2.3. Column and thin layer chromatography
The dialysed material was once again centrifuged
and then purified by ion-exchange chromatography
on DEAE-cellulose. Elution was carried
out with phosphate buffer (pH 7.0) using a linear
concentration gradient of 0.02–0.35 M. The measurementsof extinction in the eluent were taken in
the range of 300–800 nm using a Model 203
‘Spectrimom’ spectrophotometer.
Carotenoids were liberated from carotenoproteins
with acetone according to the procedure of
Shone et al. (1979). Using thin-layer chromatography,
the prosthetic group of carotenoproteins, the
ketocarotenoids were identified. The extracted
carotenoid alone was analysed or admixed with a
ketocarotenoid (canthaxanthin and asthaxanthin)
standard (Hoffman La Roche, Basle, Switzerland
and Sigma, USA). Individual pigments were identified
based on their separation on (a) thin-layer
chromatography, which was carried out on silica
gel-G supported on 20=20 cm glass plate in a
pre-saturated chamber; the solvent system consisted
of 15% acetone in petroleum ether as outlined
by Zagalsky et al. (1967); (b) based on their
partition between hexane and 95% methanol; and
(c) the mass spectrum of end groups (Wetter et
al., 1971).
2.4. Amino acid analyses
For analysing the amino acid composition, carotenoprotein
complexes were prepared according
to the methods described by Zagalsky et al.
(1967). The samples were hydrolysed for 36 h at
110 8C. Amino acids were separated in a twocolumn
system using a JEOL JLC-6 AH automatic
amino acid analyser under standard conditions
(JEOL Instruction, Tokyo).
The columns were filled with ICR-2 resin and
the separation temperature was maintained at 52
8C. For the analyses, 0.8 ml samples were injected
and the flow rate of the solvent (buffer solutions)
was programmed to 25.2 mlyh and for the ninhydrine
dye at 12.6 mlyh as outlined by Czeczuga
and Czeczuga-Semeniuk (1998). Alkaline amino
acids (Lys, His, Arg) were separated in an 8=150
mm column using 0.35 N sodium–citrate buffer
solution (pH 5.28) as mobile phase under a pressure
of approximately 8 atm.
Acidic and neutral amino acids were separated
on a 8=500 mm column in buffer solution No. 2:
0.2 N sodium–citrate at pH 4.2 under a pressure
of approximately 20 atm. Standard amino acid
solutions were obtained from Pierce Biotechnology
Inc., USA. By comparing the retention time (Rt)
with the standard amino acid run at identical
conditions, the amino acids present in the sample
were identified and total amino acid content was
2.3. Column and thin layer chromatographyThe dialysed material was once again centrifugedand then purified by ion-exchange chromatographyon DEAE-cellulose. Elution was carriedout with phosphate buffer (pH 7.0) using a linearconcentration gradient of 0.02–0.35 M. The measurementsof extinction in the eluent were taken inthe range of 300–800 nm using a Model 203‘Spectrimom’ spectrophotometer.Carotenoids were liberated from carotenoproteinswith acetone according to the procedure ofShone et al. (1979). Using thin-layer chromatography,the prosthetic group of carotenoproteins, theketocarotenoids were identified. The extractedcarotenoid alone was analysed or admixed with aketocarotenoid (canthaxanthin and asthaxanthin)standard (Hoffman La Roche, Basle, Switzerlandand Sigma, USA). Individual pigments were identifiedbased on their separation on (a) thin-layerchromatography, which was carried out on silicagel-G supported on 20=20 cm glass plate in apre-saturated chamber; the solvent system consistedof 15% acetone in petroleum ether as outlinedby Zagalsky et al. (1967); (b) based on theirpartition between hexane and 95% methanol; and(c) the mass spectrum of end groups (Wetter etal., 1971).2.4. Amino acid analysesFor analysing the amino acid composition, carotenoproteincomplexes were prepared accordingto the methods described by Zagalsky et al.(1967). The samples were hydrolysed for 36 h at110 8C. Amino acids were separated in a twocolumnsystem using a JEOL JLC-6 AH automaticamino acid analyser under standard conditions(JEOL Instruction, Tokyo).The columns were filled with ICR-2 resin andthe separation temperature was maintained at 528C. For the analyses, 0.8 ml samples were injectedand the flow rate of the solvent (buffer solutions)was programmed to 25.2 mlyh and for the ninhydrinedye at 12.6 mlyh as outlined by Czeczugaand Czeczuga-Semeniuk (1998). Alkaline aminoacids (Lys, His, Arg) were separated in an 8=150mm column using 0.35 N sodium–citrate buffersolution (pH 5.28) as mobile phase under a pressureof approximately 8 atm.Acidic and neutral amino acids were separatedon a 8=500 mm column in buffer solution No. 2:0.2 N sodium–citrate at pH 4.2 under a pressureof approximately 20 atm. Standard amino acidsolutions were obtained from Pierce BiotechnologyInc., USA. By comparing the retention time (Rt)with the standard amino acid run at identicalconditions, the amino acids present in the samplewere identified and total amino acid content was
การแปล กรุณารอสักครู่..

2.3 คอลัมน์โครมาโตกราฟีผิวบาง
วัสดุ dialysed อีกครั้งที่ระดับแล้ว บริสุทธิ์ โดยการแลกเปลี่ยนไอออน chromatography
บน DEAE เซลลูโลส ได้มาอุ้ม
ด้วยฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 ) โดยใช้เส้นไล่ระดับความเข้มข้น 0.02 0.35 m (
measurementsof การสูญพันธุ์ในตัวถ่าย
ช่วง 300 - 800 nm ใช้รุ่น 203
' ' spectrimom เตอร์
คาโรทีนอยด์ถูกปลดปล่อยจาก carotenoproteins
ด้วยอะซิโตน ตามขั้นตอนของ
ส่อง et al . ( 1979 ) การใช้เทคนิค TLC พบกลุ่มเทียมของ carotenoproteins
, ,
ketocarotenoids ระบุ . สกัดแคโรทีนอยด์คนเดียว
วิเคราะห์หรือผสมกับ ketocarotenoid ( แคนทาแซนทิน และ asthaxanthin )
มาตรฐาน ( ฮอฟแมน ลา โรเช่ ,และ basle สวิตเซอร์แลนด์
Sigma , USA ) สีแต่ละตัวระบุ
ตามแยกของพวกเขา ( A )
1 เครื่อง ซึ่งพบว่าใน gel-g ซิลิกา
รองรับใน 20 = 20 ซม. จานแก้วใน
ก่อนห้องอิ่มตัว ; ระบบตัวทำละลาย )
15 % ) ในปิโตรเลียมอีเทอร์ตามที่ระบุ
โดย zagalsky et al . ( 1967 ) ; ( b ) ตาม
กั้นระหว่างเฮกเซนและ 95 % เมทานอล ;
( C ) และมวลสเปกตรัมของกลุ่ม ( Wetter et
al . , 1971 ) .
2.4 . กรดอะมิโนการวิเคราะห์
เพื่อวิเคราะห์องค์ประกอบกรดอะมิโน carotenoprotein
เชิงซ้อนเตรียมตามวิธีการที่อธิบายโดย zagalsky et al .
( 1967 ) จำนวนที่พบ 36 H
110 8C กรดอะมิโนแยกในระบบ twocolumn
ใช้จอล jlc-6 อ้าอัตโนมัติกรดอะมิโนภายใต้เงื่อนไขมาตรฐาน
( Jeol สอน , โตเกียว ) .
คอลัมน์ที่เต็มไปด้วย icr-2 เรซินและ
แยกอุณหภูมิไว้ที่ 52
8C สําหรับการวิเคราะห์ , 0.8 ml จำนวนฉีด
และอัตราการไหลของสารละลาย ( สารละลายบัฟเฟอร์ )
ถูกโปรแกรม ให้สามารถ mlyh และสำหรับ ninhydrine
ย้อมที่ 12.6 mlyh ตามที่ระบุโดย czeczuga
czeczuga และเซเมเนียก ( 1998 )อะมิโนกรดด่าง
( Lys ของเขา , arg ) ถูกแยกเป็น 8 คอลัมน์โดยใช้ 0.35 มม. = 150
n โซเดียมซิเตรทบัฟเฟอร์ pH และโซลูชั่น 5.28 ) เป็นเฟสเคลื่อนที่ภายใต้ความดันประมาณ 8 ตู้
.
กรดเป็นกลาง และกรดอะมิโนแยก
ที่ 8 = 500 มม. คอลัมน์ในบัฟเฟอร์ วิธีที่ 2 :
2 N โซเดียมซิเตรตและที่ pH 4.2 ภายใต้ความดัน
ประมาณ 20 ATM กรดอะมิโนมาตรฐาน
โซลูชั่นที่ได้จากการแทงเทคโนโลยีชีวภาพ
อิงค์ สหรัฐอเมริกา โดยการเปรียบเทียบความคงทนในการจำ เวลา ( RT )
กับกรดอะมิโนมาตรฐานใช้ในเงื่อนไขที่เหมือนกัน
, กรดอะมิโนที่มีอยู่ในตัวอย่าง
ถูกระบุและปริมาณกรดอะมิโนรวม คือ
การแปล กรุณารอสักครู่..
