- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
The aetiology of MSGS has not been
The aetiology of MSGS has not been fully elucidated, although multiple
infectious agents have been observed in several organs by histopathology,
transmission electron microscopy (TEM), and
polymerase chain reaction (PCR) methods (Chayaburakul et al.,
2004; Anantasomboon et al., 2006). Most significantly, multiple
spheroids were observed in the lymphoid organs and shown to
contain several viruses of known and unknown types (Anantasomboon
et al., 2006; Sritunyalucksana et al., 2006).
Hepatopancreatic
cells of affected shrimp sometimes also showed the presence of
inclusions of monodon baculovirus (MBV), hepatopancreatic parvovirus
(HPV) or a currently unidentified microsporidian.
Microsporidia are obligate intracellular parasites known to infect
a wide range of eukaryotic hosts. Development of the parasite generally
occurs within the cytoplasm of the host-cell via nuclear proliferation,
and spore formation (sporogony), though certain genera are
known to undergo similar development within the host nucleoplasm
(Lom and Dyková, 2002; Stentiford and Bateman, 2007; Stentiford
et al., 2007).
Several genera of microsporidia have been
reported to infect crustacean hosts. These include Agmasoma, Ameson,
Nosema, Pleistophora, Tuzetia, Thelohania, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora and Enterospora (Landgdon,
1991; Larsson et al., 1996, 1997, 1998; Lightner, 1996; Canning
et al., 2002; Refardt et al., 2002; Moodie et al., 2003; Amogan et al.,
2006; Stentiford and Bateman, 2007). Various crustacean organs
and tissues have been reported to be infected (Sprague et al.,
1992; Anderson et al., 1989; Landgdon, 1991; Larsson et al., 1996,
1997, 1998; Lom et al., 2001). For example, Pasharawipas and Flegel
(1994) reported infections of Agmasoma penaei in the muscles and
connective tissue of Penaeus merguensis and P. monodon. Later, Canning
et al. (2002) reported an infection by Tuzetia weidneri in the
muscles of Penaeus setiferus and Penaeus aztecus. Pathogenesis involved
progression of multifocal lesions to whole muscle blocks
and abdominal segments of the shrimp, leading to a condition
termed ‘cotton tail’ disease. Lightner (1996) has also reported microsporidian
infections in muscle tissue of penaeid shrimp.Few microsporidians have been shown to infect only the tubule
epithelial cells of the crustacean hepatopancreas (Anderson et al.,
1989; Hudson et al., 2001;Wangand Chen, 2007; Stentiford and Bateman,
2007; Stentiford et al., 2007). The publications by Stentiford
et al. describe such infections of two European crab species by a
microsporidians placed in a new genus of microsporidia (Enterospora)
within the family Enterocytozoonidae because of the intranuclear
location of the plasmodia. Placement within the family
Enterocytozoonidae was based upon the formation of precursors
to the spore extrusion apparatus (e.g. polar filament, anchoring disk)
and other organelles within the parasite plasmodia (i.e. prior to isolation
of sporoblasts). This discovery opened the possibility of other
representatives of the Enterocytozoonidae within crustaceans.The relatively frequent occurrence of a new cytoplamic microsporidian
that infected only hepatopancreatic tubule epithelial
cells of MSGS-affected P. monodon (Chayaburakul et al., 2004) provided
an opportunity to study its development and taxonomy. This
study focused mostly on histopathological and ultrastructural features
of the parasite, but also included analysis of a portion of its
SSU rRNA gene and comparison the sequence to those of other
microsporidians in public databases.Hepatopancreatic samples prepared by the smear method and
viewed by light microscopy (LM) showed the presence of microsporidian
spores (Fig. 1A) only in the cytoplasm of hepatopancreatic
tubule epithelial cells. Using fresh spore preparations
Fig. 1. Photomicrographs of Enterocytozoon hepatopenaei tubule epithelial cells of the hepatopancreas of Penaeus monodon. (A) H&E-stained smear of hepatopancreatic tissue
showing numerous microsporidian spores (arrows)
infectious agents have been observed in several organs by histopathology,
transmission electron microscopy (TEM), and
polymerase chain reaction (PCR) methods (Chayaburakul et al.,
2004; Anantasomboon et al., 2006). Most significantly, multiple
spheroids were observed in the lymphoid organs and shown to
contain several viruses of known and unknown types (Anantasomboon
et al., 2006; Sritunyalucksana et al., 2006).
Hepatopancreatic
cells of affected shrimp sometimes also showed the presence of
inclusions of monodon baculovirus (MBV), hepatopancreatic parvovirus
(HPV) or a currently unidentified microsporidian.
Microsporidia are obligate intracellular parasites known to infect
a wide range of eukaryotic hosts. Development of the parasite generally
occurs within the cytoplasm of the host-cell via nuclear proliferation,
and spore formation (sporogony), though certain genera are
known to undergo similar development within the host nucleoplasm
(Lom and Dyková, 2002; Stentiford and Bateman, 2007; Stentiford
et al., 2007).
Several genera of microsporidia have been
reported to infect crustacean hosts. These include Agmasoma, Ameson,
Nosema, Pleistophora, Tuzetia, Thelohania, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora and Enterospora (Landgdon,
1991; Larsson et al., 1996, 1997, 1998; Lightner, 1996; Canning
et al., 2002; Refardt et al., 2002; Moodie et al., 2003; Amogan et al.,
2006; Stentiford and Bateman, 2007). Various crustacean organs
and tissues have been reported to be infected (Sprague et al.,
1992; Anderson et al., 1989; Landgdon, 1991; Larsson et al., 1996,
1997, 1998; Lom et al., 2001). For example, Pasharawipas and Flegel
(1994) reported infections of Agmasoma penaei in the muscles and
connective tissue of Penaeus merguensis and P. monodon. Later, Canning
et al. (2002) reported an infection by Tuzetia weidneri in the
muscles of Penaeus setiferus and Penaeus aztecus. Pathogenesis involved
progression of multifocal lesions to whole muscle blocks
and abdominal segments of the shrimp, leading to a condition
termed ‘cotton tail’ disease. Lightner (1996) has also reported microsporidian
infections in muscle tissue of penaeid shrimp.Few microsporidians have been shown to infect only the tubule
epithelial cells of the crustacean hepatopancreas (Anderson et al.,
1989; Hudson et al., 2001;Wangand Chen, 2007; Stentiford and Bateman,
2007; Stentiford et al., 2007). The publications by Stentiford
et al. describe such infections of two European crab species by a
microsporidians placed in a new genus of microsporidia (Enterospora)
within the family Enterocytozoonidae because of the intranuclear
location of the plasmodia. Placement within the family
Enterocytozoonidae was based upon the formation of precursors
to the spore extrusion apparatus (e.g. polar filament, anchoring disk)
and other organelles within the parasite plasmodia (i.e. prior to isolation
of sporoblasts). This discovery opened the possibility of other
representatives of the Enterocytozoonidae within crustaceans.The relatively frequent occurrence of a new cytoplamic microsporidian
that infected only hepatopancreatic tubule epithelial
cells of MSGS-affected P. monodon (Chayaburakul et al., 2004) provided
an opportunity to study its development and taxonomy. This
study focused mostly on histopathological and ultrastructural features
of the parasite, but also included analysis of a portion of its
SSU rRNA gene and comparison the sequence to those of other
microsporidians in public databases.Hepatopancreatic samples prepared by the smear method and
viewed by light microscopy (LM) showed the presence of microsporidian
spores (Fig. 1A) only in the cytoplasm of hepatopancreatic
tubule epithelial cells. Using fresh spore preparations
Fig. 1. Photomicrographs of Enterocytozoon hepatopenaei tubule epithelial cells of the hepatopancreas of Penaeus monodon. (A) H&E-stained smear of hepatopancreatic tissue
showing numerous microsporidian spores (arrows)
0/5000
The aetiology of MSGS has not been fully elucidated, although multiple
infectious agents have been observed in several organs by histopathology,
transmission electron microscopy (TEM), and
polymerase chain reaction (PCR) methods (Chayaburakul et al.,
2004; Anantasomboon et al., 2006). Most significantly, multiple
spheroids were observed in the lymphoid organs and shown to
contain several viruses of known and unknown types (Anantasomboon
et al., 2006; Sritunyalucksana et al., 2006).
Hepatopancreatic
cells of affected shrimp sometimes also showed the presence of
inclusions of monodon baculovirus (MBV), hepatopancreatic parvovirus
(HPV) or a currently unidentified microsporidian.
Microsporidia are obligate intracellular parasites known to infect
a wide range of eukaryotic hosts. Development of the parasite generally
occurs within the cytoplasm of the host-cell via nuclear proliferation,
and spore formation (sporogony), though certain genera are
known to undergo similar development within the host nucleoplasm
(Lom and Dyková, 2002; Stentiford and Bateman, 2007; Stentiford
et al., 2007).
Several genera of microsporidia have been
reported to infect crustacean hosts. These include Agmasoma, Ameson,
Nosema, Pleistophora, Tuzetia, Thelohania, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora and Enterospora (Landgdon,
1991; Larsson et al., 1996, 1997, 1998; Lightner, 1996; Canning
et al., 2002; Refardt et al., 2002; Moodie et al., 2003; Amogan et al.,
2006; Stentiford and Bateman, 2007). Various crustacean organs
and tissues have been reported to be infected (Sprague et al.,
1992; Anderson et al., 1989; Landgdon, 1991; Larsson et al., 1996,
1997, 1998; Lom et al., 2001). For example, Pasharawipas and Flegel
(1994) reported infections of Agmasoma penaei in the muscles and
connective tissue of Penaeus merguensis and P. monodon. Later, Canning
et al. (2002) reported an infection by Tuzetia weidneri in the
muscles of Penaeus setiferus and Penaeus aztecus. Pathogenesis involved
progression of multifocal lesions to whole muscle blocks
and abdominal segments of the shrimp, leading to a condition
termed ‘cotton tail’ disease. Lightner (1996) has also reported microsporidian
infections in muscle tissue of penaeid shrimp.Few microsporidians have been shown to infect only the tubule
epithelial cells of the crustacean hepatopancreas (Anderson et al.,
1989; Hudson et al., 2001;Wangand Chen, 2007; Stentiford and Bateman,
2007; Stentiford et al., 2007). The publications by Stentiford
et al. describe such infections of two European crab species by a
microsporidians placed in a new genus of microsporidia (Enterospora)
within the family Enterocytozoonidae because of the intranuclear
location of the plasmodia. Placement within the family
Enterocytozoonidae was based upon the formation of precursors
to the spore extrusion apparatus (e.g. polar filament, anchoring disk)
and other organelles within the parasite plasmodia (i.e. prior to isolation
of sporoblasts). This discovery opened the possibility of other
representatives of the Enterocytozoonidae within crustaceans.The relatively frequent occurrence of a new cytoplamic microsporidian
that infected only hepatopancreatic tubule epithelial
cells of MSGS-affected P. monodon (Chayaburakul et al., 2004) provided
an opportunity to study its development and taxonomy. This
study focused mostly on histopathological and ultrastructural features
of the parasite, but also included analysis of a portion of its
SSU rRNA gene and comparison the sequence to those of other
microsporidians in public databases.Hepatopancreatic samples prepared by the smear method and
viewed by light microscopy (LM) showed the presence of microsporidian
spores (Fig. 1A) only in the cytoplasm of hepatopancreatic
tubule epithelial cells. Using fresh spore preparations
Fig. 1. Photomicrographs of Enterocytozoon hepatopenaei tubule epithelial cells of the hepatopancreas of Penaeus monodon. (A) H&E-stained smear of hepatopancreatic tissue
showing numerous microsporidian spores (arrows)
infectious agents have been observed in several organs by histopathology,
transmission electron microscopy (TEM), and
polymerase chain reaction (PCR) methods (Chayaburakul et al.,
2004; Anantasomboon et al., 2006). Most significantly, multiple
spheroids were observed in the lymphoid organs and shown to
contain several viruses of known and unknown types (Anantasomboon
et al., 2006; Sritunyalucksana et al., 2006).
Hepatopancreatic
cells of affected shrimp sometimes also showed the presence of
inclusions of monodon baculovirus (MBV), hepatopancreatic parvovirus
(HPV) or a currently unidentified microsporidian.
Microsporidia are obligate intracellular parasites known to infect
a wide range of eukaryotic hosts. Development of the parasite generally
occurs within the cytoplasm of the host-cell via nuclear proliferation,
and spore formation (sporogony), though certain genera are
known to undergo similar development within the host nucleoplasm
(Lom and Dyková, 2002; Stentiford and Bateman, 2007; Stentiford
et al., 2007).
Several genera of microsporidia have been
reported to infect crustacean hosts. These include Agmasoma, Ameson,
Nosema, Pleistophora, Tuzetia, Thelohania, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora and Enterospora (Landgdon,
1991; Larsson et al., 1996, 1997, 1998; Lightner, 1996; Canning
et al., 2002; Refardt et al., 2002; Moodie et al., 2003; Amogan et al.,
2006; Stentiford and Bateman, 2007). Various crustacean organs
and tissues have been reported to be infected (Sprague et al.,
1992; Anderson et al., 1989; Landgdon, 1991; Larsson et al., 1996,
1997, 1998; Lom et al., 2001). For example, Pasharawipas and Flegel
(1994) reported infections of Agmasoma penaei in the muscles and
connective tissue of Penaeus merguensis and P. monodon. Later, Canning
et al. (2002) reported an infection by Tuzetia weidneri in the
muscles of Penaeus setiferus and Penaeus aztecus. Pathogenesis involved
progression of multifocal lesions to whole muscle blocks
and abdominal segments of the shrimp, leading to a condition
termed ‘cotton tail’ disease. Lightner (1996) has also reported microsporidian
infections in muscle tissue of penaeid shrimp.Few microsporidians have been shown to infect only the tubule
epithelial cells of the crustacean hepatopancreas (Anderson et al.,
1989; Hudson et al., 2001;Wangand Chen, 2007; Stentiford and Bateman,
2007; Stentiford et al., 2007). The publications by Stentiford
et al. describe such infections of two European crab species by a
microsporidians placed in a new genus of microsporidia (Enterospora)
within the family Enterocytozoonidae because of the intranuclear
location of the plasmodia. Placement within the family
Enterocytozoonidae was based upon the formation of precursors
to the spore extrusion apparatus (e.g. polar filament, anchoring disk)
and other organelles within the parasite plasmodia (i.e. prior to isolation
of sporoblasts). This discovery opened the possibility of other
representatives of the Enterocytozoonidae within crustaceans.The relatively frequent occurrence of a new cytoplamic microsporidian
that infected only hepatopancreatic tubule epithelial
cells of MSGS-affected P. monodon (Chayaburakul et al., 2004) provided
an opportunity to study its development and taxonomy. This
study focused mostly on histopathological and ultrastructural features
of the parasite, but also included analysis of a portion of its
SSU rRNA gene and comparison the sequence to those of other
microsporidians in public databases.Hepatopancreatic samples prepared by the smear method and
viewed by light microscopy (LM) showed the presence of microsporidian
spores (Fig. 1A) only in the cytoplasm of hepatopancreatic
tubule epithelial cells. Using fresh spore preparations
Fig. 1. Photomicrographs of Enterocytozoon hepatopenaei tubule epithelial cells of the hepatopancreas of Penaeus monodon. (A) H&E-stained smear of hepatopancreatic tissue
showing numerous microsporidian spores (arrows)
การแปล กรุณารอสักครู่..
The aetiology of MSGS has not been fully elucidated, although multiple
infectious agents have been observed in several organs by histopathology,
transmission electron microscopy (TEM), and
polymerase chain reaction (PCR) methods (Chayaburakul et al.,
2004; Anantasomboon et al., 2006). Most significantly, multiple
spheroids were observed in the lymphoid organs and shown to
contain several viruses of known and unknown types (Anantasomboon
et al., 2006; Sritunyalucksana et al., 2006).
Hepatopancreatic
cells of affected shrimp sometimes also showed the presence of
inclusions of monodon baculovirus (MBV), hepatopancreatic parvovirus
(HPV) or a currently unidentified microsporidian.
Microsporidia are obligate intracellular parasites known to infect
a wide range of eukaryotic hosts. Development of the parasite generally
occurs within the cytoplasm of the host-cell via nuclear proliferation,
and spore formation (sporogony), though certain genera are
known to undergo similar development within the host nucleoplasm
(Lom and Dyková, 2002; Stentiford and Bateman, 2007; Stentiford
et al., 2007).
Several genera of microsporidia have been
reported to infect crustacean hosts. These include Agmasoma, Ameson,
Nosema, Pleistophora, Tuzetia, Thelohania, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora and Enterospora (Landgdon,
1991; Larsson et al., 1996, 1997, 1998; Lightner, 1996; Canning
et al., 2002; Refardt et al., 2002; Moodie et al., 2003; Amogan et al.,
2006; Stentiford and Bateman, 2007). Various crustacean organs
and tissues have been reported to be infected (Sprague et al.,
1992; Anderson et al., 1989; Landgdon, 1991; Larsson et al., 1996,
1997, 1998; Lom et al., 2001). For example, Pasharawipas and Flegel
(1994) reported infections of Agmasoma penaei in the muscles and
connective tissue of Penaeus merguensis and P. monodon. Later, Canning
et al. (2002) reported an infection by Tuzetia weidneri in the
muscles of Penaeus setiferus and Penaeus aztecus. Pathogenesis involved
progression of multifocal lesions to whole muscle blocks
and abdominal segments of the shrimp, leading to a condition
termed ‘cotton tail’ disease. Lightner (1996) has also reported microsporidian
infections in muscle tissue of penaeid shrimp.Few microsporidians have been shown to infect only the tubule
epithelial cells of the crustacean hepatopancreas (Anderson et al.,
1989; Hudson et al., 2001;Wangand Chen, 2007; Stentiford and Bateman,
2007; Stentiford et al., 2007). The publications by Stentiford
et al. describe such infections of two European crab species by a
microsporidians placed in a new genus of microsporidia (Enterospora)
within the family Enterocytozoonidae because of the intranuclear
location of the plasmodia. Placement within the family
Enterocytozoonidae was based upon the formation of precursors
to the spore extrusion apparatus (e.g. polar filament, anchoring disk)
and other organelles within the parasite plasmodia (i.e. prior to isolation
of sporoblasts). This discovery opened the possibility of other
representatives of the Enterocytozoonidae within crustaceans.The relatively frequent occurrence of a new cytoplamic microsporidian
that infected only hepatopancreatic tubule epithelial
cells of MSGS-affected P. monodon (Chayaburakul et al., 2004) provided
an opportunity to study its development and taxonomy. This
study focused mostly on histopathological and ultrastructural features
of the parasite, but also included analysis of a portion of its
SSU rRNA gene and comparison the sequence to those of other
microsporidians in public databases.Hepatopancreatic samples prepared by the smear method and
viewed by light microscopy (LM) showed the presence of microsporidian
spores (Fig. 1A) only in the cytoplasm of hepatopancreatic
tubule epithelial cells. Using fresh spore preparations
Fig. 1. Photomicrographs of Enterocytozoon hepatopenaei tubule epithelial cells of the hepatopancreas of Penaeus monodon. (A) H&E-stained smear of hepatopancreatic tissue
showing numerous microsporidian spores (arrows)
infectious agents have been observed in several organs by histopathology,
transmission electron microscopy (TEM), and
polymerase chain reaction (PCR) methods (Chayaburakul et al.,
2004; Anantasomboon et al., 2006). Most significantly, multiple
spheroids were observed in the lymphoid organs and shown to
contain several viruses of known and unknown types (Anantasomboon
et al., 2006; Sritunyalucksana et al., 2006).
Hepatopancreatic
cells of affected shrimp sometimes also showed the presence of
inclusions of monodon baculovirus (MBV), hepatopancreatic parvovirus
(HPV) or a currently unidentified microsporidian.
Microsporidia are obligate intracellular parasites known to infect
a wide range of eukaryotic hosts. Development of the parasite generally
occurs within the cytoplasm of the host-cell via nuclear proliferation,
and spore formation (sporogony), though certain genera are
known to undergo similar development within the host nucleoplasm
(Lom and Dyková, 2002; Stentiford and Bateman, 2007; Stentiford
et al., 2007).
Several genera of microsporidia have been
reported to infect crustacean hosts. These include Agmasoma, Ameson,
Nosema, Pleistophora, Tuzetia, Thelohania, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora and Enterospora (Landgdon,
1991; Larsson et al., 1996, 1997, 1998; Lightner, 1996; Canning
et al., 2002; Refardt et al., 2002; Moodie et al., 2003; Amogan et al.,
2006; Stentiford and Bateman, 2007). Various crustacean organs
and tissues have been reported to be infected (Sprague et al.,
1992; Anderson et al., 1989; Landgdon, 1991; Larsson et al., 1996,
1997, 1998; Lom et al., 2001). For example, Pasharawipas and Flegel
(1994) reported infections of Agmasoma penaei in the muscles and
connective tissue of Penaeus merguensis and P. monodon. Later, Canning
et al. (2002) reported an infection by Tuzetia weidneri in the
muscles of Penaeus setiferus and Penaeus aztecus. Pathogenesis involved
progression of multifocal lesions to whole muscle blocks
and abdominal segments of the shrimp, leading to a condition
termed ‘cotton tail’ disease. Lightner (1996) has also reported microsporidian
infections in muscle tissue of penaeid shrimp.Few microsporidians have been shown to infect only the tubule
epithelial cells of the crustacean hepatopancreas (Anderson et al.,
1989; Hudson et al., 2001;Wangand Chen, 2007; Stentiford and Bateman,
2007; Stentiford et al., 2007). The publications by Stentiford
et al. describe such infections of two European crab species by a
microsporidians placed in a new genus of microsporidia (Enterospora)
within the family Enterocytozoonidae because of the intranuclear
location of the plasmodia. Placement within the family
Enterocytozoonidae was based upon the formation of precursors
to the spore extrusion apparatus (e.g. polar filament, anchoring disk)
and other organelles within the parasite plasmodia (i.e. prior to isolation
of sporoblasts). This discovery opened the possibility of other
representatives of the Enterocytozoonidae within crustaceans.The relatively frequent occurrence of a new cytoplamic microsporidian
that infected only hepatopancreatic tubule epithelial
cells of MSGS-affected P. monodon (Chayaburakul et al., 2004) provided
an opportunity to study its development and taxonomy. This
study focused mostly on histopathological and ultrastructural features
of the parasite, but also included analysis of a portion of its
SSU rRNA gene and comparison the sequence to those of other
microsporidians in public databases.Hepatopancreatic samples prepared by the smear method and
viewed by light microscopy (LM) showed the presence of microsporidian
spores (Fig. 1A) only in the cytoplasm of hepatopancreatic
tubule epithelial cells. Using fresh spore preparations
Fig. 1. Photomicrographs of Enterocytozoon hepatopenaei tubule epithelial cells of the hepatopancreas of Penaeus monodon. (A) H&E-stained smear of hepatopancreatic tissue
showing numerous microsporidian spores (arrows)
การแปล กรุณารอสักครู่..
การศึกษาที่เกี่ยวกับสาเหตุของการ msgs ได้ไม่เต็มที่มาก ถึงแม้ว่าหลาย
การติดเชื้อได้รับการตรวจสอบในหลายอวัยวะโดยกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด เปลี่ยนแปลง
,
( TEM ) และวิธีพีซีอาร์ ( PCR ) วิธีการ ( chayaburakul et al . ,
2004 ; จินตนา บุนนาค et al . , 2006 ) มากที่สุดหลาย
diethyl พบในอวัยวะน้ำเหลืองและแสดง
มีหลายประเภทของไวรัสที่รู้จักและไม่รู้จัก ( จินตนา บุนนาค
et al . , 2006 ; sritunyalucksana et al . , 2006 ) hepatopancreatic
เซลล์กุ้งได้รับผลกระทบ บางครั้งยังพบการปรากฏตัวของ
รวมของ monodon baculovirus ( MBV ) hepatopancreatic parvovirus
( HPV ) หรือในปัจจุบันมีไมโครสปอริเดียน .
ไมโครสปอริเดียจะบังคับปรสิตที่รู้จักกันในเซลล์ติดเชื้อ
ช่วงกว้างของความแตกต่างระหว่างโฮสต์ การพัฒนาของปรสิตทั่วไป
เกิดขึ้นภายในไซโตพลาสซึมของเซลล์โฮสต์ผ่านทางนิวเคลียร์และการสร้างสปอร์ (
sporogony ) แม้ว่าบางจำพวกจะรู้จักกันผ่านการพัฒนาที่คล้ายกัน
( ลมภายในโฮสต์นิวคลีโอพลาสซึม และ dykov . kgm , 2002 ; stentiford และ เบทแมน , 2007 ; stentiford
et al . , 2007 )
ได้หลายสกุลไมโครสปอริเดียรายงานการติดเชื้อวาสุเทพโยธา เหล่านี้รวมถึง agmasoma ameson
, , nosema pleistophora tuzetia thelohania , , , , glugoides flabelliforma vavraia ordospora , , , และ nadelspora enterospora ( landgdon
, 1991 ; ลาร์สสัน et al . , 1996 , 1997 , 1998 ; ไลท์เนอร์ , 1996 ; กระป๋อง
et al . , 2002 ; refardt et al . , et al , 2002 ; มูดี้ . , 2003 ; amogan et al . ,
2006 ; และ stentiford เบทแมน , 2007 ) อวัยวะต่างๆ
ครัสเตเชียนและเนื้อเยื่อได้รับการรายงานที่จะติดเชื้อ ( Sprague
et al . , 1992 ; Anderson et al . , 1989 ; landgdon , 1991 ; ลาร์สสัน et al . , 1996 ,
1997 , 1998 ; ลม et al . , 2001 ) ตัวอย่าง และ ชัยณรงค์ วงศ์ธีรทรัพย์ pasharawipas
( 1994 ) รายงานการติดเชื้อของ agmasoma penaei ในกล้ามเนื้อและเนื้อเยื่อเกี่ยวพันของ
merguensis ต่อกุ้งกุลาดำ และ . ต่อมา กระป๋อง
et al . ( 2002 ) รายงานการติดเชื้อโดย tuzetia weidneri ใน
กล้ามเนื้อและบริเวณโดย setiferus aztecus . ซึ่งเกี่ยวข้องกับความก้าวหน้าของรอยโรคทั้งหมด
สำหรับกล้ามเนื้อหน้าท้องบล็อกและส่วนของกุ้ง ที่นำไปสู่เงื่อนไข
โรคที่เรียกว่าหางฝ้าย ' ดวงไฟ ( 1996 ) ได้รายงานยังไมโครสปอริเดียน
เชื้อในเนื้อเยื่อของกล้ามเนื้อกุ้งตาม ไม่กี่ microsporidians ได้รับการแสดงที่จะติดเชื้อเพียงท่อ
เซลล์บุผิวของครัสเตเชียตับ ( Anderson et al . ,
1989 ; ฮัดสัน et al . , 2001 ; wangand เฉิน , 2007 ; stentiford Bateman
และ , 2007 ; stentiford et al . , 2007 ) สิ่งพิมพ์โดย stentiford
et al . อธิบายเช่นเชื้อสองชนิดปูยุโรปด้วย
microsporidians อยู่ในจีนัสใหม่ของไมโครสปอริเดีย ( enterospora )
ภายใน enterocytozoonidae ครอบครัวเพราะอย่างไร
ที่ตั้งของพลาสโมเดีย . การจัดวางภายใน enterocytozoonidae ครอบครัว
นั้นขึ้นอยู่กับการก่อตัวของบรรพบุรุษ
กับสปอร์รูปเครื่องมือ ( เช่นขั้วโลกเส้นใยสูงยึดดิสก์ )
และออร์แกเนลล์อื่นภายในปรสิตพลาสโมเดีย ( เช่นก่อนแยก
ของ sporoblasts ) การค้นพบนี้เปิดเป็นไปได้ของ
อื่น ๆตัวแทนของ enterocytozoonidae ภายในกลุ่ม ที่เกิดขึ้นค่อนข้างบ่อยของใหม่ cytoplamic ไมโครสปอริเดียน
ที่ติดเชื้อเท่านั้น hepatopancreatic ส่วนเยื่อบุเซลล์ของ msgs
ต่อกุ้งกุลาดำ ( chayaburakul et al . , 2004 ) ให้
โอกาสในการศึกษาพัฒนาและอนุกรมวิธานของ การศึกษานี้มุ่งเน้นส่วนใหญ่ในการศึกษา
และคุณลักษณะของปรสิต แต่ยังรวมถึงการวิเคราะห์ส่วนของ rRNA ยีน
ซื่อและเปรียบเทียบลำดับของผู้ microsporidians อื่น
ในฐานข้อมูลสาธารณะ hepatopancreatic ตัวอย่างที่เตรียมโดยวิธีละเลง
ดูด้วยกล้องจุลทรรศน์แสง ( LM ) พบการปรากฏตัวของเชื้อไมโครสปอริเดียน
( รูปที่ 1A ) เฉพาะในไซโตปลาสซึมของ hepatopancreatic
ส่วนเยื่อบุเซลล์ใช้สดสปอร์การเตรียม
รูปที่ 1 photomicrographs ของ enterocytozoon hepatopenaei ส่วนเซลล์เยื่อของตับและตับอ่อนของกุ้งกุลาดํา ( a ) H & e-stained ละเลงของ hepatopancreatic เนื้อเยื่อ
แสดงสปอร์ไมโครสปอริเดียน ( ลูกศร ) มากมาย
การติดเชื้อได้รับการตรวจสอบในหลายอวัยวะโดยกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด เปลี่ยนแปลง
,
( TEM ) และวิธีพีซีอาร์ ( PCR ) วิธีการ ( chayaburakul et al . ,
2004 ; จินตนา บุนนาค et al . , 2006 ) มากที่สุดหลาย
diethyl พบในอวัยวะน้ำเหลืองและแสดง
มีหลายประเภทของไวรัสที่รู้จักและไม่รู้จัก ( จินตนา บุนนาค
et al . , 2006 ; sritunyalucksana et al . , 2006 ) hepatopancreatic
เซลล์กุ้งได้รับผลกระทบ บางครั้งยังพบการปรากฏตัวของ
รวมของ monodon baculovirus ( MBV ) hepatopancreatic parvovirus
( HPV ) หรือในปัจจุบันมีไมโครสปอริเดียน .
ไมโครสปอริเดียจะบังคับปรสิตที่รู้จักกันในเซลล์ติดเชื้อ
ช่วงกว้างของความแตกต่างระหว่างโฮสต์ การพัฒนาของปรสิตทั่วไป
เกิดขึ้นภายในไซโตพลาสซึมของเซลล์โฮสต์ผ่านทางนิวเคลียร์และการสร้างสปอร์ (
sporogony ) แม้ว่าบางจำพวกจะรู้จักกันผ่านการพัฒนาที่คล้ายกัน
( ลมภายในโฮสต์นิวคลีโอพลาสซึม และ dykov . kgm , 2002 ; stentiford และ เบทแมน , 2007 ; stentiford
et al . , 2007 )
ได้หลายสกุลไมโครสปอริเดียรายงานการติดเชื้อวาสุเทพโยธา เหล่านี้รวมถึง agmasoma ameson
, , nosema pleistophora tuzetia thelohania , , , , glugoides flabelliforma vavraia ordospora , , , และ nadelspora enterospora ( landgdon
, 1991 ; ลาร์สสัน et al . , 1996 , 1997 , 1998 ; ไลท์เนอร์ , 1996 ; กระป๋อง
et al . , 2002 ; refardt et al . , et al , 2002 ; มูดี้ . , 2003 ; amogan et al . ,
2006 ; และ stentiford เบทแมน , 2007 ) อวัยวะต่างๆ
ครัสเตเชียนและเนื้อเยื่อได้รับการรายงานที่จะติดเชื้อ ( Sprague
et al . , 1992 ; Anderson et al . , 1989 ; landgdon , 1991 ; ลาร์สสัน et al . , 1996 ,
1997 , 1998 ; ลม et al . , 2001 ) ตัวอย่าง และ ชัยณรงค์ วงศ์ธีรทรัพย์ pasharawipas
( 1994 ) รายงานการติดเชื้อของ agmasoma penaei ในกล้ามเนื้อและเนื้อเยื่อเกี่ยวพันของ
merguensis ต่อกุ้งกุลาดำ และ . ต่อมา กระป๋อง
et al . ( 2002 ) รายงานการติดเชื้อโดย tuzetia weidneri ใน
กล้ามเนื้อและบริเวณโดย setiferus aztecus . ซึ่งเกี่ยวข้องกับความก้าวหน้าของรอยโรคทั้งหมด
สำหรับกล้ามเนื้อหน้าท้องบล็อกและส่วนของกุ้ง ที่นำไปสู่เงื่อนไข
โรคที่เรียกว่าหางฝ้าย ' ดวงไฟ ( 1996 ) ได้รายงานยังไมโครสปอริเดียน
เชื้อในเนื้อเยื่อของกล้ามเนื้อกุ้งตาม ไม่กี่ microsporidians ได้รับการแสดงที่จะติดเชื้อเพียงท่อ
เซลล์บุผิวของครัสเตเชียตับ ( Anderson et al . ,
1989 ; ฮัดสัน et al . , 2001 ; wangand เฉิน , 2007 ; stentiford Bateman
และ , 2007 ; stentiford et al . , 2007 ) สิ่งพิมพ์โดย stentiford
et al . อธิบายเช่นเชื้อสองชนิดปูยุโรปด้วย
microsporidians อยู่ในจีนัสใหม่ของไมโครสปอริเดีย ( enterospora )
ภายใน enterocytozoonidae ครอบครัวเพราะอย่างไร
ที่ตั้งของพลาสโมเดีย . การจัดวางภายใน enterocytozoonidae ครอบครัว
นั้นขึ้นอยู่กับการก่อตัวของบรรพบุรุษ
กับสปอร์รูปเครื่องมือ ( เช่นขั้วโลกเส้นใยสูงยึดดิสก์ )
และออร์แกเนลล์อื่นภายในปรสิตพลาสโมเดีย ( เช่นก่อนแยก
ของ sporoblasts ) การค้นพบนี้เปิดเป็นไปได้ของ
อื่น ๆตัวแทนของ enterocytozoonidae ภายในกลุ่ม ที่เกิดขึ้นค่อนข้างบ่อยของใหม่ cytoplamic ไมโครสปอริเดียน
ที่ติดเชื้อเท่านั้น hepatopancreatic ส่วนเยื่อบุเซลล์ของ msgs
ต่อกุ้งกุลาดำ ( chayaburakul et al . , 2004 ) ให้
โอกาสในการศึกษาพัฒนาและอนุกรมวิธานของ การศึกษานี้มุ่งเน้นส่วนใหญ่ในการศึกษา
และคุณลักษณะของปรสิต แต่ยังรวมถึงการวิเคราะห์ส่วนของ rRNA ยีน
ซื่อและเปรียบเทียบลำดับของผู้ microsporidians อื่น
ในฐานข้อมูลสาธารณะ hepatopancreatic ตัวอย่างที่เตรียมโดยวิธีละเลง
ดูด้วยกล้องจุลทรรศน์แสง ( LM ) พบการปรากฏตัวของเชื้อไมโครสปอริเดียน
( รูปที่ 1A ) เฉพาะในไซโตปลาสซึมของ hepatopancreatic
ส่วนเยื่อบุเซลล์ใช้สดสปอร์การเตรียม
รูปที่ 1 photomicrographs ของ enterocytozoon hepatopenaei ส่วนเซลล์เยื่อของตับและตับอ่อนของกุ้งกุลาดํา ( a ) H & e-stained ละเลงของ hepatopancreatic เนื้อเยื่อ
แสดงสปอร์ไมโครสปอริเดียน ( ลูกศร ) มากมาย
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- No problem too much girl ever where.
- โรคจิต
- กำลังจะอาบน้ำ
- you no okow
- defeat
- reduce
- ไป ถึง สามแยก UD Town
- パスワードは、「パスワードを忘れた方」より変更が行えます。
- หาข้อมูล เตรียมกิจกรรมหรรษาด้วยหลัก 3Rs
- Only β-sitosterol oxides were detected,w
- Special
- what do they get
- It's boring.
- หล่อนไม่พอใจและพูดหยาบคายกับเขา
- No lt's direct
- วิวตอนกลางคืน
- กินข้าวกลางวันแล้ว
- พี่ชายฝาแฝด
- A basketball player broke his own record
- ผลลัพธ์ (ภาษาอังกฤษ) 3:It makes me think
- จุดเริ่มต้นที่ โรงแรม charoe udon thani
- ฉันก็สู้นะ
- ก้อย
- กำลังจะอาบน้ำ
