Materials and MethodsThis in vitro

Materials and Methods
This in vitro invertigation was carried out order controlled laboratory condition at the Faculty of Agriculture ,Khon Kean University ,Khon kean ,Thailand during July 1999 to March 2000. The experimental design being used was a split plot design arranged in CRD with four replications. The main plot consisted of two cultivars of yard long bean, i.e. white seeded and KKU 25. A number of glass test tubes of 32units were used for four subplot management, each contained the same amount of sterilized coarse sand particles. The four subplot managements being used were :
1. Control, (the experimental test tubes were added with 70 ppm of nitrogen solution).
2. Non-managed treatment (the tubes were added with 1 ml of native yard long bean Rhizobium derived from soil where yard long bean plants had been grow continuously for two years at the dilution rate of 10)
3. Test tubes filled with materials as that of the management number 2 plus one seedling of white seeded yard long bean for each test tube.
4. Test tubes were filled with materials similar to that of themanagement number 2 plus one seedling of KKU 25 yard long bean cultivar for test tube.
The seedling being used were germinated in a separated plate at room temperature. All test tubes being used were sterilized before use and the plant seedling of yard long bean were suppllied with N free modified solution of long Ashton nutrient solution throughout The experimental period(Summer field et al.,1977). All experimental test tubes were fitted with test tube stands and they were placed in an environmental growth chamber where
humidity, light and tempereture had been controlled. The plants in all test tubes were allowed to grow for 60 days whilst other test tubes with or without yard long bean plants were completely enclosed. Within this period, management methods applied, i.e. rhizobial population of all test tubes were determined at day 1,30 and 60 after planting using MPN plant infection technique (Fisher and Yates , 1963). At 60 days after emergence , all yard long bean plants were removed from the test tubes then sterilized seedlings of both yard long bean cultivars were planted into all test tubes and allwed to grow again in growth chamber(14 and10 hours day and night within a day , respectively) with the application of nutrient solution as did with first period of management method of both yard long bean cultivars. The plants were allwed to grow for 60 days after planting. The cotyledons of seedling of both sets of plants were removed before transplanting as that stated by Toomsan et al.(1984). At the last day of growing period (60 days), all yard long bean plants were removed from the test tubes and they were used for the determination of fresh weights, numbers of nodules and Rhizobium population/plant. The obtained data were statistically analyzed using Duncan's Multiple Range Test(DMRT)with the application
of MSTST-C computer programme (Nissen , 1988)

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัสดุและวิธีการInvertigation ในนี้ถูกดำเนินสั่งควบคุมห้องปฏิบัติเงื่อนไขที่คณะเกษตร มหาวิทยาลัยขอนแก่น ขอนแก่น ประเทศไทยในช่วงเดือนกรกฎาคมปี 1999 ถึง 2000 มีนาคม การออกแบบการทดลองที่ใช้เป็นแบบแผนแยกที่จัดใน CRD โดยระยะ 4 พล็อตหลักประกอบด้วยสองพันธุ์ยาวถั่ว สีขาวเช่น seeded และ 25 การประชุม จำนวนหลอดทดสอบของ 32units ถูกใช้สำหรับการบริหาร subplot สี่ แต่ละประกอบด้วยจำนวน sterilized หยาบทรายอนุภาคเดียวกัน ทีมงานบริหาร subplot สี่ที่ใช้ได้:1. ควบคุม, (การทดลองทดสอบหลอดเพิ่มกับ 70 ppm ของไนโตรเจน)2. ไม่ใช่จัดการรักษา (หลอดเพิ่ม ด้วย 1 ml ของถั่วยาวเป็นหลาไรโซเบียมที่มาจากดินซึ่งพืชถั่วหลามีการเติบโตอย่างต่อเนื่องสำหรับสองปีที่อัตราการเจือจาง 10)3. หลอดทดสอบเต็มไป ด้วยวัสดุเป็นที่แหล่งเลข 2 บวกหนึ่งจัดการของถั่วขาว seeded หลาสำหรับแต่ละหลอดทดสอบ4. หลอดทดสอบเต็มไป ด้วยวัสดุที่คล้ายกับที่ของ themanagement หมายเลข 2 บวกหนึ่งแหล่งประชุม 25 หล้า cultivar ถั่วสำหรับหลอดทดสอบแหล่งที่ใช้มีเปลือกงอกในจานแยกที่อุณหภูมิห้อง หลอดทดสอบทั้งหมดที่ถูกใช้ถูก sterilized ก่อนใช้และแหล่งพืชของถั่วยาว suppllied กับ N ฟรีโซลูชันแก้ไขของยาวแอชตันธาตุอาหารตลอดระยะเวลาทดลอง (ร้อนฟิลด์ et al., 1977) หลอดทดสอบทดลองทั้งหมดถูกติดตั้งหลอดทดสอบยืน และจะถูกเก็บไว้ในหอเติบโตในสิ่งแวดล้อมที่มีการควบคุมความชื้น แสง และ tempereture พืชในหลอดทดสอบทั้งหมดได้รับอนุญาตให้ปลูก 60 วันในขณะที่หลอดทดสอบอื่น ๆ มี หรือไม่ มีพืชถั่วหลาได้อย่างสมบูรณ์อยู่ ระยะ วิธีจัดการใช้ การเช่น rhizobial ประชากรของหลอดทดสอบทั้งหมดถูกกำหนดใน 1,30 และ 60 หลังปลูกโดยใช้บริษัทเอ็มพีเอ็นพืชเทคนิคการติดเชื้อ (Fisher และเยตส์ 1963) ใน 60 วันนับจากวันเกิด พืชถั่วหลาทั้งหมดถูกลบออกจากหลอดทดสอบ แล้ว sterilized กล้าไม้ของทั้งสองพันธุ์ถั่วหลาถูกปลูกลงในหลอดทดสอบและ allwed จะเติบโตอีกครั้งในหอเจริญเติบโตทั้งหมด (14 and10 เวลากลางวันและกลางคืนภายในหนึ่งวัน ตามลำดับ) กับแอพลิเคชันของธาตุอาหารเป็นได้ ด้วยวิธีการจัดการของทั้งสองพันธุ์ถั่วหลาระยะแรก พืชถูก allwed เติบโต 60 วันหลังปลูก ออกก่อน transplanting cotyledons ของแหล่งของพืชทั้งสองชุดเป็นที่ระบุ โดย Toomsan et al.(1984) วันสุดท้ายของรอบระยะเวลาการเจริญเติบโต (60 วัน), พืชถั่วหลาทั้งหมดออกจากหลอดทดสอบ และพวกเขาใช้ในเรื่องของน้ำหนักสด จำนวน nodules และไรโซเบียมประชากร/โรงงาน ข้อมูลได้รับถูกวิเคราะห์ของดันแคนหลายช่วงทดสอบ (DMRT) ด้วยโปรแกรมประยุกต์ทางสถิติ ของโปรแกรมคอมพิวเตอร์ MSTST C (Nissen, 1988)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัสดุและวิธีการนี้ในหลอดทดลอง invertigation ได้ดำเนินการห้องปฏิบัติการควบคุมคำสั่งที่คณะเกษตรศาสตร์มหาวิทยาลัยขอนแก่น, ขอนแก่น, ไทยในช่วงเดือนกรกฎาคมปี 1999 ถึงเดือนมีนาคม 2000 การออกแบบการทดลองถูกนำมาใช้เป็นพล็อตการออกแบบแยกจัดใน CRD กับสี่ ซ้ำ
พล็อตหลักประกอบด้วยสองสายพันธุ์ของถั่วฝักยาวเช่นเมล็ดสีขาวและมหาวิทยาลัยขอนแก่น 25. จำนวนหลอดทดลองแก้ว 32units ถูกนำมาใช้สำหรับการจัดการสี่แผนแต่ละที่มีปริมาณที่เท่ากันของอนุภาคทรายหยาบผ่านการฆ่าเชื้อ สี่ผู้บริหารแผนถูกนำมาใช้เป็น:
1 ควบคุม (หลอดทดสอบทดลองเพิ่ม 70 ppm ของการแก้ปัญหาไนโตรเจน).
2 การรักษาที่ไม่ได้รับการจัดการ (หลอดที่ถูกเพิ่มเข้ามาด้วย 1 มิลลิลิตรลานพื้นเมืองถั่วฝักยาวไรโซเบียมที่ได้มาจากดินที่พืชหลาถั่วฝักยาวได้รับการเติบโตอย่างต่อเนื่องเป็นเวลาสองปีในอัตราเจือจาง 10)
3 หลอดทดสอบที่เต็มไปด้วยวัสดุที่เป็นที่ของการจัดการจำนวน 2 บวกหนึ่งต้นกล้าสีขาวลานเมล็ดถั่วยาวสำหรับแต่ละหลอดทดลอง.
4 หลอดทดสอบที่เต็มไปด้วยวัสดุที่คล้ายกับว่าจำนวน themanagement 2 บวกหนึ่งต้นกล้าของมหาวิทยาลัยขอนแก่น 25 หลาพันธุ์ถั่วฝักยาวสำหรับหลอดทดลอง.
ต้นกล้าถูกนำมาใช้ถูกงอกในแผ่นแยกที่อุณหภูมิห้อง ทุกหลอดทดลองถูกนำมาใช้ถูกฆ่าเชื้อก่อนที่จะใช้งานและต้นกล้าของพืชถั่วฝักยาวถูก suppllied กับการแก้ปัญหาการปรับเปลี่ยนไม่มีที่จอดรถของแอชตันสารละลายธาตุอาหารนานตลอดระยะเวลาการทดลอง (เขตฤดูร้อน et al., 1977) ทุกหลอดทดลองทดลองติดตั้งอัฒจันทร์หลอดทดลองและพวกเขาถูกวางไว้ในห้องการเจริญเติบโตทางด้านสิ่งแวดล้อมที่มีความชื้นแสงและ tempereture ได้รับการควบคุม
พืชในหลอดทดลองได้รับอนุญาตที่จะเติบโตเป็นเวลา 60 วันในขณะที่หลอดทดสอบอื่น ๆ ที่มีหรือไม่มีลานพืชถั่วฝักยาวถูกปิดล้อม ภายในช่วงเวลานี้วิธีการจัดการที่นำมาใช้คือประชากรไรโซเบียมของหลอดทดสอบทั้งหมดได้รับการพิจารณาในวันที่ 1,30 และ 60 หลังปลูกโดยใช้เทคนิคการติดเชื้อโรง MPN (ฟิชเชอร์และเยตส์ 1963) 60 วันหลังงอกลานพืชถั่วยาวทั้งหมดถูกลบออกจากหลอดทดลองแล้วต้นกล้าฆ่าเชื้อของสนามทั้งสองสายพันธุ์ถั่วฝักยาวที่ปลูกลงไปในหลอดทดลองและ allwed ที่จะเติบโตอีกครั้งในห้องการเจริญเติบโต (14 and10 ชั่วโมงวันและคืนภายในวัน ตามลำดับ) ด้วยการประยุกต์ใช้สารละลายธาตุอาหารเช่นเดียวกับช่วงแรกของวิธีการจัดการของสนามทั้งสองสายพันธุ์ถั่วฝักยาว พืชที่ถูก allwed ที่จะเติบโตเป็นเวลา 60 วันหลังปลูก ใบเลี้ยงของต้นกล้าของทั้งสองชุดของพืชที่ถูกถอดออกก่อนที่จะปลูกเป็นที่ที่ระบุไว้ตาม Toomsan et al. (1984) ในวันสุดท้ายของรอบระยะเวลาที่เพิ่มขึ้น (60 วัน), ลานพืชถั่วยาวออกจากหลอดทดลองและพวกเขาถูกนำมาใช้สำหรับการกำหนดของน้ำหนักสดจำนวนก้อนและไรโซเบียมประชากร / โรงงาน ข้อมูลที่ได้มาวิเคราะห์ทางสถิติโดยใช้การทดสอบหลายช่วงของดันแคน (DMRT)
กับการประยุกต์ใช้โปรแกรมคอมพิวเตอร์MSTST-C (Nissen, 1988)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัสดุและวิธีการในการ invertigation
นี้ดำเนินการเพื่อควบคุมภาพห้องปฏิบัติการ ที่คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น , ขอนแก่น , ไทย ช่วงเดือนกรกฎาคม 2542 ถึงมีนาคม 2543 ทดลองออกแบบการใช้ Split plot แบบจัดใน CRD มี 4 ซ้ำ พล็อตหลัก จำนวน 2 พันธุ์ถั่วฝักยาว ( เมล็ดสีขาวและ 25 มหาวิทยาลัยขอนแก่นจำนวนของกระจกหลอดทดลองของ 32units ใช้สี่จัดการนิด แต่ละที่มีจำนวนเดียวกันของการฆ่าเชื้ออนุภาคทรายหยาบ การจัดการการใช้สี่นิด :
1 ควบคุม , ทดสอบท่อเพิ่มด้วยสารละลายไนโตรเจน 70 ppm )
2ไม่จัดการรักษา ( ท่อเพิ่มด้วย 1 ml พื้นเมืองของถั่วฝักยาวไรโซเบียมถั่วฝักยาวดินที่ได้มาจากพืชที่ได้รับการเติบโตอย่างต่อเนื่องสำหรับสองปีในอัตราเจือจาง 10 )
3 หลอดทดลองที่เต็มไปด้วยวัสดุที่การจัดการหมายเลข 2 บวกหนึ่ง ต้นกล้าของเมล็ดสีขาวนามถั่วยาวแต่ละหลอด
4หลอดทดลองที่เต็มไปด้วยวัสดุที่คล้ายกับที่ของผู้บริหารหมายเลขสองบวกหนึ่ง ต้นกล้าของถั่วฝักยาวพันธุ์ มข. 25 หลอดทดลอง .
ต้นกล้าถูกใช้โดยแยกแผ่นในอุณหภูมิห้องทดสอบหลอดที่ใช้ฆ่าเชื้อก่อนใช้ และพืชเมล็ดถั่วฝักยาวเป็น suppllied ด้วยฟรีแก้ไขโซลูชั่นของแอชตันนานสารละลายตลอดระยะเวลาการทดลอง ( ซัมเมอร์ฟิลด์ et al . , 1977 ) หลอดทดสอบทั้งหมดถูกติดตั้งกับท่อยืนทดสอบและพวกเขาอยู่ในการเติบโตในสิ่งแวดล้อมที่ห้อง
ความชื้นแสงและ tempereture ถูกควบคุม พืชในหลอดทดลองทั้งหมดได้รับอนุญาตให้ปลูก 60 วัน ขณะที่หลอดทดสอบอื่น ๆที่มีหรือไม่มีถั่วฝักยาวปลูกล้อมรอบสมบูรณ์ . ภายในระยะเวลานี้ วิธีการจัดการที่ใช้ คือ ตำรับที่ประชากรของหลอดทดลองทั้งหมดได้รับการพิจารณาในวันที่ 1,30 60 หลังปลูกพืชโดยใช้เทคนิคการติดเชื้อ MPN ( ฟิชเชอร์และเยตส์ , 1963 )ที่ 60 วัน หลังงอก ถั่วฝักยาวเป็นพืชทั้งหมดถูกลบออกจากหลอดทดลอง แล้วฆ่าเชื้อต่างๆ ทั้งถั่วฝักยาวพันธุ์ปลูกในหลอดทดลองและ allwed เติบโตอีกครั้งในห้องการเจริญเติบโต ( 14 ชั่วโมงต่อวัน และคืนภายใน 10 วันตามลำดับ ) ด้วยการใช้สารละลายธาตุอาหารเป็นคาบแรกของวิธีการจัดการกับทั้งถั่วฝักยาวพันธุ์ พืชที่ถูก allwed ปลูก 60 วัน หลังปลูก ส่วนการแสดงออกของต้นกล้าของทั้งสองชุดของพืชออกก่อนปลูกตามที่ระบุ โดยเกิด et al . ( 1984 ) ในวันสุดท้ายของช่วง 60 วัน )ถั่วฝักยาวเป็นพืชทั้งหมดถูกลบออกจากหลอดทดลอง และนำมากำหนดน้ำหนักสด และตัวเลขของปมต่อประชากรพืช วิเคราะห์ข้อมูล โดยใช้ Duncan ' s Multiple Range Test ( วัตถุดิบในผลิตภัณฑ์อาหารว่าง ) พร้อมใบสมัคร
ของโปรแกรมคอมพิวเตอร์ mstst-c ( Nissen , 1988 )