2.2. Sampling and microscopyAt 3-da

2.2. Sampling and microscopy
At 3-day intervals, we collected samples for microscopic analysis
and preserved them immediately with 5% glutaraldehyde, v/v.
We used settling chambers and inverted phase-contrast microscopy
for phytoplankton identification (at least to the level of Genus)
and enumeration (Utermo¨ hl, 1958). Using 200 and 400 magnification,
between 20 and 40 fields of view were randomly selected
and counted, typically resulting in 200–300 units counted, where
a unit was an individual phytoplankton cell or a single colony/
filament. We used this same technique (Utermo¨ hl, 1958) for
microzooplankton identification and enumeration counting at least
for 100 individuals or the entire settled area. We categorized
microzooplankton into protozoa (separated into tintinnids and all
other protozoa), rotifers, and copepod nauplii and copepodids.
Adult copepods were visible to the naked eye in the incubators.
Therefore, counts of copepod adults were taken for the entire
incubator volume, but were not identified to species level. For
estimation of phytoplankton biomass, we measured in vivo fluorescence
every third day of unpreserved, unextracted water
samples using a Turner Designs 10-AU fluorometer (Pinto et al.,
2001). Microzooplankton and phytoplankton individual body
volumes were estimated by measuring dimensions of common
geometric shapes which best fit the shape of the individual

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2 การสุ่มตัวอย่าง และ microscopyในช่วงเวลา 3 วัน เรารวบรวมตัวอย่างการวิเคราะห์ด้วยกล้องจุลทรรศน์และรักษาได้ทันทีกับ 5% glutaraldehyde, v/vเราใช้ตกตะกอนหอ และกลับ microscopy ระยะความคมชัดรหัส phytoplankton (น้อยระดับของสกุล)และแจงนับ (Utermo¨ hl, 1958) ใช้อัตราส่วน 200 และ 400ระหว่าง 20 และ 40 เขตข้อมูลของมุมมองถูกสุ่มเลือกและตรวจ นับ ผล 200 – 300 หน่วยนับ ซึ่งโดยทั่วไปหน่วยมีการเซลล์ละ phytoplankton หรือโคโลนีเดี่ยว /ใย เราใช้เทคนิคเดียวกันนี้ (Utermo¨ hl, 1958)รหัส microzooplankton และแจงนับนับน้อย100 บุคคลหรือพื้นที่ชำระทั้งหมด เราแบ่งmicrozooplankton เป็นโพรโทซัว (แบ่งออกเป็น tintinnids และทั้งหมดอื่น ๆ โพรโทซัว), rotifers และ copepod nauplii และ copepodidsCopepods ที่ผู้ใหญ่มองเห็นตาเปล่าในการผลิตและได้ดังนั้น การตรวจนับของ copepod ผู้ใหญ่ที่ถ่ายสำหรับทั้งหมดบ่มเพาะวิสาหกิจเสียง แต่ไม่ได้ระบุระดับสายพันธุ์ สำหรับการประเมินของชีวมวล phytoplankton เราวัด fluorescence ในสัตว์ทดลองทุก ๆ สามวันน้ำ unpreserved, unextractedตัวอย่างการใช้เทอร์เนอร์ออก 10-อู fluorometer (Pinto et al.,2001) . Microzooplankton และ phytoplankton แต่ละตัวไดรฟ์ข้อมูลถูกประเมิน โดยการวัดขนาดของทั่วไปรูปทรงเรขาคณิตที่ดีที่สุดให้พอดีกับรูปร่างของแต่ละบุคคล

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2 การชักตัวอย่างและการใช้กล้องจุลทรรศน์
ในช่วงเวลา 3 วันเราเก็บตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ด้วยกล้องจุลทรรศน์
และการรักษาพวกเขาทันที 5% glutaraldehyde, v / v
เราใช้นั่งห้องและกลับกล้องจุลทรรศน์เฟสตรงกันข้าม
สำหรับประชาชนแพลงก์ตอนพืช (อย่างน้อยในระดับของประเภท)
และนับ (Utermo¨ hl 1958) โดยใช้ 200? และ 400? ขยาย
ระหว่าง 20 และ 40 สาขาในมุมมองที่ถูกสุ่มเลือก
และนับมักจะเกิดขึ้นใน 200-300 หน่วยนับที่
หน่วยเป็นเซลล์แพลงก์ตอนพืชแต่ละบุคคลหรือกลุ่มเดียว /
เส้นใย เราใช้เทคนิคเดียวกันนี้ (Utermo¨ hl 1958) สำหรับ
การระบุ microzooplankton และแจงนับอย่างน้อย
100 บุคคลหรือพื้นที่ตั้งรกรากอยู่ทั้งหมด เราแบ่ง
microzooplankton เป็นโปรโตซัว (แยกออกเป็น tintinnids และ
โปรโตซัวและอื่น ๆ ), โรติเฟอร์และโคพีพอดร์ทีเมียและ copepodids
โคพีพอดผู้ใหญ่ที่มองเห็นได้ด้วยตาเปล่าในตู้อบ
ดังนั้นข้อหาผู้ใหญ่โคพีพอดถูกนำสำหรับทั้ง
ปริมาณตู้ แต่ ไม่ได้ถูกระบุให้อยู่ในระดับสปีชีส์ สำหรับ
ประมาณการของแพลงก์ตอนพืชชีวมวลที่เราวัดการเรืองแสงในร่างกาย
ทุกวันที่สามของ unpreserved น้ำ unextracted
ตัวอย่างโดยใช้เทอร์เนอแบบที่ 10-AU fluorometer (ม้าลาย et al.,
2001) Microzooplankton และแพลงก์ตอนพืชร่างกายของแต่ละบุคคล
ปริมาณประมาณโดยการวัดขนาดของธรรมดา
รูปทรงเรขาคณิตที่ดีที่สุดเหมาะกับรูปร่างของแต่ละบุคคล

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . ตัวอย่างและการใช้กล้องจุลทรรศน์ในช่วงเวลา 3 วัน

เราได้เก็บตัวอย่างเพื่อการวิเคราะห์ด้วยรักษาพวกเขาทันที 5 % glutaraldehyde , V / V .
เราใช้จ่ายเงินห้องคว่ำสำปั้นกล้องจุลทรรศน์
ชนิดแพลงก์ตอนพืช ( อย่างน้อยในระดับสกุล ) และ ( utermo
แจงตั้ง HL , 1958 ) ใช้  200 และ 400  ขยาย
,ระหว่าง 20 และ 40 ไร่วิวสุ่ม
นับมักจะเป็นผลใน 200 – 300 หน่วยนับที่หน่วยเป็นแพลงก์ตอนพืช
แต่ละเซลล์หรือเส้นใยโคโลนี /
โสด เราใช้เทคนิคเดียวกันนี้ ( utermo ตั้ง HL , 1958 ) การแจงนับและ microzooplankton

อย่างน้อย 100 บุคคลหรือทั้งจัดการพื้นที่ เราแบ่ง
microzooplankton เป็นโปรโตซัว ( แยกเป็น tintinnids และทั้งหมดอื่น ๆ (
) , โรติเฟอร์ และ nauplii และสัตว์ copepodids .
โคพิปอดผู้ใหญ่ถูกมองเห็นได้ด้วยตาเปล่าในตู้ฟักไข่ .
ดังนั้นนับจากผู้ใหญ่เขตถ่ายหาปริมาตรตู้ทั้งหมด
, แต่ไม่ได้ระบุชนิดระดับ สำหรับการประมาณค่ามวลชีวภาพของแพลงก์ตอนพืช

เราวัดได้ในสิ่งมีชีวิตเรืองแสงทุก 3 วัน unpreserved unextracted , น้ำ
ตัวอย่างโดยใช้เทอร์เนอร์การออกแบบ 10-au ฟลู โรมิเตอร์ ( ปิ่นโต et al . ,
2001 ) microzooplankton และปริมาณแพลงก์ตอนพืชร่างกาย
บุคคลประมาณโดยการวัดมิติของรูปทรงเรขาคณิตที่พบ
ที่ดีที่สุดเหมาะสมกับรูปร่างของแต่ละบุคคล