protocolFifty 8 week-old male ICR m

protocolFifty 8 week-old male ICR mice were divided into five groups: (1)non-immunized and uninfected, (2) non-immunized and infected,(3) immunized with Freund’s adjuvant (Sigma–Aldrich, St Louis,MO, USA) and infected, (4) immunized with 50 g of rproFgCatL1mixed with Freund’s adjuvant and infected, (5) immunized with50 g of rmatFgCatL1 mixed with Freund’s adjuvant and infected.All mice were kept under normal condition as described previ-ously (Kueakhai et al., 2013b), and all experimental protocols wereapproved by The Animal Care and Use Committee (SCMU-ACUC),Faculty of Science, Mahidol University, Thailand. The adjuvantcontrol and rFgCatL1-vaccinated (rproFgCatL1 and rmatFgCatL1)groups were immunized three times at 2-week intervals by sub-cutaneous route. For the rFgCatL1 vaccinated groups, the firstimmunization used the recombinant proteins mixed with Freund’scomplete adjuvant, the first and the second boosts used the recom-binant proteins mixed with Freund’s incomplete adjuvant. Eachmouse was orally infected with 15 F. gigantica metacercariae at2 weeks after the second boost. Blood samples were taken at sixintervals, ie., prevaccination, 2 weeks after the first and secondimmunizations, infection, 2, and 4 weeks post infection. Four weeksafter infection, mice were anaesthetized with CO2inhalation andblood was taken by cardiac puncture, their peritoneal cavities wereopened and washed thoroughly with 0.85% NaCl solution. The liverswere immersed and minced in 0.85% NaCl solution, and the num-bers of worms were examined following a previously describedprotocol

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

protocolFifty อายุ 8 สัปดาห์เมาส์ ICR ชายถูกแบ่งออกเป็น 5 กลุ่ม: (1) ไม่ใช่ immunized และไม่ติด เชื้อ, (2) ไม่ใช่-immunized และ infected,(3) immunized กับ Freund ประเมินของ (Sigma-Aldrich, St Louis, MO สหรัฐอเมริกา) และ (4) การติดเชื้อ immunized 50 กรัมของ rproFgCatL1mixed กับ Freund's ประเมิน และการติดเชื้อ, (5) immunized with50 จี rmatFgCatL1 ผสมกับ Freund's ประเมิน และติดเชื้อ หนูทั้งหมดถูกเก็บไว้ภายใต้สภาวะปกติอธิบาย previ-ously (Kueakhai et al. 2013b), และ wereapproved ทดลองโพรโทคอทั้งหมดโดยการดูแลสัตว์คณะกรรมการใช้ (SCMU-ACUC), คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยมหิดล ไทย Adjuvantcontrol และ rFgCatL1 การฉีดวัคซีน (rproFgCatL1 และ rmatFgCatL1) กลุ่มที่ immunized สามครั้งในช่วงเวลา 2 สัปดาห์ โดยทางผิวหนังย่อย สำหรับกลุ่มฉีดวัคซีน rFgCatL1, firstimmunization ที่ใช้ recombinant โปรตีนผสมกับ Freund'scomplete ประเมิน แรกและบูสต์สองใช้โปรตีน recom binant ผสมกับของ Freund ประเมินไม่สมบูรณ์ วาจามีการติดเชื้อ Eachmouse กับ metacercariae การ gigantica F. 15 สัปดาห์ at2 หลังเพิ่มสอง ตัวอย่างเลือดที่ถ่ายที่ sixintervals, ie., prevaccination สัปดาห์ที่ 2 หลังจากครั้งแรก และ secondimmunizations ติด เชื้อ 2 และ 4 สัปดาห์ลงติดเชื้อ ติดเชื้อ weeksafter สี่ หนูมี anaesthetized กับ CO2inhalation andblood โดยเจาะหัวใจ wereopened ตนท้องผุ และล้างอย่างละเอียด ด้วย 0.85% NaCl โซลูชัน Liverswere การแช่ และเตรียม 0.85% NaCl โซลูชัน และ bers num ของหนอนได้ตรวจสอบไป describedprotocol ก่อนหน้านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

protocolFifty 8 สัปดาห์อายุหนู ICR ชายถูกแบ่งออกเป็นห้ากลุ่ม (1) ที่ไม่ได้รับวัคซีนและไม่ติดเชื้อ (2) ไม่ใช่วัคซีนและการติดเชื้อ (3) วัคซีนกับเสริม Freund ของ (Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA ) และการติดเชื้อ (4) วัคซีนกับ 50 กรัมของ rproFgCatL1mixed กับเสริม Freund และติดเชื้อ (5) วัคซีน with50? กรัม rmatFgCatL1 ผสมกับ Freund ของเสริมและ infected.All หนูถูกเก็บไว้ภายใต้สภาพปกติตามที่อธิบายไว้ previ-ously (Kueakhai et al., 2013b) และโปรโตคอลการทดลองทั้งหมด wereapproved โดยการดูแลสัตว์และการใช้คณะกรรมการ (SCMU-ACUC) คณะวิทยาศาสตร์มหาวิทยาลัยมหิดล adjuvantcontrol และ rFgCatL1 วัคซีน (rproFgCatL1 และ rmatFgCatL1) กลุ่มได้รับวัคซีนสามครั้งในช่วงเวลา 2 สัปดาห์โดยเส้นทางย่อยผิวหนัง สำหรับกลุ่ม rFgCatL1 การฉีดวัคซีนที่ firstimmunization ที่ใช้โปรตีนผสมกับ Freund'scomplete เสริมเป็นครั้งแรกและช่วยเพิ่มที่สองใช้โปรตีน RECOM-binant ผสมกับเสริมที่ไม่สมบูรณ์ของ Freund Eachmouse ติดเชื้อปากเปล่ากับ 15 เอฟ gigantica metacercariae สัปดาห์ AT2 หลังจากที่เพิ่มสอง ตัวอย่างเลือดถ่ายที่ sixintervals คือ. prevaccination 2 สัปดาห์หลังจากที่ครั้งแรกและ secondimmunizations การติดเชื้อ, 2, และ 4 สัปดาห์โพสต์ติดเชื้อ สี่ weeksafter ติดเชื้อหนูอสัญญีกับ CO2inhalation andblood ถูกยึดครองโดยเจาะหัวใจโพรงช่องท้องของพวกเขา wereopened และล้างให้สะอาดด้วย 0.85% วิธีการแก้ปัญหาโซเดียมคลอไรด์ liverswere แช่และสับใน 0.85% วิธีการแก้ปัญหาโซเดียมคลอไรด์และ Num-Bers ของเวิร์มมีการตรวจสอบต่อไปนี้ describedprotocol ก่อนหน้านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

protocolfifty เพศผู้อายุ 8 สัปดาห์หนูถีบจักร ICR แบ่งออกเป็นห้ากลุ่ม ( 1 ) ไม่ฉีดมาก่อนและ ( 2 ) ไม่ฉีดและติดเชื้อ ( 3 ) ได้รับ Freund เป็นผู้ช่วย ( Sigma ) Aldrich เซ็นต์หลุยส์ โม , USA ) และไวรัส ( 4 ) ได้รับ rprofgcatl1mixed Freund เป็น 50 กรัมด้วย ผู้ช่วยและติดเชื้อ ( 5 ) กลุ่ม with50 กรัม ผสมกับ rmatfgcatl1 Freund เป็นผู้ช่วย และติดเชื้อ หนูจะถูกเก็บไว้ภายใต้เงื่อนไขปกติตามที่อธิบายไว้ previ ously ( kueakhai et al . , 2013b ) , และโปรโตคอล wereapproved ทดลองโดยคณะกรรมการที่ดูแลสัตว์ และใช้ ( scmu-acuc ) , มหาวิทยาลัยมหิดล , ไทย . และที่ adjuvantcontrol rfgcatl1 วัคซีน ( และ rprofgcatl1 rmatfgcatl1 ) กลุ่ม immunized สามครั้งทุกช่วง 2 สัปดาห์ โดยย่อยร่วมเส้นทาง สำหรับ rfgcatl1 วัคซีนกลุ่ม firstimmunization ใช้โปรตีนรีคอมบิแนนท์ผสมกับ freund'scomplete เสริม แรกและสองพร้อมใช้ binant Recom โปรตีนผสมกับ ฟรานด์ก็ไม่สมบูรณ์ ผู้ช่วย eachmouse คือรับประทานติดเชื้อ 15 . ใช้เมตาเซอร์คาเรีย at2 สัปดาห์หลังจากเพิ่มสอง ตัวอย่างเลือดที่ถ่ายที่ sixintervals คือ . prevaccination 2 สัปดาห์แรก และ secondimmunizations , การติดเชื้อ , 2 และ 4 สัปดาห์หลังติดเชื้อ การติดเชื้อสี่ weeksafter , หนูให้ยาสลบโดยกับ co2inhalation พลาสมาถูกหัวใจของฟันผุและเจาะช่องท้อง wereopened ล้างให้สะอาดด้วยสารละลาย NaCl 0.85 % การ liverswere แช่ในสารละลาย NaCl และสับ 0.85 % และน้ำ bers ของหนอนมีวัตถุประสงค์ดังต่อไปนี้ describedprotocol ก่อนหน้านี้