DiscussionIt has been shown that pi

Discussion
It has been shown that pituitary hormones play important roles in fish embryonic development and larval growth (Majumdar and Elsholtz, 1994; Tanaka et al., 1995). Ontogenetic studies of pituitary cells in freshwater and seawater teleost species revealed that the onset of their activity varied among species and cell types. In larvae of O. niloticus, as in other teleost fish,GH cells were restricted to the dorsal and ventral parts of PPD (Farbridge and Leatherland, 1986; Folle´nius et al., 1978;Segura-Noguera et al., 2000; Laiz-Carrı´on et al., 2003). Labelled
GH cells first appeared clearly at 1 day post-hatching. Regarding freshwater fishes, GH cells were evident before hatching (Mal et al., 1989; Naito et al., 1993; Saga et al., 1993). In C. gariepinus,GH cells were visible from hatching time and GH is active at the very early stages of development (Volckaert et al.,1999). However, in the cichlid fish C. dimerus,GHcells were detected 2 days after hatching (Pandolfi et al., 2001).
The physiological role of GH as a growth-promoting hormone has been well established (Pe´rez-Sa´ nchez and Le Bail,1999; Cao et al., 2011). It seems likely that in freshwater teleosts GH appears early than in seawater teleost, thus indicating a putative role of this hormone in mbryonic and larval development (Pandolfi et al., 2001; Einarsdo´ ttir et al., 2007). In the
present study, the number and immunoreactivity of GHsecreting cells increased with larval development. Similarly,the pituitary GH content was increased proportionally to increase larval weight from first feeding to metamorphic climax in Atlantic halibut (Einarsdo´ ttir et al., 2007).
The present study examined the effects of exogenous treatment of O. niloticus females with L-thyroxin (T4) on the ontogeny and activation of GH-secreting cells during larval development, and its subsequent effect on larval growth and survival. The injection of females O. niloticus with thyroxin (1 or 10 lg T4/g BW) greatly enhanced the immunoreactivity of GH-secreting cells in the pituitary gland of larvae as indicated by the quantitative and qualitative changes during the rearing period for the larvae produced from T4-treated females.Similar observation indicated that thyroid hormone (T3) has increased the steady state levels of growth hormone messenger RNA in pituitary cells of carp (Farchi-Pisanty et al., 1995). Also, treatment of young rainbow trout
(Oncorhynchus mykiss) fish for one week with thyroid hormone (T3) (3,3’,5-triiodo-L-thyronine) increased the steady state levels of mRNA for growth hormone in the pituitary 3-4 times as
compared to the control groups (Moav and McKeown, 1992).
Thus, the treatment with L-thyroxin (T4; 1 or 10 lgT4/g BW)accelerated larval growth, since a higher increase in both, length and weight of larvae occurred during the experimental period.
This may be due to the direct effect of exogenous thyroxin,which transferred from maternal circulation into oocytes and larvae, on the synthesis of growth hormone (the present study)
and activin bA (Mousa, 2004). Treated larvae gave also a significantly higher survival rate than that of the control. In similar manner, growth enhancement of juvenile striped mullet was observed by feeding recombinant yeasts containing fish growth hormone (Tsaia et al., 1994). In addition, similar reports showed that thyroid hormones improve survival rates and accelerate
growth and development in teleost larvae (Ansal and Kaur,1998; Power et al., 2001; Gavlik et al., 2002; Mousa et al.,2002; Kang and Chang, 2004; Mousa, 2004; Yamano, 2005).Improvement of larval development obtained by thyroid hormone treated female is dose-dependent. Larvae obtained from treated female with high dose of thyroxin (10 lg T4/g BW)showed significantly higher increase in length, weight and survival rate than those of low dose of thyroxin (1 lg T4/g BW).
Similar dose-dependent manner to thyroid hormone treatment was observed in milkfish Chanos chanos (Lam et al., 1985), Indian major carp Cirrhina mrigala (Ansal and Kaur, 1998),grouper Epinephelus coioides (de Jesus et al., 1998) and common carp Cyprinus carpio (Mousa et al., 2002).
In conclusion, this study showed that the chronological appearance of GH cells in the pituitary of O. niloticus at hatching time suggesting that the GH may play important physiological
functions in embryonic and larval development of O.niloticus. The transferred thyroid hormone, from maternal circulation to oocytes and larvae, appears to play a main role in the synthesis and secretion of GH during the early development of larvae and may confer a distinct advantage for the growth of the offspring of Nile tilapia, O. niloticus.

Figure 1
Sagittal sections of O. niloticus larvae immunostained with anti-chum salmon somatotropin. Immunostaining is observed mainly in the growth hormone-secreting cells in the pituitary gland. (a) One day post hatching (dph) larvae from control female. (b) One dph larvae from treated female (with the low dose of thyroxin; 1 lg T4/g BW). (c) One dph larvae from treated female (with the high dose of thyroxin; 10 lg T4/g BW). (d) 7 dph larvae from control female. (e) 7 dph larvae from treated female (with the low dose of thyroxin;1 lg T4/g BW). (f) 7 dph larvae from treated female (with the high dose of thyroxin; 10 lg T4/g BW). Scale bar= 50 lm.

Figure 2
Sagittal sections of O. niloticus larvae immunostained with anti-chum salmon somatotropin. Immunostaining is observed mainly in the growth hormone-secreting cells in the pituitary gland. (a) 14 dph larvae from control female. (b) 14 dph larvae from treated female (with the low dose of thyroxin; 1 lg T4/g BW). (c) 14 dph larvae from treated female (with the high dose of thyroxin; 10 lg T4/gBW). (d) 21 dph larvae from control female. (e) 21 dph larvae from treated female (with the low dose of thyroxin; 1 lg T4/g BW). (f)21 dph larvae from treated female (with the high dose of thyroxin; 10 lg T4/g BW). Scale bar= 50 lm.

Figure 3
Sagittal sections of O. niloticus larvae immunostained with anti-chum salmon somatotropin. Immunostaining is observed mainly in the growth hormone-secreting cells in the pituitary gland. (a) 28 dph larvae from control female. (b) 28 dph larvae from treated female (with the low dose of thyroxin; 1 lg T4/g BW). (c) 28 dph larvae from treated female (with the high dose of thyroxin; 10 lg T4/gBW). (d) 35 dph larvae from control female. (e) 35 dph larvae from treated female (with the low dose of thyroxin; 1 lg T4/g BW). (f)35 dph larvae from treated female (with the high dose of thyroxin; 10 lg T4/g BW). Scale bar= 50 lm.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สนทนามันได้ถูกแสดงให้เห็นว่า ฮอร์โมนใต้สมองมีบทบาทสำคัญในการพัฒนาตัวอ่อนปลาและเติบโต larval (Majumdar และ Elsholtz, 1994 ทานากะและ al., 1995) ศึกษา ontogenetic ใต้สมองเซลล์ในน้ำจืด และน้ำทะเลชนิด teleost เปิดเผยว่า เริ่มกิจกรรมของตนแตกต่างกันระหว่างชนิดพันธุ์และเซลล์ ในตัวอ่อนของโอ niloticus ในปลาอื่น ๆ teleost, GH เซลล์ถูกจำกัดส่วน dorsal และ ventral ของ PPD (Farbridge และ Leatherland, 1986 Folle´nius et al., 1978Segura Noguera et al., 2000 Laiz-Carrı´on และ al., 2003) มันGH เซลล์แรกปรากฏอย่างชัดเจนใน 1 วันหลังฟักไข่ เกี่ยวกับปลาน้ำจืด เซลล์ GH ได้ชัดก่อนฟัก (อัป et al., 1989 สุเกะไนโต et al., 1993 ซากะ et al., 1993) ในแอฟริกา C., GH เซลล์มองเห็นได้จากเวลาฟัก และ GH อยู่ที่มากตั้งแต่ระยะเริ่มแรกของการพัฒนา (Volckaert et al., 1999) อย่างไรก็ตาม ในปลาปลาหมอ C. dimerus, GHcells ตรวจพบ 2 วันหลังฟัก (Pandolfi และ al., 2001)บทบาทสรีรวิทยาของ GH เป็นฮอร์โมนที่ส่งเสริมการเจริญเติบโตได้ดีขึ้น (nchez Pe´rez-Sa´ และเลอประกัน 1999 Cao et al., 2011) ดูเหมือนมีแนวโน้มที่ในปลา teleosts GH ปรากฏเร็วกว่าในทะเล teleost จึง แสดงบทบาทของฮอร์โมนนี้ใน mbryonic และพัฒนา larval (Pandolfi และ al., 2001; putative Einarsdo´ ttir et al., 2007) ในศึกษาอยู่ หมายเลข และ immunoreactivity ของเซลล์ GHsecreting เพิ่มพัฒนา larval ในทำนองเดียวกัน เนื้อหา GH ค้นเพิ่มขึ้นตามสัดส่วนเพื่อเพิ่มน้ำหนัก larval จากอาหารแรกกับจุดสุดยอด metamorphic ในแอตแลนติก halibut (Einarsdo´ ttir et al., 2007)การศึกษานำเสนอตรวจสอบผลของหญิงโอ niloticus มี L-thyroxin (T4) ใน ontogeny การรักษาบ่อยและเปิดใช้งานของเซลล์ GH secreting ในระหว่างการพัฒนา larval และผลตามมา larval เจริญเติบโตและอยู่รอด ฉีดโอ niloticus มี thyroxin (1 หรือ 10 lg T4/g BW) เพิ่ม immunoreactivity ของ GH secreting เซลล์ในต่อมใต้สมองของตัวอ่อนตามที่ระบุ โดยการเปลี่ยนแปลงเชิงคุณภาพ และเชิงปริมาณระหว่างแม่รอบระยะเวลาสำหรับตัวอ่อนที่ผลิตจาก T4 ถือว่าหญิงหญิงสังเกตเหมือนกันแสดงว่า ฮอร์โมนไทรอยด์ (T3) ได้เพิ่มขึ้นในระดับท่อนของฮอร์โมนเจริญเติบโตของเอ็มอาร์เอ็นเอในเซลล์ใต้สมองของปลาคาร์ฟ (Farchi-Pisanty และ al., 1995) ยัง รักษาของหนุ่มเรนโบว์เทราต์ปลา (สกุลปลาแซลมอนแปซิฟิก mykiss) สำหรับหนึ่งสัปดาห์กับฮอร์โมนไทรอยด์ (T3) (3, 3', 5-triiodo-L-thyronine) ระดับท่อนของ mRNA สำหรับฮอร์โมนเจริญเติบโตในต่อมใต้สมองเพิ่มขึ้นเป็น 3 - 4 ครั้งเมื่อเทียบกับกลุ่มควบคุม (Moav และ McKeown, 1992)ดังนั้น การรักษา ด้วย L-thyroxin (T4; 1 หรือ 10 lgT4 g BW) เร่งเติบโต larval ตั้งแต่เพิ่มสูงขึ้นทั้ง ความยาวและน้ำหนักของตัวอ่อนที่เกิดขึ้นในระหว่างระยะเวลาทดลองงานนี้อาจเกิดจากผลโดยตรงของ thyroxin บ่อย การโอนย้ายจากการไหลเวียนของแม่ในการแช่สารละลายและตัวอ่อน สังเคราะห์ของฮอร์โมนเจริญเติบโต (ศึกษาอยู่)และบา activin (Mousa, 2004) ตัวอ่อนบำบัดให้อัตรารอดตายสูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญกว่าของตัวควบคุม ในลักษณะที่คล้ายกัน เพิ่มประสิทธิภาพการเจริญเติบโตของเด็กลายปลาถูกตรวจสอบ โดยให้อาหาร yeasts recombinant ประกอบด้วยปลาเจริญเติบโตฮอร์โมน (Tsaia et al., 1994) นอกจากนี้ รายงานคล้ายพบว่า ไทรอยด์ฮอร์โมนเพิ่มอัตรารอด และเร่งเจริญเติบโตและพัฒนาตัวอ่อน teleost (Ansal และสต 1998 พลังงานและ al., 2001 Gavlik และ al., 2002 Mousa และ al., 2002 แกงและช้าง 2004 Mousa, 2004 ยามาโน 2005)ปรับปรุงพัฒนา larval ได้ โดยรักษาไทรอยด์ฮอร์โมนเพศหญิงขึ้นอยู่กับปริมาณได้ ตัวอ่อนที่ได้รับจากบำบัดหญิงพร้อมยาสูงของ thyroxin (lg 10 T4 g BW) พบเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญในอัตราความยาว น้ำหนัก และความอยู่รอดมากกว่าของยาต่ำของ thyroxin (1 lg T4/g BW)คล้ายยาขึ้นอยู่กับลักษณะต่อมไทรอยด์ฮอร์โมนรักษาถูกพบในปลานวลจันทร์ทะเล Chanos chanos (ลำและ al., 1985), ปลาคาร์ฟสำคัญอินเดียใช้ mrigala (Ansal และสต 1998), ปลาเก๋า Epinephelus coioides (เดอพระเยซูและ al., 1998) และไนไน (Mousa et al., 2002)เบียดเบียน การศึกษานี้พบว่า ลักษณะการเรียงของ GH เซลล์ในต่อมใต้สมองของโอ niloticus ที่ฟักเวลาแนะนำว่า GH ที่อาจเล่นสำคัญสรีรวิทยาฟังก์ชันในการพัฒนาตัวอ่อน และ larval O.niloticus ฮอร์โมนไทรอยด์โอนย้าย จากการหมุนเวียนการแช่สารละลายตัวอ่อน แม่ดูเหมือนจะ มีบทบาทหลักในการสังเคราะห์และหลั่ง GH ในระหว่างการเจริญของตัวอ่อน และอาจประสาทประโยชน์แตกต่างกันสำหรับการเติบโตของลูกหลานของนิล โอ niloticusรูปที่ 1 ส่วนหว่างขม่อมของ immunostained ตัวอ่อนโอ niloticus มี somatotropin แซลมอนป้องกันชุม Immunostaining ย่อยส่วนใหญ่ในเซลล์ secreting ฮอร์โมนเจริญเติบโตในต่อมใต้สมอง (ก) หนึ่งวันลงตัวอ่อนฟัก(ดีพีเอช) จากหญิงควบคุม (b) ตัวอ่อนดีพีเอชหนึ่งจากหญิงบำบัด (ด้วยปริมาณรังสีต่ำสุดของ thyroxin, lg 1 T4 g BW) (c) ตัวอ่อนดีพีเอชหนึ่งจากหญิงบำบัด (มีปริมาณรังสีสูงของ thyroxin, lg 10 T4 g BW) (d) ตัวอ่อนดีพีเอช 7 จากควบคุมหญิง (อี) ตัวอ่อนดีพีเอช 7 จากหญิงบำบัด (ด้วยปริมาณรังสีต่ำสุดของ thyroxin, lg 1 T4 g BW) (f) ตัวอ่อนดีพีเอช 7 จากหญิงบำบัด (มีปริมาณรังสีสูงของ thyroxin, lg 10 T4 g BW) แถบมาตราส่วน = 50 lmรูปที่ 2 ส่วนหว่างขม่อมของ immunostained ตัวอ่อนโอ niloticus มี somatotropin แซลมอนป้องกันชุม Immunostaining ย่อยส่วนใหญ่ในเซลล์ secreting ฮอร์โมนเจริญเติบโตในต่อมใต้สมอง (ก) 14 ตัวอ่อนดีพีเอชจากควบคุมหญิง (b) ตัวอ่อนดีพีเอช 14 จากหญิงบำบัด (ด้วยปริมาณรังสีต่ำสุดของ thyroxin, lg 1 T4 g BW) (c) ตัวอ่อนดีพีเอช 14 จากหญิงบำบัด (มีปริมาณรังสีสูงของ thyroxin, lg 10 T4/gBW) (d) ตัวอ่อนดีพีเอช 21 จากควบคุมหญิง (e) ตัวอ่อนดีพีเอช 21 จากหญิงบำบัด (ด้วยปริมาณรังสีต่ำสุดของ thyroxin, lg 1 T4 g BW) (f) 21 ดีพีเอชตัวอ่อนจากหญิงบำบัด (มีปริมาณรังสีสูงของ thyroxin, lg 10 T4 g BW) แถบมาตราส่วน = 50 lmรูปที่ 3 ส่วนหว่างขม่อมของ immunostained ตัวอ่อนโอ niloticus มี somatotropin แซลมอนป้องกันชุม Immunostaining ย่อยส่วนใหญ่ในเซลล์ secreting ฮอร์โมนเจริญเติบโตในต่อมใต้สมอง (ก) 28 ตัวอ่อนดีพีเอชจากควบคุมหญิง (ข) ตัวอ่อนดีพีเอช 28 จากหญิงบำบัด (ด้วยปริมาณรังสีต่ำสุดของ thyroxin, lg 1 T4 g BW) (c) ตัวอ่อนดีพีเอช 28 จากหญิงบำบัด (มีปริมาณรังสีสูงของ thyroxin, lg 10 T4/gBW) (d) ตัวอ่อนดีพีเอช 35 จากควบคุมหญิง (e) ตัวอ่อนดีพีเอช 35 จากหญิงบำบัด (ด้วยปริมาณรังสีต่ำสุดของ thyroxin, lg 1 T4 g BW) (f) 35 ดีพีเอชตัวอ่อนจากหญิงบำบัด (มีปริมาณรังสีสูงของ thyroxin, lg 10 T4 g BW) แถบมาตราส่วน = 50 lm

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การอภิปราย
จะได้รับการแสดงให้เห็นว่าฮอร์โมนต่อมใต้สมองมีบทบาทสำคัญในการพัฒนาของตัวอ่อนปลาและการเจริญเติบโตของตัวอ่อน (จัมดาร์และ Elsholtz 1994. ทานากะและคณะ, 1995) การศึกษา ontogenetic ของเซลล์ต่อมใต้สมองในน้ำจืดและน้ำทะเล teleost พันธุ์เปิดเผยว่าการโจมตีของกิจกรรมของพวกเขาแตกต่างกันในชนิดและเซลล์ชนิด ในตัวอ่อนของโอนิลเป็นปลา teleost อื่น ๆ เซลล์ GH ถูก จำกัด ให้หลังและหน้าท้องส่วนของ PPD (Farbridge และ Leatherland 1986; Folle'nius et al, 1978;. กุระ-Noguera et al, 2000. Laiz-Carrı'on et al., 2003) ป้าย
เซลล์ GH ปรากฏตัวครั้งแรกอย่างเห็นได้ชัดที่ 1 วันที่โพสต์การฟักไข่ เกี่ยวกับปลาน้ำจืดเซลล์ GH ชัดเจนก่อนที่จะฟัก (Mal et al, 1989;. Naito et al, 1993;.. Saga และคณะ, 1993) ในยักษ์ C. เซลล์ GH ได้มองเห็นได้จากเวลาฟักไข่และ GH มีการใช้งานในช่วงแรกของการพัฒนา (Volckaert et al., 1999) อย่างไรก็ตามในวงศ์ปลา dimerus C. , GHcells ตรวจพบ 2 วันหลังจากฟักไข่ (Pandolfi et al., 2001)
บทบาททางสรีรวิทยาของ GH เป็นฮอร์โมนการเจริญเติบโตส่งเสริมได้รับการยอมรับเป็นอย่างดี (Pe'rez-Sa' nchez และ Le ประกัน 1999;. Cao et al, 2011) มันดูเหมือนว่าใน teleosts น้ำจืด GH ปรากฏต้นกว่าในน้ำทะเล teleost จึงแสดงบทบาทสมมุติของฮอร์โมนนี้ในการพัฒนา mbryonic และตัวอ่อน (Pandolfi et al, 2001;.. Einarsdo' ttir et al, 2007) ในการ
ศึกษาครั้งนี้จำนวนและภูมิคุ้มกันของเซลล์ GHsecreting เพิ่มขึ้นกับการพัฒนาของตัวอ่อน ในทำนองเดียวกันเนื้อหาที่ต่อมใต้สมอง GH เพิ่มขึ้นตามสัดส่วนการเพิ่มน้ำหนักตัวอ่อนจากนมครั้งแรกกับจุดการเปลี่ยนแปลงในมหาสมุทรแอตแลนติกซีก (Einarsdo' ttir et al., 2007)
การศึกษาครั้งนี้การตรวจสอบผลของการรักษาภายนอกของทุม niloticus หญิงกับ L- thyroxin (T4) ใน ontogeny และการทำงานของ GH-หลั่งเซลล์ในระหว่างการพัฒนาของตัวอ่อนและผลกระทบที่ตามมาของการเจริญเติบโตของตัวอ่อนและความอยู่รอด การฉีดของผู้หญิงทุม niloticus กับ thyroxin (1 หรือ 10 LG T4 / กรัม BW) เพิ่มขึ้นอย่างมากของภูมิคุ้มกันจะหลั่ง GH-เซลล์ในต่อมใต้สมองของตัวอ่อนตามที่ระบุโดยการเปลี่ยนแปลงเชิงปริมาณและคุณภาพในช่วงระยะเวลาการเลี้ยงตัวอ่อนที่ผลิต จาก T4 รับการรักษาสังเกต females.Similar ชี้ให้เห็นว่าฮอร์โมนของต่อมไทรอยด์ (T3) ได้เพิ่มระดับความมั่นคงของรัฐของผู้ส่งสารฮอร์โมนการเจริญเติบโต RNA ในเซลล์ต่อมใต้สมองของปลาคาร์พ (Farchi-Pisanty et al., 1995) นอกจากนี้การรักษาหนุ่มเรนโบว์เทราท์
(Oncorhynchus mykiss) ปลาเป็นเวลาหนึ่งสัปดาห์ที่มีไทรอยด์ฮอร์โมน (T3) (3,3 ', 5- triiodo-L-thyronine) เพิ่มระดับความมั่นคงของรัฐของ mRNA สำหรับฮอร์โมนการเจริญเติบโตในการขับเสมหะ 3 4 เท่า
เมื่อเทียบกับกลุ่มควบคุม (Moav และ McKeown, 1992)
ดังนั้นการรักษาด้วย L-thyroxin (T4 1 หรือ 10 lgT4 / กรัม BW) เร่งการเจริญเติบโตของตัวอ่อนเนื่องจากการเพิ่มขึ้นที่สูงกว่าทั้งความยาวและน้ำหนักของ ตัวอ่อนที่เกิดขึ้นในช่วงระยะเวลาการทดลอง
นี้อาจจะเกิดจากผลกระทบโดยตรงของ thyroxin ภายนอกซึ่งโอนมาจากการไหลเวียนของมารดาในเซลล์ไข่และตัวอ่อนในการสังเคราะห์ฮอร์โมนการเจริญเติบโต (การศึกษา)
และปริญญาตรี activin (มูซา, 2004) ตัวอ่อนได้รับการรักษาให้มีอัตราการรอดตายสูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญที่แตกต่างจากการควบคุม ในลักษณะที่คล้ายกัน, การเพิ่มประสิทธิภาพการเจริญเติบโตของปลากระบอกลายเด็กและเยาวชนได้รับการสังเกตโดยการให้อาหารที่มีส่วนผสมของยีสต์ recombinant ฮอร์โมนการเจริญเติบโตของปลา (Tsaia et al., 1994) นอกจากนี้รายงานที่คล้ายกันแสดงให้เห็นว่าฮอร์โมนไทรอยด์ปรับปรุงอัตราการรอดตายและเร่ง
การเจริญเติบโตและการพัฒนาใน teleost ตัวอ่อน (Ansal และคอร์ 1998; พลังงานและคณะ, 2001. Gavlik et al, 2002;. มูซา et al, 2002;. กังและ ช้าง, ปี 2004 มูซา 2004; Yamano, 2005) .Improvement ของการพัฒนาตัวอ่อนที่ได้จากต่อมไทรอยด์ฮอร์โมนหญิงได้รับการรักษาเป็นยาขึ้นอยู่กับ ตัวอ่อนที่ได้รับจากหญิงรับการรักษาด้วยยาที่สูงของ thyroxin (10 LG T4 / กรัม BW) พบว่าเพิ่มสูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญความยาวน้ำหนักและอัตราการรอดตายกว่าปริมาณต่ำของ thyroxin (1 LG T4 / กรัม BW)
ลักษณะปริมาณขึ้นอยู่กับที่คล้ายกัน การรักษาต่อมไทรอยด์ฮอร์โมนพบว่าในปลานวลจันทร์ทะเล Chanos Chanos (ลำ et al., 1985), อินเดีย mrigala Cirrhina ปลาคาร์พที่สำคัญ (Ansal และคอร์, 1998), ปลาเก๋า Epinephelus coioides (เดอเยซู et al., 1998) และปลาไน Cyprinus carpio ระยะ ( มูซา et al., 2002)
โดยสรุปการศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นว่าการปรากฏตัวตามลำดับของเซลล์ GH ในการขับเสมหะของโอนิลที่ฟักเวลาบอกว่า GH อาจเล่นทางสรีรวิทยาที่สำคัญ
ฟังก์ชั่นในการพัฒนาตัวอ่อนและตัวอ่อนของ O.niloticus ฮอร์โมนของต่อมไทรอยด์ที่โอนจากการไหลเวียนของมารดาเพื่อการพัฒนาของไข่และตัวอ่อนดูเหมือนจะมีบทบาทหลักในการสังเคราะห์และการหลั่ง GH ในช่วงต้นของการพัฒนาของตัวอ่อนและอาจหารือข้อได้เปรียบที่แตกต่างกันสำหรับการเจริญเติบโตของลูกหลานของแม่น้ำไนล์ปลานิลทุม niloticus รูปที่ 1 ส่วนของทัทุม niloticus immunostained ตัวอ่อนที่มีการป้องกันชุม-somatotropin ปลาแซลมอน immunostaining เป็นที่สังเกตส่วนใหญ่ในการเจริญเติบโตของเซลล์ที่หลั่งฮอร์โมนในต่อมใต้สมอง (ก) การฟักไข่โพสต์วันหนึ่ง (DPH) ตัวอ่อนจากหญิงควบคุม (ข) ตัวอ่อนหนึ่ง DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีขนาดต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัม BW) (ค) ตัวอ่อนหนึ่ง DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีปริมาณสูงของ thyroxin 10 LG T4 / กรัม BW) (ง) ตัวอ่อน 7 DPH หญิงจากการควบคุม (จ) ตัวอ่อน 7 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีขนาดต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัม BW) (ฉ) ตัวอ่อน 7 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีปริมาณสูงของ thyroxin 10 LG T4 / กรัม BW) ขนาดบาร์ = 50 LM รูปที่ 2 ส่วนขม่อมของตัวอ่อนทุม niloticus immunostained มีการป้องกันชุม-somatotropin ปลาแซลมอน immunostaining เป็นที่สังเกตส่วนใหญ่ในการเจริญเติบโตของเซลล์ที่หลั่งฮอร์โมนในต่อมใต้สมอง (ก) ตัวอ่อน 14 DPH หญิงจากการควบคุม (ข) ตัวอ่อน 14 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีขนาดต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัม BW) (ค) ตัวอ่อน 14 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีปริมาณสูงของ thyroxin 10 LG T4 / GBW) (ง) ตัวอ่อน 21 DPH หญิงจากการควบคุม (จ) ตัวอ่อน 21 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีขนาดต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัม BW) (ฉ) ตัวอ่อน 21 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีปริมาณสูงของ thyroxin 10 LG T4 / กรัม BW) ขนาดบาร์ = 50 LM รูปที่ 3 ส่วนขม่อมของตัวอ่อนทุม niloticus immunostained มีการป้องกันชุม-somatotropin ปลาแซลมอน immunostaining เป็นที่สังเกตส่วนใหญ่ในการเจริญเติบโตของเซลล์ที่หลั่งฮอร์โมนในต่อมใต้สมอง (ก) ตัวอ่อน 28 DPH หญิงจากการควบคุม (ข) ตัวอ่อน 28 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีขนาดต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัม BW) (ค) ตัวอ่อน 28 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีปริมาณสูงของ thyroxin 10 LG T4 / GBW) (ง) ตัวอ่อน 35 DPH หญิงจากการควบคุม (จ) ตัวอ่อน 35 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีขนาดต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัม BW) (ฉ) ตัวอ่อน 35 DPH จากหญิงได้รับการรักษา (ที่มีปริมาณสูงของ thyroxin 10 LG T4 / กรัม BW) บาร์ขนาด = 50 ลูเมน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การอภิปราย
มันได้ถูกแสดงว่าฮอร์โมนต่อมใต้สมองมีบทบาทสำคัญในการพัฒนาและการเติบโตของปลาตัวอ่อนตัวอ่อน ( majumdar และ elsholtz , 1994 ; ทานากะ et al . , 1995 ) ontogenetic การศึกษาเซลล์ต่อมใต้สมองในน้ำจืดและน้ำทะเล teleost ชนิดเปิดเผยว่า การโจมตีของกิจกรรมของพวกเขาที่แตกต่างกันตามชนิดและประเภทของเซลล์ ในตัวอ่อนของ o . niloticus เป็นปลา teleost อื่น ๆเซลล์ GH มีครีบหลังและครีบท้องส่วนหวงห้ามเพื่อ PPD ( farbridge และ leatherland , 1986 ; โฟลใหม่ nius et al . , 1978 ; เซกูรา โนกูร่า et al . , 2000 ; laiz คาร์ı´บน et al . , 2003 ) ป้าย
GH เซลล์แรกปรากฏอย่างชัดเจนใน 1 วันหลังฟัก เกี่ยวกับน้ำจืดปลา GH เซลล์ได้ชัดเจนก่อนการฟักไข่ ( มัล et al . , 1989 ; ไนโตะ et al . , 1993 ; Saga et al . , 1993 ) ลูกผสมใน C ,GH เซลล์อยู่ที่มองเห็นจากการเวลาและ GH อยู่ในขั้นเริ่มต้นของการพัฒนามาก ( volckaert et al . , 1999 ) อย่างไรก็ตาม ใน dimerus ghcells ปลาหมอปลา C , ตรวจพบได้ 2 วัน หลังจากฟัก ( pandolfi et al . , 2001 ) .
บทบาททางสรีรวิทยาของ GH เป็นฮอร์โมนส่งเสริมการเจริญเติบโตได้รับการจัดตั้งอย่างดี ( PE ใหม่เรซซา ใหม่ และ เลอ nchez ประกันตัว , 1999 ; เคา et al . , 2011 )ดูเหมือนว่าใน GH teleosts น้ำจืดปรากฏเร็วกว่าในน้ำทะเล teleost จึงระบุบทบาทการแสดงออกของฮอร์โมนนี้ใน mbryonic การพัฒนาตัวอ่อน ( pandolfi et al . , 2001 ; einarsdo ใหม่ ttir et al . , 2007 ) ใน
การศึกษาจำนวนและการเพิ่มขึ้นของ ghsecreting เซลล์ที่มีการเจริญเติบโตของหนอน . ในทํานองเดียวกันเนื้อหา GH ต่อมใต้สมองเพิ่มขึ้นตามส่วนเพิ่มน้ำหนักจากก่อนให้อาหารตัวอ่อนเพื่อจุดสุดยอดในหินแปรชนิดหนึ่งแอตแลนติก ( einarsdo ใหม่ ttir et al . , 2007 ) .
การศึกษาทดสอบผลของการรักษาภายนอกของ o . niloticus เพศหญิง l-thyroxin ( T4 ) ในการกระตุ้นพัฒนาการของ GH และ secreting เซลล์ในระหว่างการพัฒนาหนอนและต่อมามีผลต่อการเติบโตของหนอนและการอยู่รอด ฉีดของผู้หญิง . niloticus กับธัยรอกซิน ( 1 หรือ 10 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ช่วยเพิ่มการหลั่ง GH เซลล์ต่อมใต้สมองของตัวอ่อนตามที่ระบุโดยการเปลี่ยนแปลงเชิงปริมาณและเชิงคุณภาพในช่วงระยะเวลาในการเลี้ยงตัวอ่อนที่ผลิตจาก T4 ทำกับผู้หญิงสังเกตที่คล้ายกันพบว่าไทรอยด์ฮอร์โมน ( T3 ) มีเพิ่มขึ้นคงที่ในระดับรัฐของ Messenger RNA ในเซลล์โกรทฮอร์โมนต่อมใต้สมองของปลาไน ( farchi pisanty et al . , 1995 ) นอกจากนี้ การรักษาเด็กปลาเรนโบว์เทราท์
( คอรินชัส mykiss ) ปลาสำหรับหนึ่งสัปดาห์กับไทรอยด์ฮอร์โมน ( T3 ) ( 3 , 3 '5-triiodo-l-thyronine ) เพิ่ม steady state mRNA สำหรับระดับของโกรทฮอร์โมนในต่อมใต้สมอง 3-4 ครั้ง
เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มควบคุม ( moav และ mckeown , 1992 ) .
ดังนั้น การรักษาด้วย l-thyroxin ( T4 ; 1 หรือ 10 lgt4 / กรัมน้ำหนักตัว ) เร่งการเจริญเติบโตของตัวอ่อน ตั้งแต่เพิ่มสูงขึ้นในทั้ง ความยาว และน้ำหนัก ของตัวอ่อนที่เกิดขึ้นในช่วงระยะเวลาการทดลอง
นี้อาจเกิดจากผลกระทบโดยตรงของประไทร็อกซิน ซึ่งย้ายมาจากมารดาและการไหลเวียนในเซลล์ตัวอ่อนในการสังเคราะห์ฮอร์โมนการเจริญเติบโต ( การศึกษา ) และ b (
แอคติวิน มูซา , 2004 ) ตัวอ่อนรักษาให้ยังสูงกว่าอัตราการรอดกว่าของการควบคุม ในลักษณะที่คล้ายคลึงกันส่งเสริมการเจริญเติบโตของเยาวชน สังเกตได้จากลายกระบอกให้อาหารยีสต์โปรตีนที่ประกอบด้วยฮอร์โมนการเจริญเติบโตของปลา ( tsaia et al . , 1994 ) นอกจากนี้ รายงานที่คล้ายกันพบว่าต่อมไทรอยด์ฮอร์โมนเพิ่มอัตราการอยู่รอดและเร่งการเจริญเติบโตและการพัฒนาใน teleost
และตัวอ่อน ( ansal kaur , 1998 ; อำนาจ et al . , 2001 ; gavlik et al . , 2002 ; มูซา et al . , 2002 ; คังชาง , 2004 ; มูซา , 2004 ;ยามาโนะ , 2005 ) . การปรับปรุงพัฒนาตัวอ่อนที่ได้จากไทรอยด์ฮอร์โมนหญิงถือว่าเป็นสัปดาห์ . ตัวอ่อนที่ได้จากการรักษาหญิงมีปริมาณของไธรอกซิน ( 10 ) T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) พบเพิ่มสูงขึ้นอย่างมากในความยาว , น้ำหนักและอัตรารอดสูงกว่าปริมาณต่ำของไทร็อกซิน ( 1 ) T4
/ g น้ำหนักตัว )ลักษณะคล้ายปิดกั้นการรักษาฮอร์โมนไทรอยด์สูงปลานวลจันทร์ทะเล chanos chanos ( ลำ et al . , 1985 ) , อินเดียสาขาปลาคาร์พ cirrhina mrigala ( ansal kaur และ 1998 ) , ปลาเก๋าสกุลปลาหมอทะเล coioides ( de พระเยซู et al . , 1998 ) และปลาไน ( cyprinus Carpio มูซา et al . , 2002 ) .
สรุป การศึกษานี้พบว่า ลำดับการปรากฏตัวของ GH เซลล์ต่อมใต้สมองของ Oniloticus ที่ฟักเวลาบอกว่า GH อาจจะเล่นฟังก์ชั่นทางสรีรวิทยา
สำคัญในตัวอ่อนและการพัฒนาตัวอ่อนของ o.niloticus . โอนไทรอยด์ฮอร์โมนจากแม่และการไหลเวียนเซลล์ตัวอ่อนจะปรากฏขึ้นที่จะมีบทบาทหลักในการสังเคราะห์และการหลั่ง GH ในการพัฒนาของตัวอ่อนและจะให้ประโยชน์แตกต่างกันสำหรับการเจริญเติบโตของลูกหลานของปลานิล , o . niloticus .

รูปที่ 1
ส่วนแซกของ o . niloticus ตัวอ่อน immunostained กับโซมาโทโทรพินต้านชุมปลาแซลมอนimmunostaining เป็นที่สังเกตส่วนใหญ่ในการเจริญเติบโตฮอร์โมน secreting เซลล์ต่อมใต้สมอง ( 1 ) วันนึงโพสต์ฟัก ( Inc ) ตัวอ่อนจากเมียคุม ( ข ) ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง Inc ( มีปริมาณต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ( c ) ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง Inc ( มีปริมาณสูงของ thyroxin ; 10 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ( D ) 7 Inc ตัวอ่อนจากเมียคุม( E ) 7 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ( ฉ ) 7 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณสูงของ thyroxin ; 10 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ขนาดบาร์ = 50 กล. .

รูปที่ 2
ส่วนแซกของ o . niloticus ตัวอ่อน immunostained กับโซมาโทโทรพินต้านชุมปลาแซลมอน immunostaining เป็นที่สังเกตส่วนใหญ่ในการเจริญเติบโตฮอร์โมน secreting เซลล์ต่อมใต้สมอง( ก ) 14 Inc ตัวอ่อนจากเมียคุม ( ข ) 14 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ( c ) 14 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณสูงของ thyroxin ; LG T4 / gbw 10 ) ( D ) 21 Inc ตัวอ่อนจากเมียคุม ( E ) 21 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว )( ฉ ) 21 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณสูงของ thyroxin ; 10 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ขนาดบาร์ = 50 กล. .

รูปที่ 2
ส่วนแซกของ o . niloticus ตัวอ่อน immunostained กับโซมาโทโทรพินต้านชุมปลาแซลมอน immunostaining เป็นที่สังเกตส่วนใหญ่ในการเจริญเติบโตฮอร์โมน secreting เซลล์ต่อมใต้สมอง ( 1 ) หญิง Inc จากการควบคุม( ข ) 28 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ( c ) 28 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณสูงของ thyroxin ; LG T4 / gbw 10 ) ( D ) 35 Inc ตัวอ่อนจากเมียคุม ( E ) 35 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณต่ำของ thyroxin 1 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ( ฉ ) 35 Inc ตัวอ่อนจากถือว่าหญิง ( มีปริมาณสูงของ thyroxin ; 10 LG T4 / กรัมน้ำหนักตัว ) ขนาดบาร์ = 50 ไมโครเมตร