2. Materials and methods
2.1. Plant materials and preparation of individual flowers
L. × elegans Asiatic hybrid lilies, ‘Red Carpet’ were forced in
greenhouses as described previously (Lee et al., 2007). At the puffy
stage of the largest flower bud on each inflorescence, generally 2 d
prior to anthesis, primary buds at different development stages,
based on the weight and the length of the buds, were collected.
Pedicels were trimmed to 3–4 cm in length.
2.1.1. Ethanol soluble carbohydrate analysis (Expt. 1)
Flower buds weighing 1.5 g and 3.9 g were collected from plants
grown in a greenhouse at 21 ◦C/16 ◦C. After harvesting, buds were
maintained at a constant 21 ◦C under light (3 mol s−1 m−2 from
incandescent light bulbs for 24 h), and the tepal, anthers, filaments,
and pistil were separated immediately (day 1) and 5 d after harvest
for carbohydrates analysis. Each organ was weighed at day 1 and
5 and was immediately placed in 20 mL of 80% ethanol. Ethanol
soluble glucose, fructose, and sucrose were analyzed using gas
chromatography and mass spectrometry as described by Pergola
and Roh (1987). Carbohydrate concentrations are presented based
on mg carbohydrates per gram fresh weight. Data were subjected to
analysis of variance and linear regression analysis using SAS/STAT
software (SAS/STAT, 1999).
2.1.2. CO2 and C2H4 production from buds of various sizes from
plants grown at 21 ◦C/16 ◦C and 24 ◦C/21 ◦C (Expt. 2)
Plants were grown in two different greenhouses maintained
at 21 ◦C/16 ◦C and 24 ◦C/21 ◦C and primary flower buds (Roh and
Wilkins, 1977) of different sizes as indicated in Table 1 were harvested
at the same date. Whole buds, buds with tepals removed
(leaving about 2 mm proximal end of tepals attached to a pedicel),
and buds with the tepals and anthers removed (Fig. 2) were
used for CO2 and C2H4 measurements in a controlled room maintained
at 21 ◦C as described previously (Watada and Massie, 1981).
Each bud had a 3.5 cm long pedicel and each pedicel was placed
in scintillation vial (2.5 cm wide and 6.0 cm long) containing 20 mL
of distilled water, and the opening of the vial was wrapped with
parawax film. The vial containing a bud was then placed in a 1 L
jar. The airflow was adjusted to 6–8 mL per min. Three replicate
jars were used for each treatment. The first measurement of the
2. Materials and methods2.1. Plant materials and preparation of individual flowersL. × elegans Asiatic hybrid lilies, ‘Red Carpet’ were forced ingreenhouses as described previously (Lee et al., 2007). At the puffystage of the largest flower bud on each inflorescence, generally 2 dprior to anthesis, primary buds at different development stages,based on the weight and the length of the buds, were collected.Pedicels were trimmed to 3–4 cm in length.2.1.1. Ethanol soluble carbohydrate analysis (Expt. 1)Flower buds weighing 1.5 g and 3.9 g were collected from plantsgrown in a greenhouse at 21 ◦C/16 ◦C. After harvesting, buds weremaintained at a constant 21 ◦C under light (3 mol s−1 m−2 fromincandescent light bulbs for 24 h), and the tepal, anthers, filaments,and pistil were separated immediately (day 1) and 5 d after harvestfor carbohydrates analysis. Each organ was weighed at day 1 and5 and was immediately placed in 20 mL of 80% ethanol. Ethanolsoluble glucose, fructose, and sucrose were analyzed using gaschromatography and mass spectrometry as described by Pergolaand Roh (1987). Carbohydrate concentrations are presented basedon mg carbohydrates per gram fresh weight. Data were subjected toanalysis of variance and linear regression analysis using SAS/STATsoftware (SAS/STAT, 1999).2.1.2. CO2 and C2H4 production from buds of various sizes fromplants grown at 21 ◦C/16 ◦C and 24 ◦C/21 ◦C (Expt. 2)Plants were grown in two different greenhouses maintainedat 21 ◦C/16 ◦C and 24 ◦C/21 ◦C and primary flower buds (Roh andWilkins, 1977) of different sizes as indicated in Table 1 were harvestedat the same date. Whole buds, buds with tepals removed(leaving about 2 mm proximal end of tepals attached to a pedicel),and buds with the tepals and anthers removed (Fig. 2) wereused for CO2 and C2H4 measurements in a controlled room maintainedat 21 ◦C as described previously (Watada and Massie, 1981).Each bud had a 3.5 cm long pedicel and each pedicel was placedin scintillation vial (2.5 cm wide and 6.0 cm long) containing 20 mLof distilled water, and the opening of the vial was wrapped withparawax film. The vial containing a bud was then placed in a 1 Ljar. The airflow was adjusted to 6–8 mL per min. Three replicatejars were used for each treatment. The first measurement of the
การแปล กรุณารอสักครู่..

2. วัสดุและวิธีการ
2.1
วัสดุอาคารและการเตรียมความพร้อมของดอกไม้แต่ละลิตร × elegans ลิลลี่เอเซียไฮบริด 'พรมแดง'
ถูกบังคับในเรือนกระจกตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้(Lee et al., 2007) ที่อ้วนขั้นตอนของตาดอกที่ใหญ่ที่สุดในแต่ละช่อดอกทั่วไป 2 d ก่อนที่จะมีดอกบาน, ตาหลักในขั้นตอนการพัฒนาที่แตกต่างกันขึ้นอยู่กับน้ำหนักและความยาวของตาที่ถูกเก็บรวบรวม. Pedicels ถูกตัด 3-4 เซนติเมตร ความยาว. 2.1.1 การวิเคราะห์คาร์โบไฮเดรตเอทานอลที่ละลายน้ำได้ (Expt. 1) ดอกตูมชั่งน้ำหนัก 1.5 กรัมและ 3.9 กรัมที่ถูกเก็บรวบรวมจากพืชที่ปลูกในเรือนกระจกที่ 21 ◦C / 16 ◦C หลังการเก็บเกี่ยว, ตาได้รับการเก็บรักษาไว้ที่ค่าคงที่21 ◦Cภายใต้แสงไฟ (3 mol s-1 ม. 2 จากหลอดไฟสว่างจ้าเป็นเวลา24 ชั่วโมง) และ Tepal ที่อับเรณู, เส้นใย, และตัวเมียถูกแยกออกทันที (วันที่ 1) และ 5 d หลังการเก็บเกี่ยวสำหรับการวิเคราะห์คาร์โบไฮเดรต อวัยวะที่แต่ละคนได้รับการชั่งน้ำหนักในวันที่ 1 และที่5 และถูกวางไว้ได้ทันทีใน 20 มลเอทานอล 80% เอทานอลระดับน้ำตาลละลายฟรุกโตสและซูโครสวิเคราะห์ใช้ก๊าซโคและมวลสารตามที่อธิบายPergola และต้า (1987) ความเข้มข้นของคาร์โบไฮเดรตจะถูกนำเสนอตามคาร์โบไฮเดรตมิลลิกรัมต่อกรัมน้ำหนักสด ข้อมูลถูกยัดเยียดให้การวิเคราะห์ความแปรปรวนและการวิเคราะห์การถดถอยเชิงเส้นโดยใช้ SAS / สถิติซอฟแวร์(SAS / สถิติ, 1999). 2.1.2 CO2 และ C2H4 ผลิตจากตาขนาดต่างๆจากพืชที่ปลูกวันที่21 ◦C / 16 ◦Cและ 24 ◦C / 21 ◦C (Expt. 2) พืชที่ปลูกในเรือนกระจกที่แตกต่างกันสองเก็บรักษาไว้ณ วันที่ 21 ◦C / 16 ◦Cและ 24 ◦C / 21 ◦Cและดอกตูมหลัก (ต้าและวิลกินส์, 1977) ขนาดแตกต่างกันตามที่ระบุไว้ในตารางที่ 1 เก็บเกี่ยวณ วันที่เดียวกัน ตาทั้งตากับ tepals ลบออก(ออกประมาณ 2 มิลลิเมตรใกล้เคียงจุดสิ้นสุดของ tepals ที่แนบมากับก้านดอกก), และตากับ tepals และอับเรณูลบออก (รูปที่. 2) ถูกนำมาใช้เพื่อCO2 และวัด C2H4 ในห้องควบคุมการบำรุงรักษาที่21 ◦ C ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (Watada และแม็ส, 1981). ตาแต่ละคนมีขนาด 3.5 ซม. ก้านดอกยาวและก้านดอกแต่ละถูกวางไว้ในขวดประกาย(2.5 ซม. กว้าง 6.0 ซม. ยาว) ที่มี 20 มิลลิลิตรของน้ำกลั่นและการเปิดขวดถูกห่อด้วยฟิล์ม parawax ขวดที่มีตาถูกวางไว้แล้วใน 1 ลิตรขวด ไหลเวียนของอากาศมีการปรับ 6-8 มิลลิลิตรต่อนาที ซ้ำสามขวดถูกนำมาใช้ในการรักษาแต่ละ วัดแรกของ
การแปล กรุณารอสักครู่..

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . วัสดุพืชและการเตรียมดอกไม้
บุคคล . ×ถิ่นบัวลูกผสมลิลลี่ ' พรมสีแดงถูกบังคับ
เรือนกระจกตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( ลี et al . , 2007 ) ที่เวทีตุ๊
ที่ใหญ่ที่สุดของดอกตูมในแต่ละช่อดอก โดยทั่วไป 2 D
ก่อนดอกบาน ดอกตูม ขั้นตอนการพัฒนา , หลักที่แตกต่างกัน
ขึ้นอยู่กับน้ำหนักและความยาวของตา , ศึกษา .
pedicels ถูกตัดออก 3 – 4 ซม.
2.1.1 . การวิเคราะห์ปริมาณเอทานอลคาร์โบไฮเดรต ( EXPT . 1 )
ดอกตูมชั่ง 1.5 G และ 3.9 G ได้รวบรวมจากพืชที่ปลูกในเรือนกระจก
ที่ 21 ◦ C / 16 ◦ C หลังการเก็บเกี่ยว ตาถูก
ยังคงคงที่ 21 ◦ C ภายใต้แสง ( 3 โมล s − 1 m − 2 จาก
หลอดไฟสำหรับ ตลอด 24 ชั่วโมง )แล้วทีพัลเรณู และไส้
, เกสรแยกกันทันที ( วัน 1 ) และ 5 D หลังจากเก็บเกี่ยว
วิเคราะห์คาร์โบไฮเดรต แต่ละอวัยวะก็ชั่งในวันที่ 1
5 และวางไว้ใน 20 มิลลิลิตรเอทานอล 80% เอทานอล
ละลายกลูโคส ฟรุคโตสและซูโครสโดยใช้แก๊สโครมาโตกราฟี
และแมสสเปกโทรเมตรี ตามที่อธิบายไว้โดยซุ้มไม้เลื้อย
และ ต้า ( 1987 )ปริมาณคาร์โบไฮเดรตจะแสดงตาม
ต่อมิลลิกรัมคาร์โบไฮเดรตต่อน้ำหนักกรัม ข้อมูลถูก
การวิเคราะห์ความแปรปรวนและการวิเคราะห์การถดถอยเชิงเส้นใช้ SAS / stat
ซอฟต์แวร์ ( SAS / stat , 1999 ) .
2.1.2 . ผลิตจากคาร์บอน c2h4 ตาขนาดต่าง ๆ จาก
ปลูก 21 ◦ C / 16 ◦ C และ 24 ◦ C / 21 ◦ C ( EXPT .
2 ) ปลูกในเรือนกระจกที่แตกต่างกันรักษา
2ที่ 21 ◦ C / 16 ◦ C และ 24 ◦ C / 21 ◦ C และดอกตูมหลัก ( ต้าและ
วิลกินส์ , 1977 ) ขนาดต่าง ๆตามที่ระบุไว้ในตารางที่ 1 เก็บ
ในวันเดียวกัน ทั้งตา , ตาด้วย tepals ลบออก
( เหลือประมาณ 2 มม. รอยต่อปลาย tepals ติดกับก้านดอกไม้ ) ,
และตา และด้วย tepals เรณูออก ( รูปที่ 2 ) ใช้ CO2 และการวัด c2h4
ในการควบคุมห้องรักษาที่ 21 ◦ C ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( watada และ เมสซี่ , 1981 ) .
แต่ละหน่อได้ 3.5 ซม. ก้านดอกไม้ และแต่ละก้านดอกไม้ถูกวางไว้ในขวด
ข้อมูล ( กว้าง 2.5 ซม. และ 6.0 ซม. ) บรรจุ 20 ml
น้ำกลั่น และเปิดขวดถูกห่อด้วย
parawax ฟิล์ม ขวดที่มีดอกตูมถูกวางไว้แล้วในโถที่ 1
ให้ปรับเป็น 6 – 8 มิลลิลิตรต่อนาที 3 ทำซ้ำ
ขวดที่ใช้สำหรับการรักษาแต่ละ วัดแรกของ
การแปล กรุณารอสักครู่..
