์ผลต่างของการใช้โปรแกรมชุดสถิติ (ไม่ 14.0 โปรแกรม Inc. ชิคาโก IL สหรัฐอเมริกา) ใช้ดันแคนของหลายช่วงทดสอบความแตกต่างระหว่างวิธีก่อ (P < 0.05) ทดสอบของเพียร์สันยังดำเนินการกำหนดค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ระหว่างการทดสอบทางประสาทสัมผัสและแต่ละค่าสีที่ใช้การวิเคราะห์ภาพและเครื่อง ผลการทดลองจะแสดงเป็นหมายถึง ± SD.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 และสารเคมีกล้วยกล้วยสุก (Musa spp.) ที่ได้มาจากประเทศฟิลิปปินส์กำลังซื้อในตลาดท้องถิ่น กล้วยถูกส่งทันทีไปยังห้องปฏิบัติการและล้างด้วยน้ำประปา กล้วยถูกเลือกขึ้นอยู่กับความสม่ำเสมอของน้ำหนักและสี (สีเขียว) น้ำยาแบรดฟอเซรั่มอัลบูมิวัว catechol และ polypyrrolidone โพลีไวนิลที่ซื้อมาจาก Sigma-Aldrich เคมี จำกัด (เซนต์หลุยส์สหรัฐอเมริกา) และสารเคมีอื่น ๆ สำหรับการวิเคราะห์มีคุณภาพสูงมีความบริสุทธิ์. 2.2 การเตรียมตัวเพื่อเปรียบเทียบระดับของการเกิดสีน้ำตาลในหมู่เปลือกกล้วยถูกแบ่งออกเป็นดังต่อไปนี้กลุ่มการรักษาที่ 3: ต่อเนื่องไม่มีการรักษาและการบรรจุภัณฑ์ปกติ CO บรรจุภัณฑ์การแลกเปลี่ยนก๊าซ CO2 (AZS-300 Airzero CO, โซล, เกาหลีใต้.); ET บรรจุภัณฑ์ปกติที่มีเครื่องกำเนิดไฟฟ้าเอทิลีน (Topfresh Co. , กรุงโซลสาธารณรัฐเกาหลี) ตัวอย่างทั้งหมดถูกบรรจุในฟิล์มพลาสติก 0.04 มิลลิเมตรและเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 20 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 9 วัน. 2.3 การทดสอบทางประสาทสัมผัสการทดสอบทางประสาทสัมผัสของระดับการเกิดสีน้ำตาลเปลือกสีน้ำตาลได้ดำเนินการโดยคณะกรรมการที่ 30 ที่ศึกษาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีการอาหารที่มหาวิทยาลัยแห่งชาติ Kyungpook อภิปรายได้รับการฝึกฝนการใช้กราฟสีกล้วย (Isopan ฉนวนกันความร้อน Pvt. Ltd. ใน Gurgaon, อินเดีย) และการเกิดสีน้ำตาลเปลือกกล้วยประเมิน (โดยเฉพาะจุดด่างดำและเปลี่ยนสีจากสีเขียวเป็นสีเหลือง) โดยใช้ขนาด 9 จุดตั้งแต่ 1 (อย่างน้อยสีน้ำตาล ) ถึง 9 (สีน้ำตาลส่วนใหญ่). 2.4 การทดสอบการทำงานของเอนไซม์2.4.1 การสกัดเอนไซม์สกัดและการตรวจการทำงานของเอนไซม์ที่ใช้วิธีการดังต่อไปนี้ Huang et al, (2013) ด้วยการปรับเปลี่ยนบางอย่าง ห้ากรัมของเนื้อเยื่อเปลือกแช่แข็งถูก homogenised 25 มิลลิลิตร 0.05 โมล / ลิตรโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) ที่มี 0.5 กรัม polypyrrolidone โพลีไวนิลเป็นเวลา 2 นาที homogenate ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 12,000 ×กรัมเป็นเวลา 20 นาที ทุกขั้นตอนของการสกัดและการทดสอบได้รับการดำเนินการที่ 4 ° C สารละลายที่ใช้เป็นวิธีการแก้ปัญหาเอนไซม์ที่จะประเมินเอนไซม์โพลีฟีน (PPO) กิจกรรมและ peroxidase (POD) กิจกรรม. 2.4.2 การกำหนดกิจกรรม PPO ผสมปฏิกิริยาประกอบด้วย 0.5 มิลลิลิตรของเอนไซม์และ 2.5 มิลลิลิตร catechol 0.2 โมล / ลิตรละลายใน 0.05 โมล / ลิตรโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) กิจกรรมของเอนไซม์โดยวัดจากการเพิ่มขึ้นของการดูดกลืนแสงที่ 398 นาโนเมตร การเพิ่มขึ้นของการดูดกลืนแสงที่ 398 นาโนเมตรได้รับการบันทึกทุก 1 นาทีเป็นเวลา 3 นาทีโดยใช้สเปก (วิวัฒนาการ 201, เทอร์โมฟิชเชอร์ทางวิทยาศาสตร์อิงค์แมดิสัน, WI, สหรัฐอเมริกา) หนึ่งหน่วยของกิจกรรม PPO ถูกกำหนดเป็นเพิ่มขึ้นในการดูดกลืนแสงที่ 0.001 / นาที กิจกรรม PPO เฉพาะได้รับการแสดงเป็นหน่วยงานของเอนไซม์ / มก. โปรตีน. 2.4.3 การกำหนดกิจกรรม peroxidase ผสมปฏิกิริยาประกอบด้วย 0.1 มิลลิลิตร guaiacol 0.4%, 0.1 มิลลิลิตร 0.46% H2O2 2 มิลลิลิตรของพื้นผิวบัฟเฟอร์ (0.05 M โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ค่า pH 7.0) และ 1 มิลลิลิตรของสารสกัดเอนไซม์ กิจกรรมของเอนไซม์โดยวัดจากการเพิ่มขึ้นของการดูดกลืนแสงที่ 470 นาโนเมตร การเพิ่มขึ้นของการดูดกลืนแสงที่ 470 นาโนเมตรได้รับการบันทึกทุก 1 นาทีเป็นเวลา 3 นาทีโดยใช้สเปก หนึ่งหน่วยของกิจกรรม POD ถูกกำหนดเป็นเพิ่มขึ้นในการดูดกลืนแสงที่ 0.001 / นาที กิจกรรม POD เฉพาะได้รับการแสดงเป็นหน่วยงานของเอนไซม์ / มก. โปรตีน. 2.4.4 ความมุ่งมั่นของโปรตีนเนื้อหาโปรตีนวัดตามวิธี Bradford (แบรด, 1976) โดยใช้ซีรั่มอัลบูมิวัว (BSA) เป็นมาตรฐาน แบรดฟอสารและเอนไซม์สารสกัดที่ได้รับปฏิกิริยาที่เกิดขึ้นเป็นเวลา 2 นาที ผิดใจวัดที่ 595 นาโนเมตรโดยใช้สเปกโตรมิเตอร์. 2.5 กําหนดการศึกษาระดับปริญญาการเกิดสีน้ำตาลของเปลือกกล้วย2.5.1 การวิเคราะห์ภาพเพื่อจับภาพตัวอย่างกล้องดิจิตอล (NEX-5N, Sony, กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) อยู่ในตำแหน่งประมาณ 30 เซนติเมตรเหนือเสื่อสีดำ ตัวอย่างกล้วยแต่ละถูกวางลงบนเสื่อสีดำและถ่ายภาพต่อมา ทั้งหมดของการทดลองได้ดำเนินการในห้องมืดที่ถูกเก็บรักษาไว้ที่อุณหภูมิห้อง ไฟล์ภาพที่ได้มาถูกบันทึกไว้ในรูปแบบ JPEG (600 × 400 พิกเซล) และวิเคราะห์โดยใช้กล่องเครื่องมือประมวลผลภาพ MATLAB (รุ่น 8.3 Mathworks, เนติ, MA, USA) เพื่อวิเคราะห์ระดับของสีน้ำตาล. ระดับการเกิดสีน้ำตาลของเปลือกกล้วยเป็นที่คาดกัน โดยใช้ 2 วิธี ประการแรกการเปลี่ยนแปลงในมูลค่าสี RGB วิเคราะห์สำหรับแต่ละช่อง (R, G และ B) ประการที่สองการเปลี่ยนแปลงใน CIE L ที่ * a * b * ค่าสีที่ได้มาวิเคราะห์โดยใช้กลไกที่เกี่ยวข้องกับการแปลงพื้นที่สีขึ้นอยู่กับพื้นที่สี RGB ค่า RGB เป็นตัวแทนของสีแดงสีเขียวและสีฟ้าและ CIE L *, a *, B * ค่าเป็นตัวแทนของความสว่าง, สีแดงและสีเหลืองตามลำดับ ค่าสีตั้งแต่ 0 ถึง 255 2.5.2 colorimeter สำหรับการตรวจสอบด้วยตนเองค่าสีของพื้นผิวของเปลือกกล้วยที่ถูกวัดโดยใช้ colorimeter (CR-400, Minolta Co. , โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น) โดยใช้การสอบเทียบแผ่นสีขาวมาตรฐาน (L * = 97.79, a * ​​= -0.38, b * = 2.05) ตัวอย่างแต่ละวัด 20 ครั้ง ค่าสีอยู่ในช่วง 0-100 (L คุ้มค่า *) และจาก -128 ถึง 127 (a * และค่า b *). 2.6 การวิเคราะห์ทางสถิติข้อมูลที่ถูกยัดเยียดให้การวิเคราะห์ความแปรปรวนโดยใช้โปรแกรมสำเร็จรูปทางสถิติ SPSS (Ver. 14.0, SPSS อิงค์, Chicago, IL, USA) ความแตกต่างระหว่างวิธีการที่ถูกจัดตั้งขึ้นโดยใช้การทดสอบหลายช่วงของดันแคน (P <0.05) ทดสอบเพียร์สันยังได้ดำเนินการเพื่อตรวจสอบค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ระหว่างการทดสอบทางประสาทสัมผัสและแต่ละค่าสีโดยใช้การวิเคราะห์ภาพและ colorimeter ผลการทดลองแสดงเป็นหมายถึง± SD

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . กล้วยและกล้วยดิบ สารเคมี

( Musa spp . ) ที่ได้มาจากฟิลิปปินส์ ซื้อในตลาดท้องถิ่น กล้วยได้ทันที ส่งถึงห้องปฏิบัติการและการล้างด้วยน้ำประปา กล้วยถูกเลือกขึ้นอยู่กับความสม่ำเสมอของน้ำหนักและสี ( สีเขียว ) แบรดฟอร์ดเก็บสารอัลบูมินแคติคอล , ,ไวนิล polypyrrolidone และซื้อมาจาก Sigma –อัลดริชเคมี . ( St . Louis , MO , USA ) และสารเคมีอื่น ๆเพื่อใช้เป็นเกรดความบริสุทธิ์สูง

2.2 .

ตัวอย่างการเปรียบเทียบระดับของการเกิดสีน้ำตาลของเปลือก , กล้วยแบ่งออกเป็น 3 กลุ่มตามการรักษาต่อ ไม่การรักษาและบรรจุภัณฑ์ บริษัท บรรจุภัณฑ์ปกติ ก๊าซ CO2 ตรา ( azs-300 airzero , บริษัทโซล , เกาหลีใต้ ) ; และบรรจุภัณฑ์แบบปกติกับเอทิลีนเครื่องกำเนิดไฟฟ้า ( topfresh Co . , โซล , เกาหลีใต้ ) ตัวอย่างทั้งหมดจะถูกบรรจุในฟิล์มพลาสติกและเก็บรักษาที่ 0.04-mm 20  ° C เป็นเวลา 9 วันรึเปล่า

2.3 การทดสอบทางประสาทสัมผัส

และทดสอบระดับสีน้ำตาล เปลือกเป็นสีน้ำตาล โดย 30 Panellists ที่ศึกษาด้านวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีที่ kyungpook แห่งชาติมหาวิทยาลัยการฝึกโดยใช้กล้วย Panellists สีแผนภูมิ ( isopan ฉนวน Pvt . จำกัด , Gurgaon , อินเดีย ) และประเมิน เปลือกกล้วย บราวนิ่ง ( โดยเฉพาะจุดที่ดำและเปลี่ยนสีจากสีเขียวเป็นสีเหลือง ) ใช้ในขนาดตั้งแต่ 1 ( อย่างน้อยสีน้ําตาล ) 9 มากที่สุด ( เหลือง )

2.4 . กิจกรรมของเอนไซม์ต่อ

เครื่องมือกำจัดเพื่อย้าย . การสกัดเอนไซม์

การสกัดและเอนไซม์ที่ใช้ตามวิธีของ Huang et al . ( 2013 ) ที่มีการปรับเปลี่ยน ห้ากรัมเนื้อเยื่อเปลือกแช่แข็งเป็น homogenised 25 รึเปล่ามิลลิลิตร 0.05 mol / L โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ไหม ( pH 7.0 ) ที่มีต่อ 0.5 รึเปล่าไวนิล polypyrrolidone 2 อะไรแยกเป็นระดับนาทีที่ 12 × G 20 รึเปล่าคะ ทุกขั้นตอนของการสกัดและทดสอบทดลองที่ 4  ° Cนำที่ถูกใช้เป็นวิธีการประมาณการเอนไซม์ polyphenol oxidase ( PPO ) กิจกรรมและ peroxidase ( POD ) กิจกรรม

2.4.2 . ความมุ่งมั่นของ PPO กิจกรรม

ปฏิกิริยาผสม จำนวน 0.5 มิลลิลิตรเอนไซม์ดิบ และ   2.5 มล. 0.2 mol / l แคติคอลละลาย 0.05 mol / L เหรอโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 ) กิจกรรมของเอนไซม์ถูกวัดโดยเพิ่มค่าอะไรที่ 398 นาโนเมตรการเพิ่มค่าการดูดกลืนแสงที่ 398 ไหม nm ทุก 1 มั้ย มินที่บันทึกไว้ 3 มั้ยมินโดยใช้ Spectrophotometer ( เทอร์โมฟิชเชอร์ทางวิทยาศาสตร์วิวัฒนาการ 201 , Inc , Madison , WI , USA ) หน่วยหนึ่งของกิจกรรมของเอนไซม์ PPO ได้กำหนดเพิ่มในการดูดกลืนแสงที่ 0.001/min ส่วนกิจกรรมของเอนไซม์ PPO ที่เฉพาะเจาะจงจะแสดงเป็นหน่วยของเอนไซม์โปรตีน .

2.4.3 . การหาปริมาณเปอร์ออกซิเดสกิจกรรม

ปฏิกิริยาผสมจำนวน 01 อะไรประมาณ 0.4% ค่า 0.1 ml เหรอ 0.46 % แบต 2 รึเปล่ามิลลิลิตร ( 0.05 2 แผ่นมั้ย M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 ) และ 1 รึเปล่ามิลลิลิตรเอนไซม์สกัดเข้มข้น กิจกรรมของเอนไซม์ถูกวัดโดยเพิ่มค่าอะไรที่ 470 นาโนเมตร การเพิ่มค่าการดูดกลืนแสงที่ 470 รึเปล่า nm ทุก 1 มั้ย มินที่บันทึกไว้ 3 มั้ย มินที่ใช้วัสดุ หน่วยหนึ่งของกิจกรรมฝักถูกกำหนดไว้มีการเพิ่มค่าการดูดกลืนแสงที่ 0.001/min .กิจกรรมเฉพาะฝักจะแสดงเป็นหน่วยของเอนไซม์โปรตีน 2.4.4

. การหาปริมาณโปรตีนโปรตีน

วัดตามที่แบรดฟอร์ดวิธี Bradford , 1976 ) โดยใช้อัลบูมิน ( BSA ) เป็นมาตรฐาน แบรดฟอร์ดและสารสกัดเอนไซม์ทำปฏิกิริยาปฏิกิริยา 2 รึเปล่าคะ ตัวทำปฏิกิริยาเป็นวัดที่ 595 รึเปล่า nm ใช้สเปก

2.5การวิเคราะห์ระดับสีน้ำตาลเปลือกกล้วย

ดาวน์โหลด . การวิเคราะห์ภาพ

ภาพตัวอย่างภาพ , กล้องดิจิตอล ( NEX - 5N , Sony , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) เป็นตำแหน่งประมาณ 30 ซม. เหนือ เสื่อสีดำ กล้วยแต่ละตัวอย่างถูกวางไว้บนเสื่อสีดำและถูกถ่ายภาพ ทั้งหมดของการทดลองในห้องมืดที่ถูกเก็บรักษาที่อุณหภูมิห้องได้รับไฟล์ภาพที่ถูกบันทึกในรูปแบบ JPEG ( 600  ×  400 รึเปล่าพิกเซล ) และวิเคราะห์โดยใช้โปรแกรม MATLAB ประมวลผลภาพกล่องเครื่องมือ ( รุ่น 8.3 แมธเวิร์คส์ นาติค , , MA , USA ) เพื่อวิเคราะห์ระดับของบราวนิ่ง

สีน้ำตาลระดับเปลือกกล้วยประมาณโดยใช้ 2 วิธี คือ ประการแรก การเปลี่ยนแปลงค่าสี RGB เป็นเครื่องมือสำหรับแต่ละช่อง ( R , G , B ) ประการที่สองการเปลี่ยนแปลงใน CIE L ∗เป็น∗ B ∗สีค่าวิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้กลไกที่เกี่ยวข้องกับการแปลงพื้นที่สี RGB สี ขึ้นอยู่กับพื้นที่ ค่า RGB ( แดง , เขียว , น้ำเงิน , และ CIE L ∗ , ∗ B ∗ค่าที่แสดงความสว่าง แดง และเหลืองตามลำดับ สีมีค่าตั้งแต่ 0 ถึง 255 .

งานวาง . เทอร์โมมิเตอร์ /

เพื่อตรวจสอบคู่มือค่าสีของพื้นผิวของเปลือกกล้วยถูกวัดโดยใช้ระบบดิจิตอล ( cr-400 , MINOLTA Co . , โอซาก้า , ญี่ปุ่น ) ในการปรับจานสีขาวมาตรฐาน ( L ∗  = รึเปล่า 97.79 , ∗  =  − 0.38 B  ∗  = 2.05 ) แต่ละตัวอย่างถูกวัด 20 ครั้ง สีมีค่าอยู่ระหว่าง 0 ถึง 100 ( L ∗ค่า ) , และจาก− 128 ถึง 127 ( ∗และ B ∗ค่า )

2.6

ทางสถิติการวิเคราะห์ข้อมูลที่ถูกต้องในการวิเคราะห์ความแปรปรวนโดยใช้โปรแกรมสำเร็จรูป SPSS / PC ( Ver . 14.0 SPSS Inc , Chicago , IL , USA ) ความแตกต่างระหว่างวิธีการขึ้นใช้ทดสอบหลายช่วง ดันแคน ( P < 0.05    ) ของเพียร์สัน ทดสอบก็มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาความสัมพันธ์ระหว่างสมบัติทางประสาทสัมผัส และแต่ละค่าสีโดยใช้การวิเคราะห์ภาพระบบดิจิตอล .ผลการทดลองจะแสดงเป็นค่าเฉลี่ย  ±  SD