CONTENTS PageACKNOWLEDGEMENTS iiiAB

CONTENTS
Page
ACKNOWLEDGEMENTS iii
ABSTRACT iv
LIST OF TABLES ix
LIST OF FIGURES xi
LIST OF ABBREVIATIONS xvi
CHAPTER
I INTRODUCTION 1
1.1 Introduction 1
1.2 Objectives 2
II LITERATURE REVIEW 3
2.1 Collection and preservation biological evidence 3
2.2 Collection and preservation blood evidence 5
2.3 Forensic DNA analysis 6
2.3.1 Forensic human identification 6
2.3.2 Forensic non-human identification 13
2.3.2.1 Mitochondrial DNA (mtDNA) 14
2.3.2.2 Chloroplast DNA 15
2.3.2.3 Nuclear DNA 15
2.3.3 Steps in forensic DNA analysis 16
2.3.3.1 DNA evidence collection 16
2.3.3.2 DNA extraction from the sample 16
2.3.3.3 Quantification methods in forensic 18
DNA typing
2.3.3.4 Amplified the genetic loci to be examined 19
2.3.3.5 Analysis of amplified DNA 20
2.3.3.6 Allele interpretation 21
2.3.4 Issue in forensic DNA analysis 22
vii
CONTENTS (CONT.)
Page
2.3.4.1 Degraded DNA 22
2.3.4.2 PCR inhibition 22
2.3 Porcine DNA analysis 23
2.4 Artificial DNA degradation methods 24
2.4.1 Sonication 24
2.4.2 UV light 24
2.4.3 DNase enzyme 25
2.4.4 Other methods 25
2.5 Water Quality 26
III MATERIAL AND METHOD 28
3.1 Water types preparation 28
3.2 Conductivity, pH and temperature measurement 29
3.3 Blood sample preparation 29
3.4 DNA extraction by QIAamp DNA mini kit® 29
(Qiagen, Germany)
3.5 DNA quantification 30
3.5.1 UV-VIS spectrophotometer 30
3.5.2 Yield gel 30
3.6 Polymerase chain reaction 30
3.6.1 Primer pairs 30
3.6.2 Thermocycling reaction 31
3.7 Agarose gel electrophoresis 32
IV RESULTS 34
4.1 Measurement of pH and Conductivity of Water Samples 34
4.2 The effect of water samples on untreated bloodstains 35
4.2.1 Amplification of the 211-bp β-actin nuclear 35
DNA fragment
4.2.2 Amplification of the 366-bp β-actin nuclear 36
DNA fragment

viii
CONTENTS (CONT.)
Page
4.3 Testing the effect of carry-over PCR inhibitors in water 38
samples after DNA extraction and purification
4.4 Amplification of the 211-bp β-actin nuclear DNA fragment 42
from swabs of UV-treated bloodstain
4.5 The effect of water samples on UV-treated bloodstain 43
4.5.1 Analysis of 211-bp fragment size of β-actin gene 44
4.5.2 Analysis of 289 bp fragment size of β-actin gene 49
(Primer Pig_F1 and Pig_R2)
4.5.3 Analysis of 289 bp fragment size of β-actin gene 55
(Primer Pig_F2 and Pig_R3)
4.5.4 Analysis of 366 bp fragment size of β-actin gene 61

V DISCUSSIONS 68
VI CONCLUSIONS AND SUGGESTIONS 75
REFERENCES 77
APPENDIX 88
BIOGRAPHY 90

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เนื้อหา หน้าถาม-ตอบ iiiนามธรรม ivรายการตาราง ixรายการตัวเลขสิรายการคำย่อ xviบท ผมแนะนำ 11.1 บทนำ 11.2 วัตถุประสงค์ 2 การทบทวนวรรณกรรม II 3 2.1 ชุดและทางชีวภาพการอนุรักษ์หลักฐาน 3 2.2 เก็บรวบรวมและเก็บรักษาเลือดหลักฐาน 5 2.3 นิติเวชวิเคราะห์ DNA 6 2.3.1 นิติเวชบุคคลรหัส 6 2.3.2 นิติเวชไม่ใช่มนุษย์รหัส 13 2.3.2.1 mitochondrial DNA (mtDNA) 14 2.3.2.2 คลอโรพลาสต์ DNA 15 2.3.2.3 ดีเอ็นเอนิวเคลียร์ 15 2.3.3 การขั้นตอนในการวิเคราะห์ทางนิติวิทยาศาสตร์ในดีเอ็นเอ 16 2.3.3.1 รวบรวมหลักฐาน DNA 16 2.3.3.2 ดีเอ็นเอแยกจาก 16 2.3.3.3 นับวิธีในทางนิติวิทยาศาสตร์ 18พิมพ์ดีเอ็นเอ 2.3.3.4 ขยาย loci พันธุจะ กล่าวถึง 19 2.3.3.5 การวิเคราะห์ดีเอ็นเอเอาต์ 20 2.3.3.6 allele ตี 21 2.3.4 การออกใช้ในการวิเคราะห์ดีเอ็นเอทางนิติวิทยาศาสตร์ 22 viiเนื้อหา (CONT)หน้า2.3.4.1 ดีเอ็นเอเสื่อมโทรม 22 2.3.4.2 PCR ยับยั้ง 22 2.3 วิเคราะห์ดีเอ็นเอช่วง 232.4 วิธีการสร้างดีเอ็นเอเทียม 24 2.4.1 sonication 24 2.4.2 แสง UV 24 2.4.3 เอนไซม์ DNase 25 2.4.4 ต่าง ๆ 25 2.5 คุณภาพน้ำ 26 วัสดุ III และวิธี 283.1 น้ำชนิดเตรียม 28 3.2 วัดนำ pH และอุณหภูมิ 29 3.3 เตรียมตัวอย่างเลือด 293.4 สกัดดีเอ็นเอ โดยชุดมินิดีเอ็นเอ QIAamp ® 29 (Qiagen เยอรมนี)3.5 ดีเอ็นเอนับ 30 3.5.1 เครื่องทดสอบกรดด่างยูวีวิ 30 3.5.2 ภาพผลผลิตเจล 303.6 ปฏิกิริยาลูกโซ่พอลิเมอเรส 30 3.6.1 พื้นคู่ 30 3.6.2 Thermocycling ปฏิกิริยา 313.7 Agarose เจ electrophoresis 32 ผล IV 344.1 การวัด pH และนำน้ำตัวอย่าง 344.2 ผลของตัวอย่างน้ำไม่ถูกรักษา bloodstains 35 4.2.1 ขยายของ 211-bp β-แอกติน 35 นิวเคลียร์ส่วนดีเอ็นเอ4.2.2 ขยายของ 366-bp β-แอกติน 36 นิวเคลียร์ส่วนดีเอ็นเอ viiiเนื้อหา (CONT)หน้า4.3 การทดสอบผลของกระเป๋าถือมากกว่า PCR inhibitors ในน้ำ 38 ตัวอย่างหลังจากการสกัดดีเอ็นเอและทำให้บริสุทธิ์ 4.4 ขยายของ 211-bp β-แอกตินนิวเคลียร์ดีเอ็นเอส่วน 42 จาก swabs bloodstain รับ UV 4.5 ผลของน้ำตัวอย่างถือว่า UV bloodstain 43 4.5.1 วิเคราะห์ขนาด 211-bp ส่วนของยีนβ-แอกติน 44 4.5.2 การวิเคราะห์ขนาด 289 bp ส่วนของยีนβ-แอกติน 49 (รองพื้น Pig_F1 และ Pig_R2) 4.5.3 การวิเคราะห์ขนาด 289 bp ส่วนของยีนβ-แอกติน 55 (รองพื้น Pig_F2 และ Pig_R3) 4.5.4 การวิเคราะห์ขนาด 366 bp ส่วนของยีนβ-แอกติน 61 สนทนา V 68 วีบทสรุปและข้อเสนอแนะ 75อ้างอิง 77ภาคผนวก 88ประวัติ 90

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สารบัญ
หน้า
กิตติกรรมประกาศ iii
บทคัดย่อ iv
ของตาราง ix
ของตัวเลขจิ
รายการย่อเจ้าพระยา
บทที่
ฉันบทนำ 1
บทนำ 1.1 1
1.2 วัตถุประสงค์ 2
ครั้งที่สองทบทวนวรรณกรรม 3
2.1 การเก็บรวบรวมและเก็บรักษาหลักฐานทางชีวภาพ 3
2.2 การเก็บและการเก็บรักษาหลักฐานเลือด 5
2.3 การวิเคราะห์ดีเอ็นเอนิติเวช 6
2.3.1 นิติวิทยาศาสตร์ระบุตัวตนของมนุษย์ 6
2.3.2 นิติวิทยาศาสตร์ประจำตัวประชาชนที่ไม่ใช่มนุษย์ 13
2.3.2.1 ยลดีเอ็นเอ (mtDNA) 14
2.3.2.2 คลอโรดีเอ็นเอ 15
2.3.2.3 นิวเคลียร์ดีเอ็นเอ 15
2.3.3 ขั้นตอนในการวิเคราะห์ดีเอ็นเอทางนิติวิทยาศาสตร์ 16
2.3.3.1 หลักฐานดีเอ็นเอคอลเลกชัน 16
2.3.3.2 การสกัดดีเอ็นเอจากตัวอย่าง 16
2.3.3.3 วิธีการในปริมาณ 18 นิติวิทยาศาสตร์
ดีเอ็นเอพิมพ์
2.3.3.4 ขยายตำแหน่งทางพันธุกรรมที่จะตรวจสอบ 19
2.3.3.5 การวิเคราะห์ดีเอ็นเอขยาย 20
2.3.3.6 ศาสตร์การตีความ 21
2.3 4 ฉบับในการวิเคราะห์ดีเอ็นเอทางนิติวิทยาศาสตร์ 22
vii
สารบัญ (ต่อ.)
หน้า
2.3.4.1 เสื่อมโทรมดีเอ็นเอ 22
2.3.4.2 การยับยั้ง PCR 22
​​2.3 การวิเคราะห์ดีเอ็นเอสุกร 23
2.4 วิธีการย่อยสลายดีเอ็นเอประดิษฐ์ 24
2.4.1 Sonication 24
2.4.2 แสงยูวี 24
2.4 3 เอนไซม์ DNase 25
2.4.4 วิธีการอื่น ๆ 25
2.5 คุณภาพน้ำ 26
III วัสดุและวิธีการ 28
3.1 การเตรียมน้ำชนิด 28
3.2 การนำไฟฟ้า, ค่าพีเอชและการวัดอุณหภูมิ 29
3.3 การเตรียมสารตัวอย่างเลือด 29
3.4 การสกัดดีเอ็นเอจาก QIAamp DNA มินิkit® 29
(Qiagen, เยอรมนี)
3.5 ปริมาณดีเอ็นเอ 30
3.5.1 spectrophotometer UV-VIS 30
3.5.2 ผลผลิตเจล 30
3.6 ปฏิกิริยาลูกโซ่โพลิเมอร์ 30
3.6.1 คู่ไพรเมอร์ 30
3.6.2 Thermocycling ปฏิกิริยา 31
3.7 ข่าวคราว Agarose 32
IV ผล 34
4.1 การวัดค่า pH และ การนำของตัวอย่างน้ำ 34
4.2 ผลของตัวอย่างน้ำบนคราบเลือดได้รับการรักษา 35
4.2.1 การขยายของ 211 bp-β-โปรตีนนิวเคลียร์ 35
ชิ้นดีเอ็นเอ
4.2.2 ขยายของ 366 bp-β-โปรตีนนิวเคลียร์ 36
ชิ้นดีเอ็นเอviii สารบัญ ( ต่อ.) หน้า4.3 การทดสอบผลกระทบของการดำเนินการเกินสารยับยั้ง PCR ในน้ำ 38 ตัวอย่างหลังจากการสกัดดีเอ็นเอและการทำให้บริสุทธิ์4.4 ขยายของชิ้นดีเอ็นเอนิวเคลียร์β-โปรตีน 211 bp-42 จาก swabs คราบเลือดของรังสียูวีที่ได้รับผลกระทบจาก 4.5 ตัวอย่างน้ำ บนคราบเลือดที่ได้รับรังสียูวี 43 4.5.1 การวิเคราะห์-211 bp ขนาดส่วนของยีนβ-โปรตีน 44 4.5.2 การวิเคราะห์ขนาด 289 bp ส่วนของยีนβ-โปรตีน 49 (Primer Pig_F1 และ Pig_R2) 4.5.3 การวิเคราะห์ 289 bp ขนาดส่วนของβ-55 โปรตีนยีน(Primer Pig_F2 และ Pig_R3) 4.5.4 การวิเคราะห์ขนาด 366 bp ส่วนของβ-ยีนโปรตีน 61 V 68 การอภิปรายVI ข้อสรุปและข้อเสนอแนะ 75 อ้างอิง 77 ภาคผนวก 88 ชีวประวัติ 90

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เนื้อหา

3
4 หน้ากิตติกรรมประกาศบทคัดย่อสารบัญตาราง 9

รายชื่อร่างของซี
รายชื่ออักษรย่อ XVI

ผมแนะนำบทที่ 1 บทนํา 1

1.1 1.2 วัตถุประสงค์ 2
3
2.1 2 การทบทวนวรรณกรรมการเก็บและรักษาหลักฐานทางชีวภาพ 3
2.2 การเก็บและรักษาเลือด หลักฐาน 5
2.3 การวิเคราะห์ดีเอ็นเอ นิติเวช 6
2.3.1 นิติเวชระบุมนุษย์ 6
2.32 นิติมนุษย์รหัส 13
2.3.2.1 ยลดีเอ็นเอ ( แสดง ) 14
2.3.2.2 คลอโรพลาสต์ดีเอ็นเอดีเอ็นเอนิวเคลียร์ 15 2.3.2.3 15

2.3.3 ขั้นตอนในการวิเคราะห์ดีเอ็นเอทางนิติเวช 16
2.3.3.1 หลักฐานดีเอ็นเอคอลเลกชัน 16
2.3.3.2 การสกัดดีเอ็นเอจากตัวอย่าง 16
2.3.3.3 ปริมาณวิธีการทาง 18

2.3.3.4 ขยายในรูปแบบดีเอ็นเอของยีนที่จะถูกตรวจสอบ 19
20
2.3.3.5 การวิเคราะห์ของแถบดีเอ็นเอในการตีความ 2.3.3.6 21
2.3.4 ปัญหาในการวิเคราะห์ดีเอ็นเอ นิติเวช 22
7
สารบัญ ( ต่อ ) หน้า

2.3.4.1 สลายดีเอ็นเอ 22
2.3.4.2 PCR ยับยั้ง 22
2.3 จากการวิเคราะห์ดีเอ็นเอ 23

วิธีการสลายดีเอ็นเอ 2.4 เทียม 24 เครื่องมือกำจัดเพื่อย้าย 24
sonication 2.4.2 แสง UV 24

2.4.4 2.4.3 ตรวจหา ADNase เอนไซม์ 25 25
วิธีการอื่น ๆ น้ำ 2.5 คุณภาพ 26
3
ประเภทวัสดุและวิธีการ 28 น้ำ 3.1 การเตรียม 28
32 ค่า pH และอุณหภูมิการวัด 29 ตัวอย่างการเตรียมเลือด 29

3.3 3.4 การสกัดดีเอ็นเอจาก qiaamp ดีเอ็นเอมินิ ชุด® 29
( เพิ่ม , เยอรมนี )
3
: ดีเอ็นเอปริมาณ 30 เหล็กวัสดุ 30
3.5.2 ผลผลิตเจล 30
3.6 โดยปฏิกิริยาลูกโซ่ 30
3.6.1 ไพรเมอร์คู่ 30

31 3.7 3.6.2 ปฏิกิริยาเทอร์โมไซคลิงเจลอิเล็กโตรโฟรีซิส 32 34

4 ผล 41 การวัด pH และนำตัวอย่างน้ำ 34
4.2 ผลของตัวอย่างน้ำ และรอยเลือดบน 35
4.2.1 ขยายของ 211 bp บีตา - actin นิวเคลียร์ดีเอ็นเอ 35

4.2.2 แบบ 366 bp บีตา - actin นิวเคลียร์ดีเอ็นเอ 36

8
สารบัญ ( ต่อ ) หน้า

4.3 ทดสอบ ผลของวิธี PCR และการแบกข้ามน้ำ 38
ตัวอย่างหลังจากการสกัดดีเอ็นเอและฟอก
44 ( 211 bp ของบีตา - actin นิวเคลียร์ดีเอ็นเอจาก 42
จาก UV รักษารอยเลือด
4.5 ผลของตัวอย่างน้ำในยูวีรักษารอยเลือด 43
4.5.1 การวิเคราะห์ 211 bp ส่วนขนาดของยีนบีตา - actin 44
การการวิเคราะห์ 289 BP ส่วนขนาดของยีนบีตา - actin 49
( pig_f1 ไพรเมอร์ และ pig_r2 )
4.5.3 การวิเคราะห์ 289 BP ส่วนขนาดของยีนบีตา - actin 55

( pig_f2 และรองพื้น pig_r3 )4.5.4 การวิเคราะห์ 366 bp ส่วนขนาดของยีนบีตา - actin 61

V
6 ข้อสรุปและข้อเสนอแนะการสนทนา 68 75


ชีวประวัติภาคผนวกอ้างอิง 77 88 90