- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
FIGURE 2: Micro-CT (ICT) images cap
FIGURE 2: Micro-CT (ICT) images captured 2 days, 8 days and 20 days after gel deposition into the cavity obtained following การผ่าตัดเนื้องอกออก, showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel according to the การประดิษฐ์, composed of
methylcellulose (5% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles 15 aggregates (3.5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or
มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
FIGURE 3: CT images captured 2 days, 9 days and 20 days after gel deposition into the 20 cavity obtained following การผ่าตัดเนื้องอกออก showing the tumor bed delineation using a
biocompatible hydrogel according to the การประดิษฐ์, composed of methylcellulose (9%
w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (3.5% w/w)
consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been
mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
FIGURE 4: Effect of particles concentration on radiation dose enhancement using Monte Carlo calculation.
FIGURE 5: viscosity measurement (A at 20°C and B at 37°C) of a gel composed of 30 hyaluronic acid (3% w/w) and a gel composed of hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย
biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles aggregates (5% w/w) consisting in
hafnium oxide.
FIGURE 6: FTIR spectrum of a gel composed of hyaluronic acid (0.1% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (0.26% w/w) consisting in hafnium oxide. Comparison with the spectrum of the gel composed of hyaluronic acid and
5 also with the spectrum of nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs consisting in
hafnium oxide.
FIGURE 7: CT images captured 30 minutes (D01), 1 day (D02), 3 days (D04), 8 days
(D09) and 22 days (D23) after gel deposition into the cavity obtained following
10 การผ่าตัดเนื้องอกออก showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel according
to the การประดิษฐ์. The gel is composed of hyaluronic acid (3.8% w/w), hyaluronic acid (2,5% w/w) and auto-cross-linked hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel
15 deposition into the tumor bed.
EXAMPLES
EXAMPLE I: Biocompatible hafnium oxide (Hf02) nanoparticles or nanoparticle 20 aggregates, using sodium hexametaphosphate as coating agent.
A tetramethylammonium hydroxide (TMAOH) solution is added to HfC14 solution. Addition of TMAOH solution is performed until the pH of the final suspension reaches a pH ประกอบรวมด้วยd between 7 and 13. A white precipitate is obtained.
25 The precipitate is further transferred in an autoclave and heated at a temperature ประกอบรวมด้วยd
between 120 °C and 300 °C to perform crystallization. After cooling, the suspension is washed with de-ionized water.
Sodium hexametaphosphate solution is then added to the washed suspension and the pH is adjusted to a pH ประกอบรวมด้วยd between 6 and 8.
30 Sterilization of the nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs suspension is performed prior
in vitro or in vivo experiments.
EXAMPLE 2: Synthesis and physico-chemical characterisation of gold nanoparticles with different sizes.
Gold nanoparticles are obtained by reduction of gold chloride with sodium citrate in 5 aqueous solution. Protocol was adapted from G. Frens Nature Physical Science 241 (1973)
21.
In a typical experiment, HAuC14 solution is heated to boiling. Subsequently, sodium citrate solution is added. The resulting solution is maintained under boiling for an additional period of 5 minutes.
10 The nanoparticle's size is adjusted from 15 nm up to 105 nm by carefully modifying the
citrate versus gold precursor ratio (cf. Table 1).
The as prepared gold nanoparticles' suspensions are then concentrated using an ultrafiltration device with a 30 kDa cellulose membrane.
The resulting suspensions are ultimately filtered through a 0.22 urn cutoff membrane filter
15 under laminar hood and stored at 4°C.
Particle size is determined on more than 200 particles, by using Transmission Electronic
Microscopy (TEM) and by considering the longest nanoparticle dimension of each particle.
Table 1:
Samples Particle size (nm) Synthesis
Citrate HAuC14
Gold-15 15±2 (1u) 20 mL 30 mL 500 mL 0.25 mM
Gold-30 32±10 (la) 7.5 mL 40 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-60 60±10 (lo-) 2 mL 85 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-80 80± 10(10-) 1.2 mL 43 mM 200 mL 0.30 mM
Gold-105 105±25 (1a) 1.2 mL 39 mM 200 mL 0.33 mM
EXAMPLE 3: Biocompatible hafnium oxide nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 5% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.
5 A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is
added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 4,5% w/w and 5,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration within gel of 3.5% (w/w). The so obtained preparation is mixed ตามปกติ with a magnetic
10 stirrer or a spatula.
EXAMPLE 4: Biocompatible hafnium oxide Nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 9% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.
15
A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 8,5% w/w and 9,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration
20 within gel of 3.5% (w/w).
EXAMPLE 5: Assessment by micro-Computed Tomography (uCT) of the quality of the "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from example 3.
25
The objective of this experiment was to assess, by uCT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 3 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection
of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice. 30 The uCT analysis was performed 2 days, 8 days and 20 days following gel implantation
into the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied
by the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a
manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the
location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all 5 mice. Figure 2 presents the ii.CT images showing more than about 80% of cavity
delineation as soon as 2 days following surgery and gel implantation.
EXAMPLE 6: Assessment by Computed Tomography (CT) of the quality of "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from
10 example 4.
The objective of this experiment was to assess, by CT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 4 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection 15 of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice.
The CT analysis was performed 2 days, 9 days and 20 days following gel implantation into
the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied by the
nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a
manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. 20 Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to
evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the
location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all
mice. Figure 3 presents the CT images showing more than about 80% of cavity delineation
as soon as 9 days following surgery and gel implantation.
25
methylcellulose (5% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles 15 aggregates (3.5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or
มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
FIGURE 3: CT images captured 2 days, 9 days and 20 days after gel deposition into the 20 cavity obtained following การผ่าตัดเนื้องอกออก showing the tumor bed delineation using a
biocompatible hydrogel according to the การประดิษฐ์, composed of methylcellulose (9%
w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (3.5% w/w)
consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been
mixed with the gel prior to the gel deposition into the tumor bed.
FIGURE 4: Effect of particles concentration on radiation dose enhancement using Monte Carlo calculation.
FIGURE 5: viscosity measurement (A at 20°C and B at 37°C) of a gel composed of 30 hyaluronic acid (3% w/w) and a gel composed of hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย
biocompatible nanoparticles and/or nanoparticles aggregates (5% w/w) consisting in
hafnium oxide.
FIGURE 6: FTIR spectrum of a gel composed of hyaluronic acid (0.1% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (0.26% w/w) consisting in hafnium oxide. Comparison with the spectrum of the gel composed of hyaluronic acid and
5 also with the spectrum of nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs consisting in
hafnium oxide.
FIGURE 7: CT images captured 30 minutes (D01), 1 day (D02), 3 days (D04), 8 days
(D09) and 22 days (D23) after gel deposition into the cavity obtained following
10 การผ่าตัดเนื้องอกออก showing the tumor bed delineation using a biocompatible hydrogel according
to the การประดิษฐ์. The gel is composed of hyaluronic acid (3.8% w/w), hyaluronic acid (2,5% w/w) and auto-cross-linked hyaluronic acid (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย biocompatible nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs (5% w/w) consisting in hafnium oxide. The nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs have been mixed with the gel prior to the gel
15 deposition into the tumor bed.
EXAMPLES
EXAMPLE I: Biocompatible hafnium oxide (Hf02) nanoparticles or nanoparticle 20 aggregates, using sodium hexametaphosphate as coating agent.
A tetramethylammonium hydroxide (TMAOH) solution is added to HfC14 solution. Addition of TMAOH solution is performed until the pH of the final suspension reaches a pH ประกอบรวมด้วยd between 7 and 13. A white precipitate is obtained.
25 The precipitate is further transferred in an autoclave and heated at a temperature ประกอบรวมด้วยd
between 120 °C and 300 °C to perform crystallization. After cooling, the suspension is washed with de-ionized water.
Sodium hexametaphosphate solution is then added to the washed suspension and the pH is adjusted to a pH ประกอบรวมด้วยd between 6 and 8.
30 Sterilization of the nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs suspension is performed prior
in vitro or in vivo experiments.
EXAMPLE 2: Synthesis and physico-chemical characterisation of gold nanoparticles with different sizes.
Gold nanoparticles are obtained by reduction of gold chloride with sodium citrate in 5 aqueous solution. Protocol was adapted from G. Frens Nature Physical Science 241 (1973)
21.
In a typical experiment, HAuC14 solution is heated to boiling. Subsequently, sodium citrate solution is added. The resulting solution is maintained under boiling for an additional period of 5 minutes.
10 The nanoparticle's size is adjusted from 15 nm up to 105 nm by carefully modifying the
citrate versus gold precursor ratio (cf. Table 1).
The as prepared gold nanoparticles' suspensions are then concentrated using an ultrafiltration device with a 30 kDa cellulose membrane.
The resulting suspensions are ultimately filtered through a 0.22 urn cutoff membrane filter
15 under laminar hood and stored at 4°C.
Particle size is determined on more than 200 particles, by using Transmission Electronic
Microscopy (TEM) and by considering the longest nanoparticle dimension of each particle.
Table 1:
Samples Particle size (nm) Synthesis
Citrate HAuC14
Gold-15 15±2 (1u) 20 mL 30 mL 500 mL 0.25 mM
Gold-30 32±10 (la) 7.5 mL 40 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-60 60±10 (lo-) 2 mL 85 mM 500 mL 0.25 mM
Gold-80 80± 10(10-) 1.2 mL 43 mM 200 mL 0.30 mM
Gold-105 105±25 (1a) 1.2 mL 39 mM 200 mL 0.33 mM
EXAMPLE 3: Biocompatible hafnium oxide nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 5% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.
5 A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is
added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 4,5% w/w and 5,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration within gel of 3.5% (w/w). The so obtained preparation is mixed ตามปกติ with a magnetic
10 stirrer or a spatula.
EXAMPLE 4: Biocompatible hafnium oxide Nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 9% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.
15
A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 8,5% w/w and 9,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration
20 within gel of 3.5% (w/w).
EXAMPLE 5: Assessment by micro-Computed Tomography (uCT) of the quality of the "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from example 3.
25
The objective of this experiment was to assess, by uCT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 3 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection
of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice. 30 The uCT analysis was performed 2 days, 8 days and 20 days following gel implantation
into the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied
by the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a
manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the
location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all 5 mice. Figure 2 presents the ii.CT images showing more than about 80% of cavity
delineation as soon as 2 days following surgery and gel implantation.
EXAMPLE 6: Assessment by Computed Tomography (CT) of the quality of "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from
10 example 4.
The objective of this experiment was to assess, by CT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).
The test gel from example 4 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection 15 of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice.
The CT analysis was performed 2 days, 9 days and 20 days following gel implantation into
the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied by the
nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a
manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. 20 Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to
evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the
location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all
mice. Figure 3 presents the CT images showing more than about 80% of cavity delineation
as soon as 9 days following surgery and gel implantation.
25
0/5000
รูปที่ 2: ภาพไมโคร-CT (ICT) จับภาพ 2 วัน 8 วัน และ 20 วันหลังจากรับเจสะสมในช่องต่อการผ่าตัดเนื้องอกออก delineation เตียงเนื้องอกที่ใช้ hydrogel ชีวภาพตามการประดิษฐ์ การแสดงประกอบด้วยเก็บกักชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วย methylcellulose (5% w/w) และ/หรือเพิ่มเก็บกัก 15 (3.5% w/w) ประกอบด้วยในออกไซด์แฮฟเนียม การเก็บกัก หรือมวลรวมอนุภาคนาโนs ได้ถูกผสมกับเจลก่อนสะสมเจเตียงเนื้องอกรูปที่ 3: ภาพ CT จับภาพ 2 วัน 9 วัน และ 20 วันหลังจากรับเจสะสมในช่อง 20 ต่อการผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงเนื้องอกเตียง delineation ใช้เป็น ประกอบด้วย hydrogel ชีวภาพตามการประดิษฐ์ methylcellulose (9% เก็บกักชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วย w/w) หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs (3.5% w/w) ประกอบด้วยในออกไซด์แฮฟเนียม การเก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ผสมกับเจลก่อนสะสมเจเตียงเนื้องอกรูปที่ 4: ผลของความเข้มข้นของอนุภาครังสียามัธยมใช้คำนวณ Carlo มอนรูปที่ 5: วัดความหนืด (A ที่ 20° C) และ B ที่ 37 ° C ของเจประกอบด้วยกรด hyaluronic 30 (3% w/w) และเจประกอบด้วยกรด hyaluronic (3% w/w) ซึ่งประกอบรวมด้วย เก็บกักชีวภาพและ/หรือเพิ่มเก็บกัก (5% w/w) ประกอบด้วยใน แฮฟเนียมออกไซด์รูปที่ 6: สเปคตรัม FTIR ของเจประกอบด้วยการเก็บกักชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วยกรด hyaluronic (0.1% w/w) หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs (0.26% w/w) ประกอบด้วยในออกไซด์แฮฟเนียม เปรียบเทียบกับสเปกตรัมของเจประกอบด้วยกรด hyaluronic และ5 ยัง มีจำนวนมากเก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ซึ่งในแฮฟเนียมออกไซด์รูปที่ 7: ภาพ CT จับภาพ 30 นาที (D01), 1 วัน (D02), 3 วัน (D04), 8 วัน(D09) และ 22 วัน (D23) หลังจากเจลสะสมในช่องที่ได้รับต่อไปนี้การผ่าตัดเนื้องอกออก 10 แสดง delineation เตียงเนื้องอกการใช้ชีวภาพ hydrogel ตามการการประดิษฐ์ เจประกอบด้วยกรด hyaluronic (3.8% w/w), กรด hyaluronic (หรือ 2.5% w/w) และเก็บกักชีวภาพซึ่งประกอบรวมด้วยอัตโนมัติขนลิงค์ hyaluronic กรด (3% w/w) หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs (5% w/w) ประกอบด้วยในออกไซด์แฮฟเนียม เก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ได้ถูกผสมกับเจเจก่อนสะสม 15 เตียงเนื้องอกตัวอย่างI:ตัวอย่างชีวภาพแฮฟเนียมออกไซด์ (Hf02) เก็บกักหรือ nanoparticle 20 ผล ใช้ hexametaphosphate โซเดียมเป็นเคลือบแทนเพิ่ม HfC14 โซลูชันโซลูชันไฮดรอกไซด์ (TMAOH) tetramethylammonium เพิ่มโซลูชั่น TMAOH ทำจนกว่าค่า pH ของการระงับขั้นสุดท้ายถึง ประกอบรวมด้วยd ค่า pH ระหว่าง 7 และ 13 Precipitate ขาวได้รับPrecipitate 25 เพิ่มเติมด้วยการการโอนย้าย และความร้อนที่มีอุณหภูมิ ประกอบรวมด้วยdระหว่าง 120 ° C และ 300 ° C เพื่อทำการตกผลึก หลังจากทำความเย็น การระงับจะล้างน้ำ de-ionizedแขวนหินแล้วเพิ่มโซลูชัน hexametaphosphate โซเดียม และจะมีปรับ pH ประกอบรวมด้วยd pH ระหว่าง 6 และ 8ดำเนินการก่อนคือการฆ่าเชื้อโรคระงับการเก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs 30ในสัตว์ทดลอง หรือในหลอดทดลองตัวอย่างที่ 2: การสังเคราะห์และตรวจลักษณะเฉพาะของดิออร์ของทองเก็บกักมีขนาดแตกต่างกันเก็บกักทองจะได้รับ โดยการลดของโกลด์กับโซเดียมซิเตรตใน 5 ละลาย โพรโทคอลที่ถูกดัดแปลงจาก G. Frens ธรรมชาติวิทยาศาสตร์กายภาพ 241 (1973)21ในการทดลองทั่วไป HAuC14 โซลูชั่นเป็นอุ่นให้เดือด ในเวลาต่อมา โซเดียมซิเตรตโซลูชันจะถูกเพิ่ม การแก้ปัญหาที่เกิดขึ้นไว้ใต้เดือดเป็นระยะเวลา 5 นาทีเพิ่มเติม10 มีการปรับปรุงขนาดของ nanoparticle ที่ 15 nm ถึง 105 nm โดยการปรับเปลี่ยนอย่างซิเตรตเมื่อเทียบกับอัตราส่วนของสารตั้งต้นทอง (มัทธิวตารางที่ 1)ทองที่เตรียมไว้บริการเก็บกักอยู่แล้วเข้มข้นใช้อุปกรณ์ ultrafiltration เป็นเยื่อเซลลูโลส 30 kDaบริการได้สุดจะถูกกรองผ่านตัวกรองเมมเบรนตัดยอด 0.22 ผอบ15 ภายใต้ laminar ฮูด และเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสขนาดอนุภาคจะถูกกำหนดบนอนุภาคมากกว่า 200 โดยส่งข้อมูลอิเล็กทรอนิกส์Microscopy (ยการ) โดยพิจารณามิติ nanoparticle ที่ยาวที่สุดของแต่ละอนุภาคตารางที่ 1:ตัวอย่างขนาดอนุภาค (nm) การสังเคราะห์ซิเต HAuC1415±2 ทอง 15 (1u) 20 mL 30 mL 500 mL 0.25 มม.ทอง 30 32±10 (la) 7.5 mL 40 มม.ขนาด 500 มล. 0.25 มม.60±10 ทอง 60 (หล่อ-) 2 mL 85 มม.ขนาด 500 มล. 0.25 มม.10(10-) 80± ทอง 80 มล. 1.2 43 มม. 200 มล 0.30 มม.105±25 ทอง-105 (1a) 1.2 mL 39 mM 200 มล 0.33 มม.ตัวอย่างที่ 3: แฮฟเนียมชีวภาพออกไซด์เก็บกักหรือ มวลรวมอนุภาคนาโนs ประสาน (3.5% w/w) ภายในสะสมก่อนเจลเจล (methylcellulose 5% w/w) บนเตียงนอนของเนื้องอก5 มีปริมาณความระงับของเก็บกัก Hf02 ชีวภาพจากตัวอย่างที่ 1added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 4,5% w/w and 5,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration within gel of 3.5% (w/w). The so obtained preparation is mixed ตามปกติ with a magnetic10 stirrer or a spatula.EXAMPLE 4: Biocompatible hafnium oxide Nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs incorporation (3.5% w/w) within the gel (methylcellulose 9% w/w) prior gel deposition on the tumor bed.15A volume of aqueous suspension of biocompatible Hf02 nanoparticles from example 1, is added to a volume of gel, ตามปกติ with a polymer (methylcellulose) concentration lying between 8,5% w/w and 9,5 % w/w. The volumes' ratio between the suspension of Hf02 nanoparticles and the gel being adjusted to reach a final Hf02 nanoparticle concentration20 within gel of 3.5% (w/w).EXAMPLE 5: Assessment by micro-Computed Tomography (uCT) of the quality of the "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from example 3.25The objective of this experiment was to assess, by uCT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).The test gel from example 3 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice. 30 The uCT analysis was performed 2 days, 8 days and 20 days following gel implantation into the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied by the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, amanual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both thelocation and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all 5 mice. Figure 2 presents the ii.CT images showing more than about 80% of cavity delineation as soon as 2 days following surgery and gel implantation.EXAMPLE 6: Assessment by Computed Tomography (CT) of the quality of "tumor bed" delineation obtained when using nanoparticles embedded in hydrogel from10 example 4.The objective of this experiment was to assess, by CT (Computed Tomography), the quality of "tumor bed" delineation by nanoparticles (NPs).The test gel from example 4 was implanted (deposited) into the cavity left by the resection 15 of HCT 116 xenografted tumor (human colorectal carcinoma cancer cells) in nude mice. The CT analysis was performed 2 days, 9 days and 20 days following gel implantation into the cavity left by the resection of the tumor in order to evaluate the volume occupied by the nanoparticles and/or มวลรวมอนุภาคนาโนs in the tumor bed over time. For this, a manual segmentation (region of interest (ROIs)) was performed around the surgical cavity. 20 Then, a thresholding above 120 HU was performed inside the surgical cavity in order to evaluate the presence of nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs and to assess both the location and volume occupied by those nanoparticles or มวลรวมอนุภาคนาโนs for all mice. Figure 3 presents the CT images showing more than about 80% of cavity delineation as soon as 9 days following surgery and gel implantation.25
การแปล กรุณารอสักครู่..
รูปที่ 2: Micro-CT (ICT) ภาพที่ถ่าย 2 วัน, 8 วันและ 20
วันหลังจากการสะสมเจลเข้าไปในโพรงที่ได้รับดังต่อไปนี้การผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามการประดิษฐ์ที่ประกอบด้วยเมทิล(5% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรืออนุภาคนาโน 15 มวลรวม (3.5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ /
หรือมวลรวมอนุภาคนาโนs ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีการสะสมเจลลงบนเตียงเนื้องอก.
รูปที่ 3: ภาพ CT จับ 2 วัน, 9 วันและ 20 วันหลังจากการสะสมเจลเข้าไปในโพรง 20 ที่ได้รับต่อไปนี้การ
ผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามการประดิษฐ์ประกอบด้วยเมทิล(9%
w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (3.5% w / w)
ซึ่งประกอบด้วย ในฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s
ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีการสะสมเจลลงบนเตียงเนื้องอก.
รูปที่ 4: ผลกระทบของอนุภาคเข้มข้นในการเพิ่มประสิทธิภาพของปริมาณรังสีที่ใช้คำนวณ Monte Carlo.
รูปที่ 5: การวัดความหนืด (A ที่ 20 ° C และ B ที่ 37 ° C) ของเจลประกอบด้วย 30 กรดไฮยาลูโร (3% w / w) และเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโร (3% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลอนุภาคนาโน (5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์. รูปที่ 6: คลื่นความถี่ FTIR เจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโร (0.1% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (0.26% w / น้ำหนัก) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ เปรียบเทียบกับสเปกตรัมของเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรและ5 ยังมีสเปกตรัมของอนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์. รูปที่ 7: ภาพ CT จับ 30 นาที (D01), 1 วันที่ (D02) 3 วัน (D04) 8 วัน(D09) และ 22 วัน (D23) หลังจากการสะสมเจลเข้าไปในโพรงที่ได้รับดังต่อไปนี้10 การผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามเพื่อการประดิษฐ์ เจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรของ (3.8% w / w), กรดไฮยาลูโร (2,5% w / w) และอัตโนมัติ cross-linked กรดไฮยาลูโร (3% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีเจล15 ทับถมเป็นเตียงเนื้องอก. ตัวอย่างเช่นฉัน: Biocompatible ฮาฟเนียมออกไซด์ (Hf02) หรืออนุภาคนาโนอนุภาคนาโน 20 มวลโดยใช้ hexametaphosphate โซเดียมเป็นตัวแทนการเคลือบ ไฮดรอกไซ Tetramethylammonium (TMAOH) วิธีการแก้ปัญหาจะถูกเพิ่มในการแก้ปัญหา HfC14 นอกจากนี้วิธีการแก้ปัญหา TMAOH จะดำเนินการจนถึงค่า pH ของการระงับสุดท้ายถึงค่า pH ประกอบรวมด้วยงระหว่างวันที่ 7 และ 13 ตะกอนสีขาวจะได้รับ. 25 ตะกอนจะถูกโอนต่อไปในหม้อนึ่งความดันและให้ความร้อนที่อุณหภูมิประกอบรวมด้วย d ระหว่าง 120 ° C และ 300 ° C ที่จะดำเนินการตกผลึก หลังจากที่ระบายความร้อนจะถูกระงับการล้างด้วยน้ำบริสุทธิ์. สารละลายโซเดียม hexametaphosphate แล้วจะถูกเพิ่มในการระงับการล้างและพีเอชจะมีการปรับค่า pH ที่จะประกอบรวมด้วย d ระหว่างวันที่ 6 และ 8 30 ทำหมันของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโน ระงับ s จะดำเนินการก่อนในหลอดทดลองหรือการทดลองในร่างกาย. ตัวอย่างที่ 2:. การสังเคราะห์และลักษณะทางกายภาพและทางเคมีของอนุภาคนาโนทองคำที่มีขนาดที่แตกต่างกันอนุภาคนาโนทองคำจะได้รับการลดลงของคลอไรด์ทองกับโซเดียมซิเตรทใน5 สารละลาย พิธีสารดัดแปลงมาจากจี Frens ธรรมชาติวิทยาศาสตร์กายภาพ 241 (1973) 21. ในการทดลองโดยทั่วไปวิธีการแก้ปัญหา HAuC14 อุ่นให้เดือด ต่อมาการแก้ปัญหาโซเดียมซิเตรทจะถูกเพิ่ม วิธีการแก้ปัญหาที่เกิดขึ้นจะยังคงอยู่ภายใต้การเดือดเป็นระยะเวลาครั้งละ 5 นาที. 10 ขนาดอนุภาคนาโนที่จะมีการปรับจาก 15 นาโนเมตรถึง 105 นาโนเมตรโดยระมัดระวังการปรับเปลี่ยนซิเตรตเมื่อเทียบกับอัตราส่วนสารตั้งต้นทอง(cf ตารางที่ 1). ที่จัดทำขึ้นเป็นอนุภาคนาโนทอง ' สารแขวนลอยที่มีความเข้มข้นจากนั้นใช้อุปกรณ์กรองด้วยเมมเบรนเซลลูโลส kDa 30. สนองที่เกิดขึ้นจะถูกกรองในที่สุดผ่านตัวกรองเมมเบรนตัดโกศ 0.22 15 ภายใต้ประทุนราบเรียบและเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส. ขนาดอนุภาคจะถูกกำหนดในกว่า 200 อนุภาคโดย โดยใช้การส่งอิเล็กทรอนิกส์. กล้องจุลทรรศน์ (TEM) และเมื่อพิจารณาจากมิติอนุภาคนาโนที่ยาวที่สุดของอนุภาคแต่ละตารางที่1: ตัวอย่างขนาดอนุภาค (นาโนเมตร) การสังเคราะห์สารซิเตรตHAuC14 ทอง 15 15 ± 2 (1U) 20 มล 30 มิลลิลิตร 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง30 32 ± 10 (ลา) 7.5 มิลลิลิตร 40 มิลลิ 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง60 60 ± 10 (lo-) 2 มิลลิลิตร 85 มิลลิ 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง80 80 ± 10 (10) 1.2 มิลลิลิตร 43 มิลลิ 200 มิลลิลิตร 0.30 มิลลิทอง 105 105 ± 25 (1a) 1.2 มิลลิลิตร 39 มิลลิ 200 มิลลิลิตร 0.33 มิลลิตัวอย่างที่3: Biocompatible ฮาฟเนียมนาโนออกไซด์และ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนของการรวมตัวกัน (3.5% w / w) ภายในเจล (เมทิล 5% w / w การ ) เจลก่อนที่ทับถมอยู่บนเตียงเนื้องอก. 5 ปริมาณของสารแขวนลอยในน้ำของอนุภาคนาโน Hf02 ชีวภาพจากตัวอย่าง 1 คือการเพิ่มปริมาณของเจลตามปกติกับลิเมอร์(เมทิล) ความเข้มข้นนอนอยู่ระหว่าง 4.5% w / w การและ 5,5% w / w การ อัตราส่วนปริมาณระหว่างการหยุดชะงักของอนุภาคนาโน Hf02 และเจลที่ถูกปรับให้ถึงอนุภาคนาโน Hf02 สุดท้ายเข้มข้นภายในเจล 3.5% (w / w) การเตรียมการที่ได้รับเพื่อให้มีการผสมตามปกติกับแม่เหล็ก10 กวนหรือไม้พาย. ตัวอย่างที่ 4: Biocompatible ฮาฟเนียมออกไซด์อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนของการรวมตัวกัน (3.5% w / w) ภายในเจล (เมทิล 9% w / w การ ) เจลก่อนที่ทับถมอยู่บนเตียงเนื้องอก. 15 ปริมาณของสารแขวนลอยในน้ำของอนุภาคนาโน Hf02 ชีวภาพจากตัวอย่าง 1, มีการเพิ่มปริมาณการเจลตามปกติกับลิเมอร์ (เมทิล) ความเข้มข้นนอนอยู่ระหว่าง 8,5% w / w การและ 9,5% w / w การ อัตราส่วนปริมาณระหว่างการหยุดชะงักของอนุภาคนาโน Hf02 และเจลที่ถูกปรับให้ถึงอนุภาคนาโน Hf02 สุดท้ายความเข้มข้น20 ภายในเจล 3.5% (w / w). ตัวอย่างที่ 5: การประเมินโดยไมโครตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์ (UCT) ที่มีคุณภาพของ "การนอนเนื้องอก" การวาดภาพที่ได้รับเมื่อใช้อนุภาคนาโนที่ฝังอยู่ในไฮโดรเจลจากตัวอย่าง 3. 25 วัตถุประสงค์ของการทดลองนี้คือการประเมินการโดย UCT (ตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์), คุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพโดยอนุภาคนาโน (NPS). การทดสอบ เจลจากตัวอย่าง 3 ถูกปลูกฝัง (ฝาก) ลงในช่องด้านซ้ายโดยผ่าตัดของHCT 116 xenografted เนื้องอก (มะเร็งลำไส้ใหญ่ของมนุษย์เซลล์มะเร็ง) ในหนูเปลือย 30 การวิเคราะห์ UCT ได้ดำเนินการ 2 วัน, 8 วันและ 20 วันหลังการปลูกถ่ายเจลเข้าไปในโพรงที่เหลือจากการผ่าตัดของเนื้องอกเพื่อประเมินปริมาณที่ถูกครอบครองโดยอนุภาคนาโนและ/ หรือมวลรวมอนุภาคนาโนในเตียงเนื้องอกมากกว่า เวลา. สำหรับเรื่องนี้มีการแบ่งส่วนคู่มือ (ภูมิภาคที่น่าสนใจ (ROIs)) ที่ได้ดำเนินการไปรอบ ๆ โพรงผ่าตัด จากนั้น thresholding ข้างต้น 120 HU ได้ดำเนินการภายในโพรงผ่าตัดเพื่อประเมินการปรากฏตัวของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโนและเพื่อประเมินทั้งสถานที่และปริมาณการครอบครองโดยอนุภาคนาโนเหล่านั้นหรือมวลรวมอนุภาคนาโนสำหรับทั้ง5 หนู รูปที่ 2 ที่มีการจัดแสดงภาพ ii.CT มากกว่าประมาณ 80% ของช่องการวาดภาพเร็วที่สุดเท่าที่2 วันหลังการผ่าตัดและการฝังเจล. ตัวอย่างที่ 6: การประเมินโดยการตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์ (CT) ที่มีคุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพได้เมื่อใช้ อนุภาคนาโนที่ฝังอยู่ในไฮโดรเจลจาก10 ตัวอย่าง 4. วัตถุประสงค์ของการทดลองนี้คือการประเมินการโดย CT (เอ็กซ์เรย์คอมพิวเตอร์), คุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพโดยอนุภาคนาโน (NPS). การทดสอบเจลจากตัวอย่าง 4 ถูกปลูกฝัง (ฝาก) เข้าไปในโพรงที่เหลือจากการผ่าตัดที่ 15 ของ HCT 116 เนื้องอก xenografted (มะเร็งลำไส้ใหญ่ของมนุษย์เซลล์มะเร็ง) ในหนูเปลือย. การวิเคราะห์ CT ได้ดำเนินการ 2 วัน, 9 วันและ 20 วันหลังการปลูกถ่ายเจลลงในช่องด้านซ้ายโดยการผ่าตัดของเนื้องอกเพื่อประเมินปริมาณครอบครองโดยอนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนในเตียงเนื้องอกเมื่อเวลาผ่านไป สำหรับเรื่องนี้มีการแบ่งส่วนคู่มือ (ภูมิภาคที่น่าสนใจ (ROIs)) ที่ได้ดำเนินการไปรอบ ๆ โพรงผ่าตัด 20 จากนั้น thresholding ข้างต้น 120 HU ได้ดำเนินการภายในโพรงผ่าตัดเพื่อที่จะประเมินการปรากฏตัวของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโนและเพื่อประเมินทั้งสถานที่และปริมาณการครอบครองโดยอนุภาคนาโนเหล่านั้นหรือมวลรวมอนุภาคนาโนสำหรับทุกหนู รูปที่ 3 ที่มีการจัดแสดงภาพ CT มากกว่าประมาณ 80% ของการวาดภาพช่องเร็วที่สุดเท่าที่9 วันหลังการผ่าตัดและการฝังเจล. 25
วันหลังจากการสะสมเจลเข้าไปในโพรงที่ได้รับดังต่อไปนี้การผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามการประดิษฐ์ที่ประกอบด้วยเมทิล(5% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรืออนุภาคนาโน 15 มวลรวม (3.5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ /
หรือมวลรวมอนุภาคนาโนs ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีการสะสมเจลลงบนเตียงเนื้องอก.
รูปที่ 3: ภาพ CT จับ 2 วัน, 9 วันและ 20 วันหลังจากการสะสมเจลเข้าไปในโพรง 20 ที่ได้รับต่อไปนี้การ
ผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามการประดิษฐ์ประกอบด้วยเมทิล(9%
w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (3.5% w / w)
ซึ่งประกอบด้วย ในฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s
ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีการสะสมเจลลงบนเตียงเนื้องอก.
รูปที่ 4: ผลกระทบของอนุภาคเข้มข้นในการเพิ่มประสิทธิภาพของปริมาณรังสีที่ใช้คำนวณ Monte Carlo.
รูปที่ 5: การวัดความหนืด (A ที่ 20 ° C และ B ที่ 37 ° C) ของเจลประกอบด้วย 30 กรดไฮยาลูโร (3% w / w) และเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโร (3% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลอนุภาคนาโน (5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์. รูปที่ 6: คลื่นความถี่ FTIR เจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโร (0.1% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (0.26% w / น้ำหนัก) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ เปรียบเทียบกับสเปกตรัมของเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรและ5 ยังมีสเปกตรัมของอนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์. รูปที่ 7: ภาพ CT จับ 30 นาที (D01), 1 วันที่ (D02) 3 วัน (D04) 8 วัน(D09) และ 22 วัน (D23) หลังจากการสะสมเจลเข้าไปในโพรงที่ได้รับดังต่อไปนี้10 การผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงการวาดภาพเตียงเนื้องอกโดยใช้ไฮโดรเจลชีวภาพตามเพื่อการประดิษฐ์ เจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรของ (3.8% w / w), กรดไฮยาลูโร (2,5% w / w) และอัตโนมัติ cross-linked กรดไฮยาลูโร (3% w / w) ซึ่งประกอบรวมด้วยอนุภาคนาโนชีวภาพและ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโนวินาที (5% w / w) ประกอบด้วยฮาฟเนียมออกไซด์ อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโน s ได้รับการผสมกับเจลก่อนที่จะมีเจล15 ทับถมเป็นเตียงเนื้องอก. ตัวอย่างเช่นฉัน: Biocompatible ฮาฟเนียมออกไซด์ (Hf02) หรืออนุภาคนาโนอนุภาคนาโน 20 มวลโดยใช้ hexametaphosphate โซเดียมเป็นตัวแทนการเคลือบ ไฮดรอกไซ Tetramethylammonium (TMAOH) วิธีการแก้ปัญหาจะถูกเพิ่มในการแก้ปัญหา HfC14 นอกจากนี้วิธีการแก้ปัญหา TMAOH จะดำเนินการจนถึงค่า pH ของการระงับสุดท้ายถึงค่า pH ประกอบรวมด้วยงระหว่างวันที่ 7 และ 13 ตะกอนสีขาวจะได้รับ. 25 ตะกอนจะถูกโอนต่อไปในหม้อนึ่งความดันและให้ความร้อนที่อุณหภูมิประกอบรวมด้วย d ระหว่าง 120 ° C และ 300 ° C ที่จะดำเนินการตกผลึก หลังจากที่ระบายความร้อนจะถูกระงับการล้างด้วยน้ำบริสุทธิ์. สารละลายโซเดียม hexametaphosphate แล้วจะถูกเพิ่มในการระงับการล้างและพีเอชจะมีการปรับค่า pH ที่จะประกอบรวมด้วย d ระหว่างวันที่ 6 และ 8 30 ทำหมันของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโน ระงับ s จะดำเนินการก่อนในหลอดทดลองหรือการทดลองในร่างกาย. ตัวอย่างที่ 2:. การสังเคราะห์และลักษณะทางกายภาพและทางเคมีของอนุภาคนาโนทองคำที่มีขนาดที่แตกต่างกันอนุภาคนาโนทองคำจะได้รับการลดลงของคลอไรด์ทองกับโซเดียมซิเตรทใน5 สารละลาย พิธีสารดัดแปลงมาจากจี Frens ธรรมชาติวิทยาศาสตร์กายภาพ 241 (1973) 21. ในการทดลองโดยทั่วไปวิธีการแก้ปัญหา HAuC14 อุ่นให้เดือด ต่อมาการแก้ปัญหาโซเดียมซิเตรทจะถูกเพิ่ม วิธีการแก้ปัญหาที่เกิดขึ้นจะยังคงอยู่ภายใต้การเดือดเป็นระยะเวลาครั้งละ 5 นาที. 10 ขนาดอนุภาคนาโนที่จะมีการปรับจาก 15 นาโนเมตรถึง 105 นาโนเมตรโดยระมัดระวังการปรับเปลี่ยนซิเตรตเมื่อเทียบกับอัตราส่วนสารตั้งต้นทอง(cf ตารางที่ 1). ที่จัดทำขึ้นเป็นอนุภาคนาโนทอง ' สารแขวนลอยที่มีความเข้มข้นจากนั้นใช้อุปกรณ์กรองด้วยเมมเบรนเซลลูโลส kDa 30. สนองที่เกิดขึ้นจะถูกกรองในที่สุดผ่านตัวกรองเมมเบรนตัดโกศ 0.22 15 ภายใต้ประทุนราบเรียบและเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส. ขนาดอนุภาคจะถูกกำหนดในกว่า 200 อนุภาคโดย โดยใช้การส่งอิเล็กทรอนิกส์. กล้องจุลทรรศน์ (TEM) และเมื่อพิจารณาจากมิติอนุภาคนาโนที่ยาวที่สุดของอนุภาคแต่ละตารางที่1: ตัวอย่างขนาดอนุภาค (นาโนเมตร) การสังเคราะห์สารซิเตรตHAuC14 ทอง 15 15 ± 2 (1U) 20 มล 30 มิลลิลิตร 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง30 32 ± 10 (ลา) 7.5 มิลลิลิตร 40 มิลลิ 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง60 60 ± 10 (lo-) 2 มิลลิลิตร 85 มิลลิ 500 มิลลิลิตร 0.25 มิลลิทอง80 80 ± 10 (10) 1.2 มิลลิลิตร 43 มิลลิ 200 มิลลิลิตร 0.30 มิลลิทอง 105 105 ± 25 (1a) 1.2 มิลลิลิตร 39 มิลลิ 200 มิลลิลิตร 0.33 มิลลิตัวอย่างที่3: Biocompatible ฮาฟเนียมนาโนออกไซด์และ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนของการรวมตัวกัน (3.5% w / w) ภายในเจล (เมทิล 5% w / w การ ) เจลก่อนที่ทับถมอยู่บนเตียงเนื้องอก. 5 ปริมาณของสารแขวนลอยในน้ำของอนุภาคนาโน Hf02 ชีวภาพจากตัวอย่าง 1 คือการเพิ่มปริมาณของเจลตามปกติกับลิเมอร์(เมทิล) ความเข้มข้นนอนอยู่ระหว่าง 4.5% w / w การและ 5,5% w / w การ อัตราส่วนปริมาณระหว่างการหยุดชะงักของอนุภาคนาโน Hf02 และเจลที่ถูกปรับให้ถึงอนุภาคนาโน Hf02 สุดท้ายเข้มข้นภายในเจล 3.5% (w / w) การเตรียมการที่ได้รับเพื่อให้มีการผสมตามปกติกับแม่เหล็ก10 กวนหรือไม้พาย. ตัวอย่างที่ 4: Biocompatible ฮาฟเนียมออกไซด์อนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนของการรวมตัวกัน (3.5% w / w) ภายในเจล (เมทิล 9% w / w การ ) เจลก่อนที่ทับถมอยู่บนเตียงเนื้องอก. 15 ปริมาณของสารแขวนลอยในน้ำของอนุภาคนาโน Hf02 ชีวภาพจากตัวอย่าง 1, มีการเพิ่มปริมาณการเจลตามปกติกับลิเมอร์ (เมทิล) ความเข้มข้นนอนอยู่ระหว่าง 8,5% w / w การและ 9,5% w / w การ อัตราส่วนปริมาณระหว่างการหยุดชะงักของอนุภาคนาโน Hf02 และเจลที่ถูกปรับให้ถึงอนุภาคนาโน Hf02 สุดท้ายความเข้มข้น20 ภายในเจล 3.5% (w / w). ตัวอย่างที่ 5: การประเมินโดยไมโครตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์ (UCT) ที่มีคุณภาพของ "การนอนเนื้องอก" การวาดภาพที่ได้รับเมื่อใช้อนุภาคนาโนที่ฝังอยู่ในไฮโดรเจลจากตัวอย่าง 3. 25 วัตถุประสงค์ของการทดลองนี้คือการประเมินการโดย UCT (ตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์), คุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพโดยอนุภาคนาโน (NPS). การทดสอบ เจลจากตัวอย่าง 3 ถูกปลูกฝัง (ฝาก) ลงในช่องด้านซ้ายโดยผ่าตัดของHCT 116 xenografted เนื้องอก (มะเร็งลำไส้ใหญ่ของมนุษย์เซลล์มะเร็ง) ในหนูเปลือย 30 การวิเคราะห์ UCT ได้ดำเนินการ 2 วัน, 8 วันและ 20 วันหลังการปลูกถ่ายเจลเข้าไปในโพรงที่เหลือจากการผ่าตัดของเนื้องอกเพื่อประเมินปริมาณที่ถูกครอบครองโดยอนุภาคนาโนและ/ หรือมวลรวมอนุภาคนาโนในเตียงเนื้องอกมากกว่า เวลา. สำหรับเรื่องนี้มีการแบ่งส่วนคู่มือ (ภูมิภาคที่น่าสนใจ (ROIs)) ที่ได้ดำเนินการไปรอบ ๆ โพรงผ่าตัด จากนั้น thresholding ข้างต้น 120 HU ได้ดำเนินการภายในโพรงผ่าตัดเพื่อประเมินการปรากฏตัวของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโนและเพื่อประเมินทั้งสถานที่และปริมาณการครอบครองโดยอนุภาคนาโนเหล่านั้นหรือมวลรวมอนุภาคนาโนสำหรับทั้ง5 หนู รูปที่ 2 ที่มีการจัดแสดงภาพ ii.CT มากกว่าประมาณ 80% ของช่องการวาดภาพเร็วที่สุดเท่าที่2 วันหลังการผ่าตัดและการฝังเจล. ตัวอย่างที่ 6: การประเมินโดยการตรวจเอกซเรย์คอมพิวเตอร์ (CT) ที่มีคุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพได้เมื่อใช้ อนุภาคนาโนที่ฝังอยู่ในไฮโดรเจลจาก10 ตัวอย่าง 4. วัตถุประสงค์ของการทดลองนี้คือการประเมินการโดย CT (เอ็กซ์เรย์คอมพิวเตอร์), คุณภาพของ "เตียงเนื้องอก" การวาดภาพโดยอนุภาคนาโน (NPS). การทดสอบเจลจากตัวอย่าง 4 ถูกปลูกฝัง (ฝาก) เข้าไปในโพรงที่เหลือจากการผ่าตัดที่ 15 ของ HCT 116 เนื้องอก xenografted (มะเร็งลำไส้ใหญ่ของมนุษย์เซลล์มะเร็ง) ในหนูเปลือย. การวิเคราะห์ CT ได้ดำเนินการ 2 วัน, 9 วันและ 20 วันหลังการปลูกถ่ายเจลลงในช่องด้านซ้ายโดยการผ่าตัดของเนื้องอกเพื่อประเมินปริมาณครอบครองโดยอนุภาคนาโนและ / หรือมวลรวมอนุภาคนาโนในเตียงเนื้องอกเมื่อเวลาผ่านไป สำหรับเรื่องนี้มีการแบ่งส่วนคู่มือ (ภูมิภาคที่น่าสนใจ (ROIs)) ที่ได้ดำเนินการไปรอบ ๆ โพรงผ่าตัด 20 จากนั้น thresholding ข้างต้น 120 HU ได้ดำเนินการภายในโพรงผ่าตัดเพื่อที่จะประเมินการปรากฏตัวของอนุภาคนาโนหรือมวลรวมอนุภาคนาโนและเพื่อประเมินทั้งสถานที่และปริมาณการครอบครองโดยอนุภาคนาโนเหล่านั้นหรือมวลรวมอนุภาคนาโนสำหรับทุกหนู รูปที่ 3 ที่มีการจัดแสดงภาพ CT มากกว่าประมาณ 80% ของการวาดภาพช่องเร็วที่สุดเท่าที่9 วันหลังการผ่าตัดและการฝังเจล. 25
การแปล กรุณารอสักครู่..
รูปที่ 2 : ไมโคร CT ( ICT ) ภาพที่ถ่าย 2 วัน 8 วัน และ 20 วัน หลังจากเจลสะสมเข้าไปในช่องได้ตามการผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงเนื้องอกเตียงการใช้ไฮโดรเจลแสดงไปตามการประดิษฐ์ประกอบด้วย
,เมธิลเซลลูโลส ( 5% w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ อนุภาคนาโน 15 มวลรวม ( 3.5 % w / w ) ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ โดยอนุภาคนาโนและ / หรือ
มวลรวมอนุภาคนาโน S ได้ถูกผสมกับเจลก่อนเจลสะสมเป็นเนื้องอกที่เตียง
รูปที่ 3 : CT ภาพที่ถ่าย 2 วัน9 วัน และ 20 วัน หลังจากเจลสะสมใน 20 ช่องได้ตามการผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงเนื้องอกเตียงการใช้
i แสดงไปตามการประดิษฐ์ประกอบด้วยเมธิลเซลลูโลส ( 9 %
w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ( 3.5 % w / w )
ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ โดยอนุภาคนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ได้
ผสมกับเจลก่อนเจลสะสมเป็นเนื้องอกที่เตียง
รูปที่ 4 : ผลของความเข้มข้นของอนุภาคในการเพิ่มปริมาณรังสีโดยใช้ Monte Carlo
รูปที่ 5 : การคำนวณการวัดความหนืด ( ที่อุณหภูมิ 20 ° C และ B ที่ 37 ° C ) ของเจลประกอบด้วย 30 กรดไฮยาลูโร ( 3 % w / w ) และเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรนิก ( 3 % w / w )
ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ อนุภาคนาโนมวลรวม ( 5% w / w ) ซึ่งใน
ด.ญ. ออกไซด์
รูปที่ 6 : FTIR สเปกตรัมของเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรนิก ( 01% w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ( 0.26 % w / w ) ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ เทียบกับสเปกตรัมของเจลที่ประกอบด้วยกรด hyaluronic และ
5 กับสเปกตรัมของอนุภาคนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน s ประกอบไปด้วย
ด.ญ. ออกไซด์
รูปที่ 7 : CT บันทึกภาพ 30 นาที ( C10 ) 1 วัน ( d02 )3 วัน ( D02 ) 8 วัน
( D07 ) 22 วัน ( d23 ) เจลหลังการเข้าไปในโพรงที่ได้รับดังต่อไปนี้
10 การผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงเนื้องอกเตียงการใช้เจลไปแสดงตาม
การประดิษฐ์ . เจลที่ประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรนิก ( 3.8 % w / w ) , กรดไฮยาลูโรนิก ( 25% w / w ) และรถยนต์ข้ามเชื่อมโยง กรดไฮยาลูโรนิก ( 3 % w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ( 5% w / w ) ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ โดยอนุภาคนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ได้ถูกผสมกับเจลก่อนเจล
15 สะสมเป็นเนื้องอกเตียง
ผมตัวอย่าง : ตัวอย่างด.ญ. ออกไซด์อนุภาคนาโนหรือทางชีวภาพ ( hf02 ) สำหรับ 20 กลุ่ม โดยใช้ Hexametaphosphate โซเดียมเป็นสารเคลือบ .
เป็น tetramethylammonium โซดาไฟ ( tmaoh ) แก้ไขปัญหาเพิ่ม hfc14 โซลูชั่น นอกจากนี้ โซลูชั่น tmaoh แสดงจนกว่า ของช่วงล่าง สุดท้ายถึง Ph D ประกอบรวมด้วยระหว่าง 7 และ 13 เป็นตะกอนสีขาว
)25 ที่ต่อไปคือย้ายในหม้อนึ่งความดันและความร้อนที่อุณหภูมิประกอบรวมด้วย 120 ° C และ D
ระหว่าง 300 ° C เพื่อดําเนินการตกผลึก หลังจากเย็นตัวรถล้างด้วยเดอโซลูชั่น Hexametaphosphate โซเดียมไอออนไนซ์น้ำ .
แล้วเพิ่มเข้าไปซักพักและปรับความเป็นกรดเป็นด่างประกอบรวมด้วย D ระหว่าง 6 และ 8 .
,เมธิลเซลลูโลส ( 5% w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ อนุภาคนาโน 15 มวลรวม ( 3.5 % w / w ) ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ โดยอนุภาคนาโนและ / หรือ
มวลรวมอนุภาคนาโน S ได้ถูกผสมกับเจลก่อนเจลสะสมเป็นเนื้องอกที่เตียง
รูปที่ 3 : CT ภาพที่ถ่าย 2 วัน9 วัน และ 20 วัน หลังจากเจลสะสมใน 20 ช่องได้ตามการผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงเนื้องอกเตียงการใช้
i แสดงไปตามการประดิษฐ์ประกอบด้วยเมธิลเซลลูโลส ( 9 %
w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ( 3.5 % w / w )
ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ โดยอนุภาคนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ได้
ผสมกับเจลก่อนเจลสะสมเป็นเนื้องอกที่เตียง
รูปที่ 4 : ผลของความเข้มข้นของอนุภาคในการเพิ่มปริมาณรังสีโดยใช้ Monte Carlo
รูปที่ 5 : การคำนวณการวัดความหนืด ( ที่อุณหภูมิ 20 ° C และ B ที่ 37 ° C ) ของเจลประกอบด้วย 30 กรดไฮยาลูโร ( 3 % w / w ) และเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรนิก ( 3 % w / w )
ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ อนุภาคนาโนมวลรวม ( 5% w / w ) ซึ่งใน
ด.ญ. ออกไซด์
รูปที่ 6 : FTIR สเปกตรัมของเจลประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรนิก ( 01% w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ( 0.26 % w / w ) ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ เทียบกับสเปกตรัมของเจลที่ประกอบด้วยกรด hyaluronic และ
5 กับสเปกตรัมของอนุภาคนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน s ประกอบไปด้วย
ด.ญ. ออกไซด์
รูปที่ 7 : CT บันทึกภาพ 30 นาที ( C10 ) 1 วัน ( d02 )3 วัน ( D02 ) 8 วัน
( D07 ) 22 วัน ( d23 ) เจลหลังการเข้าไปในโพรงที่ได้รับดังต่อไปนี้
10 การผ่าตัดเนื้องอกออกแสดงเนื้องอกเตียงการใช้เจลไปแสดงตาม
การประดิษฐ์ . เจลที่ประกอบด้วยกรดไฮยาลูโรนิก ( 3.8 % w / w ) , กรดไฮยาลูโรนิก ( 25% w / w ) และรถยนต์ข้ามเชื่อมโยง กรดไฮยาลูโรนิก ( 3 % w / w ) ซึ่งประกอบรวมด้วยทางชีวภาพนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ( 5% w / w ) ซึ่งในฮัฟเนี่ยมออกไซด์ โดยอนุภาคนาโน และ / หรือ มวลรวมอนุภาคนาโน S ได้ถูกผสมกับเจลก่อนเจล
15 สะสมเป็นเนื้องอกเตียง
ผมตัวอย่าง : ตัวอย่างด.ญ. ออกไซด์อนุภาคนาโนหรือทางชีวภาพ ( hf02 ) สำหรับ 20 กลุ่ม โดยใช้ Hexametaphosphate โซเดียมเป็นสารเคลือบ .
เป็น tetramethylammonium โซดาไฟ ( tmaoh ) แก้ไขปัญหาเพิ่ม hfc14 โซลูชั่น นอกจากนี้ โซลูชั่น tmaoh แสดงจนกว่า ของช่วงล่าง สุดท้ายถึง Ph D ประกอบรวมด้วยระหว่าง 7 และ 13 เป็นตะกอนสีขาว
)25 ที่ต่อไปคือย้ายในหม้อนึ่งความดันและความร้อนที่อุณหภูมิประกอบรวมด้วย 120 ° C และ D
ระหว่าง 300 ° C เพื่อดําเนินการตกผลึก หลังจากเย็นตัวรถล้างด้วยเดอโซลูชั่น Hexametaphosphate โซเดียมไอออนไนซ์น้ำ .
แล้วเพิ่มเข้าไปซักพักและปรับความเป็นกรดเป็นด่างประกอบรวมด้วย D ระหว่าง 6 และ 8 .
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- criteria
- มันอาจเป็นแค่ภายนอก
- หมวกคลุมผมอาบน้ำ
- Decrease in trade and other payables – r
- พรุ่งนี้ก็เช้าแล้ว
- Members of clade-III SPL genes have dive
- รูปภาพคู่รูปแรก
- ฉันอยากได้รถยนต์
- มันติดคอฉัน
- I'm M
- ยอดขาย
- ความรู้กี่ยวกับการจัดการขยะมูลฝอย อยู่ใน
- Parce que je garde le souvenir de à la p
- You can bring a friend
- at least 1 lower case and 1 upper case c
- คอยให้คำปรึกษาคอยให้กำลังใจในยามที่ฉันท้
- ฝันหวานเหมือนกันนะ ที่รัก
- Tell Others About Yourself
- ทำไมคุณถึงคิด
- Hello, my name is... My nickname is rose
- After the reaction (2 h of reaction time
- Yes..I think can reach ..6.00pm
- ฉันขอให้คุณดีกลับฉันจริงๆๆ
- we are love together forever .
