After feeding the female mosquitoes

After feeding the female mosquitoes with blood for 3 days, the
oviposition containers that were in the breeding cages were
removed. To synchronize hatching, the filter paper was removed and left to dry for 3 days at room temperature for the
embryos to mature; following this period, hatching was stimulated to obtain the larvae for the experiments. When they
reached the larval stage, between the third and fourth instar,
they were counted, separated, and transferred with Pasteur
pipettes to plastic cups with 100 mL of the same water without
chlorine, where a diagnostic assay (DA) was conducted,
which determined the concentrations that cause mortality
between 2 and 98 % in the larvae of A. aegypti. For the
experiment DA, a total of 120 larvae distributed in three
concentrations (1,000, 300, and 30 ppm) were used with four
replicas each, along with control treatment without the evaluated oil and with DMSO at 0.5 %. Mortality was assessed by
recording the larvae that were unable to reach the surface of the water when the beaker of the experiment was tapped; they
were considered dead (WHO 1981, 1992). Subsequently, five
concentrations were established for each oil. In each, four
replicas were conducted per concentration in addition to the
control treatment, which was the same as that employed to
determine those of the DA. Each completed experiment was
repeated three times on different days. Larval mortality readngs were taken at two times, one at 24 h and the other at 48 h.
The results of mortality and survival of the bioassay were
subjected to probit analysis

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

หลังจากให้อาหารยุงหญิงมีเลือด 3 วัน การoviposition ภาชนะที่อยู่ในกรงผสมพันธุ์ได้เอาออก การซิงโครไนส์ฟักไข่ กระดาษกรองเอาออก และทิ้งให้แห้งที่อุณหภูมิห้อง 3 วันตัวอ่อนจะเป็นผู้ใหญ่ ต่อไปนี้ช่วงนี้ ฟักไข่ถูกกระตุ้นเพื่อรับตัวอ่อนสำหรับการทดลอง เมื่อพวกเขาถึงระยะตัวอ่อน ระหว่าง instar สาม และสี่พวกเขานับ แยก และโอนกับปาสเตอร์จะเป็นแบบถ้วยพลาสติก 100 มิลลิลิตรของน้ำโดยไม่คลอรีน ที่ดำเนินการทดสอบวินิจฉัย (DA)ซึ่งกำหนดความเข้มข้นที่ทำให้เกิดการตายระหว่าง 2 และ 98% ในตัวอ่อนของ A. aegypti สำหรับการทดลองดา จำนวน 120 ตัวอ่อนที่กระจายในสามความเข้มข้น (1,000, 300 และ 30 ppm) ใช้กับสี่แบบจำลองแต่ละ พร้อมกับควบคุมรักษาไม่ มีน้ำมันประเมิน และ DMSO ที่ 0.5% ตายถูกประเมินโดยตัวอ่อนที่ไม่สามารถเข้าถึงผิวน้ำเมื่อถูกเคาะบีกเกอร์ของการทดสอบ การบันทึก พวกเขาถูกถือว่าตาย (WHO 1981, 1992) ต่อมา ห้าความเข้มข้นก่อตั้งสำหรับน้ำมันแต่ละ ในแต่ละ สี่ได้ดำเนินการต่อความเข้มข้นนอกเหนือไปจากแบบจำลองการควบคุมรักษา ซึ่งเป็นที่เดียวกันนั้นไปตรวจสอบของ DA. แต่ละการทดลองเสร็จสมบูรณ์ได้ทำซ้ำ 3 ครั้งในวันต่าง ๆ Readngs ตายอ่อนถ่ายสองครั้ง หนึ่งใน 24 ชม.และอื่น ๆ ที่ 48 hผลของอัตราการตายและความอยู่รอดของการ bioassayภายใต้การวิเคราะห์ probit

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

หลังจากกินยุงตัวเมียด้วยเลือดเป็นเวลา 3 วันใน
ภาชนะบรรจุที่วางไข่ที่อยู่ในกรงเพาะพันธุ์ที่ถูก
ลบออก เพื่อประสานการฟักไข่, กระดาษกรองจะถูกลบออกและทิ้งให้แห้งเป็นเวลา 3 วันที่อุณหภูมิห้องสำหรับ
ตัวอ่อนเติบโต; ต่อไปเวลานี้อัตราการฟักถูกกระตุ้นเพื่อให้ได้ตัวอ่อนสำหรับการทดลอง เมื่อพวกเขา
มาถึงตัวอ่อนระยะระหว่างวัยที่สามและสี่
พวกเขานับแยกออกจากกันและย้ายกับปาสเตอร์
ปิเปตถ้วยพลาสติกที่มี 100 มิลลิลิตรของน้ำเดียวกันโดยไม่ต้อง
คลอรีนที่การทดสอบการวินิจฉัย (DA) คือการดำเนินการ
ที่กำหนด ความเข้มข้นที่ทำให้เกิดการเสียชีวิต
ระหว่าง 2 และ 98% ในตัวอ่อนของ A. aegypti สำหรับ
การทดลอง DA รวม 120 ตัวอ่อนกระจายในสาม
ระดับความเข้มข้น (1,000, 300, และ 30 ppm) ถูกนำมาใช้กับสี่
แบบจำลองแต่ละพร้อมกับการควบคุมการรักษาโดยไม่ต้องน้ำมันประเมินผลและมี DMSO ที่ 0.5% อัตราการเสียชีวิตได้รับการประเมินโดย
การบันทึกตัวอ่อนที่ไม่สามารถที่จะไปถึงพื้นผิวของน้ำเมื่อบีกเกอร์ของการทดสอบที่ถูกเคาะ; พวกเขา
ได้รับการพิจารณาความตาย (WHO 1981, 1992) ต่อจากนั้นห้า
ระดับความเข้มข้นที่ถูกจัดตั้งขึ้นสำหรับแต่ละน้ำมัน ในแต่ละสี่
แบบจำลองที่ได้ดำเนินการต่อความเข้มข้นนอกเหนือไปจาก
การควบคุมการรักษาซึ่งเป็นเช่นเดียวกับที่ใช้ในการ
ตรวจสอบของผู้ DA การทดสอบแต่ละเสร็จ
ซ้ำสามครั้งในวันที่แตกต่างกัน readngs การตายของตัวอ่อนที่ถูกนำสองครั้งหนึ่งในเวลา 24 ชั่วโมงและอื่น ๆ ที่ 48 ชม.
ผลของการตายและความอยู่รอดของชีวภาพที่ถูก
ยัดเยียดให้วิเคราะห์ probit

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

หลังจากให้อาหารยุงตัวเมียเลือด 3 วันภาชนะที่เป็นแหล่งเพาะพันธุ์วางไข่กรงคือลบออก เพื่อประสานฟัก , ไส้กรองกระดาษจะถูกลบออกและทิ้งให้แห้ง เป็นเวลา 3 วัน ที่อุณหภูมิห้อง สำหรับเมื่อเป็นผู้ใหญ่ ต่อระยะเวลาการถูกกระตุ้นเพื่อให้ได้ตัวอ่อนสำหรับการทดลอง เมื่อพวกเขาถึงระยะตัวอ่อน ระหว่างวัยที่สามและสี่พวกเขานับแยกและโอนกับปาสเตอร์ปิเปตกับถ้วยพลาสติกด้วย 100 มิลลิลิตรของน้ำเดียวกัน โดยไม่มีคลอรีนที่วินิจฉัย assay ( ดา ) คือทดสอบซึ่งกำหนดให้ความเข้มข้นที่อัตราการตายระหว่าง 2 และ 98% ในตัวอ่อนของลูกน้ำยุงลาย . . . สำหรับการทดลองดา รวม 120 กระจายใน 3 ตัวอ่อน( ( 1 , 300 และ 30 ppm ) ใช้กับสี่แบบจําลองแต่ละ พร้อมกับการรักษาควบคุมได้โดยไม่ต้องประเมินน้ำมันและ DMSO ที่ 0.5% อัตราการตายและโดยบันทึกหนอนที่ไม่สามารถถึงพื้นผิวของน้ำ เมื่อบีกเกอร์ทดลองเคาะ ; พวกเขามีการพิจารณาความตาย ( 1981 , 1992 ) ต่อมา ห้าความเข้มข้นขึ้นในน้ำมัน ในแต่ละสี่แบบจําลองทดสอบต่อสมาธิในการการรักษาควบคุม ซึ่งเป็นเดียวกับที่ใช้ตรวจสอบของดา . เสร็จสิ้นในแต่ละการทดลองซ้ำ 3 ครั้งในวันที่ต่างกัน หนอนตาย readngs ถ่าย 2 ครั้ง ใน 24 ชั่วโมง และอื่น ๆ ที่เวลา 48 ชั่วโมงผลของการตายและความอยู่รอดของพันธุ์คือภายใต้การวิเคราะห์ของตัว